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        PHF7 在人精子中相互作用蛋白分析

        2020-05-24 07:02:04曹夢陽林浩成
        中國男科學(xué)雜志 2020年2期
        關(guān)鍵詞:功能

        曹夢陽 林浩成* 姜 輝*

        1. 北京大學(xué)第三醫(yī)院泌尿外科(北京 100191)2. 北京大學(xué)第三醫(yī)院生殖醫(yī)學(xué)中心(北京 100191)3. 北京大學(xué)第三醫(yī)院男科(北京 100191)4. 北京大學(xué)第三醫(yī)院人類精子庫(北京 100191)

        約15%的育齡夫婦受到不孕不育的困擾, 其中男性因素導(dǎo)致的不育約占50%[1]。 男性不育癥是由多種疾病和因素造成的結(jié)果, 但超過一半的男性不育患者無法找到明確的病因,臨床上稱為特發(fā)性男性不育,目前認(rèn)為其發(fā)病與遺傳和環(huán)境等因素有關(guān)。 因此,從分子遺傳學(xué)的角度精確的闡釋生精功能障礙的發(fā)病機(jī)制,是未來治療特發(fā)性男性不育癥的基礎(chǔ)。 植物同源結(jié)構(gòu)域指蛋白7(PHD finger protein 7,PHF7)屬于RING 型泛素連接酶家族,在人和小鼠的睪丸組織中特異性表達(dá)[2]。PHF7 在2002 年被首次報道,Junhua Xiao 等研究了一例PHF7 基因缺陷的生精阻滯患者,認(rèn)為其具有轉(zhuǎn)錄調(diào)控及調(diào)節(jié)精子發(fā)生的作用[3]。 2012 年,Shuyuan Yang 等發(fā)現(xiàn),PHF7 可以調(diào)控果蠅性別分化過程, 這種調(diào)控作用可能與其識別組蛋白甲基化修飾H3K4me2 有關(guān)[4,5]。在本研究中,我們在體外表達(dá)GST-PHF7 融合蛋白,篩選其在人精子中的相互作用蛋白, 并通過生物信息學(xué)方法對其進(jìn)行富集,從蛋白質(zhì)層面探明PHF7 及其互作蛋白在精子發(fā)生中的調(diào)節(jié)通路,為進(jìn)一步研究PHF7 及其互作蛋白的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)和分子機(jī)制打下基礎(chǔ), 并為基因突變引起的男性不育的診斷和治療提供理論依據(jù)。

        材料與方法

        一、GST-PHF7 表達(dá)載體的構(gòu)建

        全基因合成少量質(zhì)粒作為模板, 設(shè)計引物Plasmid-PHF7-F ( 序 列5'—3':GATCTGGTTCCGCGTGGATCCATGAAGACTGTAAAAGAAAAGAAG) 及Plasmid-PHF7-R ( 序 列 5'—3':GTCACGATGCGGCCGCTCGAGTTACTTGGATTTTTTGCAGC) 并 使 用PrimeSTAR 高保真酶(Takara,R045A)擴(kuò)增目的基因,反應(yīng)條件:96℃20s,60℃30s,72℃1min, 共30 個循環(huán)。 PCR 產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳后,切取含目的基因片段的條帶,使用DNA 回收試劑盒(生工,B518131)回收DNA 目的片段,得到目的基因PCR 產(chǎn)物。

        取5μg 的pGEX-4T-1 載體, 用BamHI 和XhoI 在37℃雙酶切30min,電泳回收載體片段。 按照如下方案配置目段片段與載體連接的反應(yīng)體系:pGEX-4T-1 載體片段100ng,PHF7 PCR 產(chǎn)物100ng,5x CE II Buffer 4μL,ExpressII (諾唯贊,C112-2)2μL,ddH2O 補(bǔ)充到20μL。 37 ℃連接30min 后, 取10μL 連接產(chǎn)物至100 μL Stbl3 感受態(tài)細(xì)胞中冰浴30 min,42 ℃水浴60s,然后快速將其轉(zhuǎn)移至冰浴中2~3 min。 加入300μL LB 培養(yǎng)基,37℃振蕩培養(yǎng)1 h,將菌液均勻涂布于含Amp 抗生素(100 μg/mL)的LB 平板上,室溫下放置,至液體吸收。倒置平板,轉(zhuǎn)移入37 ℃生化培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng)。挑選菌落進(jìn)行PCR 鑒定陽性轉(zhuǎn)化,菌落PCR 鑒定得到的陽性克隆,送測序公司進(jìn)行測序驗證。 經(jīng)測序驗證正確的陽性克隆進(jìn)行質(zhì)粒小提(生工,B518191)。

