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        肥大細胞在小鼠佐劑性關(guān)節(jié)炎疼痛中的作用及其機制研究*

        2020-05-26 08:57:04董甜甜王金齡李世剛閆夢真陳桂婷周婷婷
        中國病理生理雜志 2020年4期
        關(guān)鍵詞:小鼠

        董甜甜,王金齡,李世剛,柳 蔚,閆夢真,余 婕,陳桂婷,周婷婷

        (三峽大學(xué)醫(yī)學(xué)院,湖北宜昌443002)

        類風濕關(guān)節(jié)炎(rheumatoid arthritis,RA)是一種慢性自身免疫性疾病,以滑膜增生,關(guān)節(jié)軟骨與骨的破壞為特征,伴有慢性持續(xù)性的關(guān)節(jié)疼痛,嚴重危害患者的身心健康,影響患者的生活質(zhì)量[1]。世界范圍內(nèi)大約1%的人口患有RA[2],大部分都遭受著疼痛的折磨,臨床使用糖皮質(zhì)激素[3]、傳統(tǒng)抗風濕藥和解熱鎮(zhèn)痛藥并不能達到理想鎮(zhèn)痛效果,且易出現(xiàn)一系列的藥物耐受現(xiàn)象和副作用[4-5];為減輕更多RA患者的痛苦,提高整體生活質(zhì)量,迫切需要了解關(guān)節(jié)疼痛的發(fā)生發(fā)展機制,以發(fā)現(xiàn)新的治療靶點,尋找新的風濕鎮(zhèn)痛藥。

        肥大細胞來源于骨髓造血干細胞[6],離開骨髓后以肥大細胞前體形式隨血流遷移,最后定居于全身各處結(jié)締組織中增殖分化為成熟的肥大細胞介導(dǎo)免疫反應(yīng),其一旦活化可脫顆粒釋放出多種炎性介質(zhì),包括類胰蛋白酶(tryptase)、組胺(histamine)和肝素(heparin)和神經(jīng)生長因子(never growth factor,NGF)等。早期研究發(fā)現(xiàn)肥大細胞在RA的病理發(fā)生發(fā)展過程中扮演重要角色,RA患者和實驗性關(guān)節(jié)炎小鼠滑膜組織中肥大細胞數(shù)量和活化的肥大細胞數(shù)較正?;そM織明顯增加,而肥大細胞缺乏的小鼠關(guān)節(jié)炎癥明顯減輕[7-8],證實了肥大細胞在RA的發(fā)生發(fā)展過程中可能起著關(guān)鍵性作用。

        肥大細胞在其它疾病所致疼痛過程中也發(fā)揮重要作用。例如,鐮狀細胞性貧血導(dǎo)致的疼痛過程中皮膚組織肥大細胞脫顆粒增加,而經(jīng)肥大細胞穩(wěn)定劑處理的小鼠和肥大細胞缺乏的KitW-v小鼠痛覺過敏反應(yīng)減輕[9];肥大細胞缺乏的Kitw-sh小鼠誘導(dǎo)慢性膀胱炎,其炎癥病理表現(xiàn)和盆腔疼痛較野生型小鼠明顯減輕,對其進行C57BL/6J小鼠骨髓來源的肥大細胞再移植后,盆腔疼痛和病理表現(xiàn)再次出現(xiàn),經(jīng)H1和H2受體拮抗劑治療后盆腔疼痛緩解[10]。這說明肥大細胞及其脫顆粒介質(zhì)在慢性炎癥性疼痛病理中可能發(fā)揮作用。

        雖然肥大細胞參與多種疾病疼痛病理過程,卻未見肥大細胞與RA疼痛的相關(guān)報道,本研究基于肥大細胞在RA炎癥病理過程中發(fā)揮的作用,推測肥大細胞可能也介導(dǎo)了關(guān)節(jié)炎疼痛的發(fā)生。本項工作采用完全弗氏佐劑(complete Freund′s adjuvant,CFA)構(gòu)建小鼠佐劑性關(guān)節(jié)炎(adjuvant arthritis,AA)疼痛模型[11],探討肥大細胞在RA關(guān)節(jié)疼痛中的作用及其可能機制。

        材料和方法

        1 材料

        SPF級雌性C57BL/6小鼠18只,體重20~30 g,周齡為6~8周,購自湖北省實驗動物研究中心,許可證號為SCXK(鄂)2015-0018。雌性KitW-4Bao小鼠(Kit基因突變小鼠,背景品系為C57BL/6J小鼠,體內(nèi)肥大細胞缺乏)6只,體重20~30 g,由杭州師范大學(xué)實驗動物中心提供,許可證號為SCXK(浙)2011-0048。PL-200熱刺痛儀(成都泰盟科技有限公司);von Frey電子測痛儀(ALMEMO 2390-5,AHLBORN);游標卡尺(東莞市景有模具五金有限公司);多功能顯微鏡及圖像分析系統(tǒng)(Leica);酶標儀(Tecan)。CFA(Chondrex);甲苯胺藍(toluidine blue,TB;武漢谷歌生物科技有限公司);色甘酸鈉(cromolyn sodium,CS;一種肥大細胞穩(wěn)定劑;上海生工生物工程有限公司);ELISA試劑盒(上海鑫樂生物科技有限公司)。

        2 實驗方法

        2.1 動物分組及給藥 將正常雌性C57BL/6小鼠隨機分為3組:正常對照組(control組)、AA模型組(model組)和AA模型+CS組(CS組),每組6只。6只雌性KitW-4Bao小鼠(Kit基因突變小鼠,背景品系為C57BL/6J小鼠,表現(xiàn)為肥大細胞缺乏)作為AA模型+肥大細胞缺失組(W-4Bao組)。除control組注射等體積生理鹽水外,其它各組小鼠右后足底皮下注射CFA 30 μL構(gòu)建AA模型[11-12],1 d后觀察到注射側(cè)足掌明顯紅腫說明造模成功。CS組小鼠在CFA注射1 d后開始腹腔注射CS(20 mg/kg)[9],其余各組小鼠均給予等體積生理鹽水,每日1次,持續(xù)給藥14 d。

        2.2 小鼠足趾腫脹度測定 分別于小鼠致炎第0、1、3、7、10和14天使用游標卡尺測量小鼠雙后肢的足掌厚度[13]。

        2.3 機械刺激縮爪反應(yīng)閾值(paw withdrawal threshold,PWT)測量 分別在致炎第0、1、3、7、10和14天使用von Frey電子測痛儀檢測機械疼痛閾值[12]。將小鼠置于透明的玻璃器皿下,底為1 cm×1 cm孔徑的鐵絲網(wǎng),待小鼠適應(yīng)30 min后開始檢測。用一根連接在von Frey電子測痛儀探頭上的金屬絲(直徑約為0.5 mm)垂直向上刺激小鼠足底,小鼠抬足的瞬間記錄下疼痛閾值(g),每只足重復(fù)測量3次取平均值,每次測量間隔15 s。

        2.4 熱刺激縮爪反應(yīng)潛伏期(paw withdrawal latency,PWL)測量 在小鼠致炎第0、1、3、7、10和14天使用熱刺痛儀檢測小鼠縮爪反應(yīng)時間[12]。測定前,將小鼠置于熱刺痛儀的玻璃板上,并用透明玻璃杯限制其活動范圍,適應(yīng)環(huán)境30 min,待小鼠處于安靜狀態(tài)時,開始進行檢測。移動輻射熱光源,對準小鼠后足貼近玻璃板的部位,從給予輻射熱刺激開始計時,直至大鼠產(chǎn)生縮爪反應(yīng)時記錄下縮爪反應(yīng)潛伏時間(s)。每只小鼠測試間隔10 min以上,測試3次取平均值。

        2.5 關(guān)節(jié)組織病理評價 14 d后處死小鼠,獲取右后肢踝關(guān)節(jié),4%多聚甲醛固定后,組織浸于10%EDTA進行脫鈣,至骨組織變軟后進行常規(guī)脫水,石蠟包埋切片。切片進行蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin,HE)染色,在光學(xué)顯微鏡下觀察踝關(guān)節(jié)組織的病理改變,進行關(guān)節(jié)炎評分[12]:根據(jù)組織病變程度分為4級,逐級記為0~3分,累計總分為關(guān)節(jié)組織病理分數(shù),最嚴重的病理評分可達9~10分,見表1。

        表1 關(guān)節(jié)組織病理評分系統(tǒng)Table 1.Joint histopathology scoring system

        2.6 TB染色 小鼠踝關(guān)節(jié)組織石蠟切片經(jīng)常規(guī)脫蠟水化后用0.5%TB染液染色5 min,沖洗后冰醋酸分化數(shù)秒,經(jīng)脫水,二甲苯透明后封片。切片在光學(xué)顯微鏡下觀察到的含紫紅色顆粒的細胞為肥大細胞,其中細胞膜完整、細胞核染色清楚的為穩(wěn)定狀態(tài)肥大細胞;細胞膜破裂、周圍組織中存在藍染顆粒的為脫顆粒肥大細胞[14]。選取不同視野進行肥大細胞計數(shù),每張切片選擇3個視野進行計數(shù),求平均值,并計算肥大細胞脫顆粒率。脫顆粒率(%)=脫顆粒肥大細胞數(shù)量/肥大細胞總數(shù)×100%。

        2.7 酶聯(lián)免疫吸附測定(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)法檢測小鼠踝關(guān)節(jié)組織中炎癥因子和神經(jīng)肽水平 取小鼠踝關(guān)節(jié)加入PBS進行組織勻漿,吸取上清,參考ELISA試劑盒說明書檢測上清中histamine、tryptase、P物質(zhì)(substance P,SP)和降鈣素基因相關(guān)肽(calcitonin gene-related peptide,CGRP)的濃度[15]。

        3 統(tǒng)計學(xué)處理

        實驗數(shù)據(jù)應(yīng)用GraphPad Prism 5軟件進行分析,計量資料以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,采用單因素方差分析(one-way ANOVA)進行統(tǒng)計,組間均數(shù)多重比較采用LSD-t檢驗,以P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        結(jié) 果

        1 小鼠致炎前后足趾腫脹度

        小鼠注射CFA 1 d后,致炎側(cè)后肢肉眼可見明顯紅腫,對側(cè)及注射生理鹽水的小鼠未見明顯改變;經(jīng)測量,與正常control組相比,model組小鼠的右側(cè)足掌厚度在致炎1 d后顯著增加(P<0.05),腫脹持續(xù)至14 d,小鼠伴有跛行和舔足反應(yīng),見圖1。

        2 熱刺激(PWL)和機械刺激(PWT)痛敏反應(yīng)

        小鼠致炎1 d后,注射CFA的一側(cè)后肢PWL和PWT較control組顯著降低(P<0.05),痛覺過敏持續(xù)至14天,對側(cè)后肢以及正常control組的后肢未見明顯疼痛反應(yīng),與注射CFA的model組野生型小鼠相比,KitW-4Bao小鼠痛閾值保持在較高水平(P<0.05);經(jīng)CS干預(yù)治療后的第7天開始,小鼠PWL和PWT逐漸升高,與model組小鼠相比有顯著差異(P<0.05),見圖1。

        3 關(guān)節(jié)組織病理評分

        組織切片經(jīng)HE染色顯示,control組關(guān)節(jié)面光滑,未見炎癥細胞浸潤和滑膜增生;model組關(guān)節(jié)腔狹窄,伴有大量炎癥細胞浸潤、關(guān)節(jié)滑膜增生等典型關(guān)節(jié)炎病理表現(xiàn);CS組較model組炎癥表現(xiàn)明顯減輕,炎癥細胞,滑膜增生減少;W-4Bao組炎癥癥狀不明顯。組織病理分數(shù)統(tǒng)計分析結(jié)果顯示model組小鼠評分顯著高于control組(P<0.05),W-4Bao組和CS組的評分顯著低于model組(P<0.05)。見圖2。

        Figure 1.The swelling of the paw and the pain threshold before and after the inflammation in mice.A:visual observation of right hind paw swelling in mice;B:ankle thickness change in control group and model group.C:the changes of paw withdrawal latency in control group,model group,W-4Bao group and CS group;D:the changes of paw withdrawal threshold in control group,model group,W-4Bao group and CS group.Mean±SD,n=6.*P<0.05 vs control group,#P<0.05 vs model group.圖1 小鼠致炎前后足掌腫脹情況和痛域變化

        4 肥大細胞脫顆粒情況

        Figure 2.HE staining and pathological score of mouse joint tissues in control group(A),model group(B),W-4Bao group(C)and CS group(D).The scale bar=100 μm.The arrows indicate joint cavity narrowing,synovial hyperplasia,and inflammatory cell infiltration.Mean±SD.n=6.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs model group.圖2 關(guān)節(jié)組織病理評分

        踝關(guān)節(jié)組織切片TB染色結(jié)果顯示,model組較control組總的肥大細胞數(shù)量和脫顆粒的肥大細胞均顯著增加(P<0.05),W-4Bao組幾乎未見肥大細胞,CS組較model組的肥大細胞數(shù)量及脫顆粒率均顯著降低(P<0.05),見圖3。

        Figure 3.The number of mast cells and the degranulation rate of mast cells in mouse joint tissues in control group(A),model group(B),W-4Bao group(C)and CS group(D)were evaluated by toluidine blue staining(scale bar=20 μm).The red arrows indicate stable mast cells,while the yellow arrows indicate degranulated mast cells.Mean±SD.n=6.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs model group.圖3 踝關(guān)節(jié)組織肥大細胞活化情況

        5 踝關(guān)節(jié)組織炎癥因子和神經(jīng)肽釋放情況

        ELISA法檢測結(jié)果顯示,model組中histamine、tryptase、SP和CGRP的表達量均比control組顯著升高(P<0.05),其在CS組和W-4Bao組中的表達量較model組顯著降低(P<0.05),見表2。

        表2 各組踝關(guān)節(jié)組織炎癥因子和神經(jīng)肽釋放水平比較Table 2.Comparison of release levels of inflammatory factors and neuropeptides in ankle joint tissues of each group(μg/L.Mean±SD,n=6)

        討 論

        目前國內(nèi)外針對肥大細胞在RA中的作用研究多集中在炎癥方面,對RA疼痛研究較少。弗氏佐劑關(guān)節(jié)炎可產(chǎn)生動物自身免疫反應(yīng)性炎癥,模擬RA引起的疼痛,屬于慢性疼痛模型,適用于RA疼痛發(fā)病機制及鎮(zhèn)痛藥物作用的研究[13]。本實驗通過小鼠右后肢足底皮下注射CFA,構(gòu)建AA疼痛模型,1 d后小鼠注射側(cè)明顯紅腫,活動受限并伴隨一些疼痛反射行為,提示造模成功。

        肥大細胞在組織中通常鄰近血管和神經(jīng)分布,肥大細胞脫顆??烧{(diào)節(jié)神經(jīng)興奮性,反過來神經(jīng)元釋放的神經(jīng)遞質(zhì)也可活化肥大細胞。在交感神經(jīng)元與大鼠嗜堿性粒細胞性白血病RBL-2H3細胞以及大鼠腹腔肥大細胞共培養(yǎng)實驗中,觀察到神經(jīng)元和肥大細胞的膜與膜之間形成類似突觸樣聯(lián)系,用緩激肽刺激神經(jīng)細胞可觀察到RBL-2H3細胞活化并出現(xiàn)細胞膜的波動現(xiàn)象[16],這一現(xiàn)象直觀表明了肥大細胞與神經(jīng)之間存在著某種內(nèi)部聯(lián)系,為肥大細胞在疼痛病理過程中發(fā)揮作用提供了依據(jù)。

        機械和熱刺激痛閾的測定被廣泛用于評估實驗動物疼痛等級。為證實肥大細胞在CFA誘導(dǎo)的AA疼痛中的作用,本研究采用肥大細胞缺乏的KitW-4Bao小鼠[17]誘導(dǎo)AA模型,同時對AA模型小鼠使用肥大細胞穩(wěn)定劑CS進行干預(yù)治療。實驗結(jié)果顯示:model組小鼠的PWL和PWT較control組顯著降低,而CS組和W-4Bao組小鼠痛閾均高于Model組,從疼痛行為學(xué)的角度證實肥大細胞能夠促進關(guān)節(jié)炎疼痛的發(fā)生。

        肥大細胞在組織免疫炎癥狀態(tài)下,通過脫顆粒釋放出多種炎性介質(zhì),如histamine和tryptase等,通過炎性介質(zhì)與組織細胞的相互作用,放大炎癥信號,導(dǎo)致持續(xù)性的慢性炎癥發(fā)生和發(fā)展[18-19]。本實驗通過TB染色觀察肥大細胞在踝關(guān)節(jié)組織中的分布及活化情況,結(jié)果觀察到control組踝關(guān)節(jié)組織中肥大細胞數(shù)量以及活化數(shù)量較少,而model組中肥大細胞數(shù)量和活化脫顆粒的肥大細胞數(shù)量顯著增加,肥大細胞缺乏的W-4Bao組以及使用肥大細胞穩(wěn)定劑處理后的CS組的肥大細胞活化程度均減輕。ELISA檢測踝關(guān)節(jié)組織勻漿中炎癥介質(zhì)histamine和tryptase的釋放情況,結(jié)果顯示model組中這兩種炎癥介質(zhì)含量較control組明顯增加,而CS組和W-4Bao組較model組含量降低,表明CFA誘導(dǎo)的關(guān)節(jié)炎能夠促進肥大細胞活化,組織中肥大細胞數(shù)量與關(guān)節(jié)炎癥嚴重程度具有一定關(guān)系,抑制肥大細胞活化能有效緩解關(guān)節(jié)炎癥和疼痛。

        SP和CGRP是在疼痛過程中起重要作用的神經(jīng)遞質(zhì),廣泛分布于中樞神經(jīng)系統(tǒng)和外周神經(jīng)系統(tǒng),由感覺神經(jīng)元分泌,在傷害性機械、熱和化學(xué)等刺激下,神經(jīng)末梢被激活可釋放大量SP和CGRP,在慢性炎癥疼痛中發(fā)揮重要作用。先前的研究證實關(guān)節(jié)中存在大量的肽能神經(jīng)元能夠分泌SP和CGRP,在膠原誘導(dǎo)的關(guān)節(jié)炎中觀察到背根神經(jīng)節(jié)(dorsal root ganglion,DRG)神經(jīng)元和脊髓背角中CGRP表達上調(diào),痛覺敏感性增強[20];在CFA誘導(dǎo)的大鼠慢性膝關(guān)節(jié)炎模型中出現(xiàn)同側(cè)小直徑DRG神經(jīng)元CGRP陽性表達率明顯增加[21]。有研究[22]表明雷公藤甲素能夠抑制AA大鼠脊髓背角和DRG中SP的表達,并緩解了50%機械縮足反應(yīng)閾值。對于慢性關(guān)節(jié)炎癥(RA和骨關(guān)節(jié)炎)的研究顯示關(guān)節(jié)炎病人血清SP濃度與慢性疼痛強度呈正相關(guān)關(guān)系[23],在炎癥狀態(tài)下,關(guān)節(jié)周圍組織中的神經(jīng)纖維及相應(yīng)受體被激活,可釋放神經(jīng)肽引起痛敏,SP和CGRP的釋放可能是導(dǎo)致關(guān)節(jié)炎疼痛的重要原因。

        本實驗檢測了小鼠踝關(guān)節(jié)組織中SP和CGRP的釋放情況,結(jié)果顯示與control組相比,CFA誘導(dǎo)的model組小鼠痛敏反應(yīng)明顯增強,伴隨SP和CGRP濃度顯著增加,此結(jié)果與相關(guān)文獻報道一致,SP和CGRP濃度與關(guān)節(jié)疼痛有聯(lián)系。CS處理的CS組和肥大細胞缺乏的W-4Bao組較model組神經(jīng)肽的釋放顯著減少,提示肥大細胞能夠調(diào)控小鼠踝關(guān)節(jié)組織中神經(jīng)肽的分泌,進而影響關(guān)節(jié)炎疼痛的發(fā)生,這一過程可能和肥大細胞與關(guān)節(jié)神經(jīng)末梢之間的相互作用有關(guān)。

        神經(jīng)免疫系統(tǒng)相互作用機制在多種疾病中已有報道,本實驗展示了CFA誘導(dǎo)的小鼠慢性AA使關(guān)節(jié)痛敏反應(yīng)增強,促進了肥大細胞的活化和神經(jīng)肽的釋放;而肥大細胞缺乏的小鼠和使用肥大細胞穩(wěn)定劑處理過的小鼠能夠有效減輕關(guān)節(jié)炎癥,緩解關(guān)節(jié)疼痛,減少了神經(jīng)肽SP和CGRP的釋放,表明肥大細胞是促進AA疼痛發(fā)生的重要中介,首次闡述了肥大細胞在關(guān)節(jié)炎疼痛中發(fā)揮重要作用,為治療RA疼痛提供了新的治療思路。然而肥大細胞與關(guān)節(jié)組織中傷害性感受神經(jīng)元之間具體的相互作用尚不清楚,它們之間是否存在著密切的聯(lián)系有待進一步探討,以更加明確肥大細胞在關(guān)節(jié)疼痛中的作用機制,為尋找更明確的關(guān)節(jié)疼痛治療靶點提供更堅實的依據(jù)。

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