        二、GST-PHF7 融合蛋白的表達(dá)與純化

        挑取表達(dá)GST 標(biāo)簽重組蛋白的單克隆, 接種到3mL 含Amp 抗生素的LB 培養(yǎng)液中,培養(yǎng)過夜。 按照1:100 的比例取培養(yǎng)過夜的菌液,接種到預(yù)熱至37℃并含Amp 抗生素的LB 培養(yǎng)液中,37℃常規(guī)培養(yǎng)60min至菌液的OD600 達(dá)到0.6 左右。 將菌液在冰上靜置,加入IPTG 至終濃度為0.5mM 28℃進(jìn)行誘導(dǎo)。 收集菌液至離心管中,4℃1500g 離心3min, 棄上清, 收集沉淀。 以PBS 50 倍體積進(jìn)行濃縮。1000pa 壓力進(jìn)行壓力破碎,共重復(fù)7 次。 1500g 離心20min,取上清進(jìn)行后續(xù)純化。

        將制備好的含有GST 融合蛋白的澄清細(xì)胞裂解液加入到層析柱中,流速控制為10~15cm/h。 裂解液全部流出層析柱后就立刻加入1×PBS 清洗柱子, 所需量大約為柱體積的20 倍。 用10~15 倍柱體積的現(xiàn)配10mM谷胱甘肽洗脫液 (0.154g 還原性谷胱甘肽溶于50 mL 50 mM Tris-HCl,pH 8.0) 洗脫融合蛋白。 分別吸取20μLGST 融合蛋白原液、流出液、洗滌液和洗脫液,通過SDS-PAGE 電泳分析各樣品, 確定是否存在標(biāo)簽蛋白。洗脫液通過分子篩(30Kda 超濾管)去除游離的谷胱甘肽并濃縮。

        三、精子總蛋白提取

        收集2018 年10 月到11 月在北京大學(xué)第三醫(yī)院男科精液檢查室的精液廢棄標(biāo)本,根據(jù)WHO《人類精液檢查與處理實驗室手冊》第五版[6],篩選出精子濃度和活力均正常的精液標(biāo)本。 取15mL 離心管,依次加入2mL 90% percoll,45% percoll 和液化精液, 保持各液體之間的界面清晰,300 g 離心20 min。 去上清后用PBS清洗細(xì)胞沉淀2 次,向其中加入蛋白裂解液(已加蛋白酶抑制劑),冰上裂解15min,500g 4℃離心15min,取上清到新的EP 管中即為精子總蛋白。

        四、GST pull-down 實驗

        取GST 空載菌和GST-PHF7 菌, 加入PBS 溶液,渦旋震蕩混勻,4℃1500g 離心5min,去上清,重復(fù)洗滌沉淀兩次。 加入裂解液,吹打混勻后冰上裂解,5%功率超聲5min。 4℃1500g 離心15min,上清轉(zhuǎn)移到新的EP管中,做好標(biāo)記,從每管中取50uL 作為input。取適量樹脂到EP 管中, 加入1mL 細(xì)胞裂解液, 室溫漂洗2min,500g 4℃離心5min,去掉液體,在漂洗兩次后,加入上清,在EP 管上做好標(biāo)記,命名為GST 組+精子蛋白、GST-PHF7 組+裂解液、GST-PHF7 組+ 精子蛋白,放入4℃混勻儀上孵育2h。 從4℃混勻儀上拿出樹脂,4℃500g 離心5min,去上清,向樹脂中加入1mL 裂解液, 放混勻儀上, 室溫漂洗5min 后,4 ℃500g 離心5min,去上清重復(fù)漂洗兩次。 將提取的精子細(xì)胞蛋白加入到相應(yīng)的樹脂組別中,放4℃混勻儀上孵育過夜。 孵育完畢后4℃500g 離心3min,棄上清。 將樹脂用裂解液洗3 次, 用新鮮配置的20mM 還原性谷胱甘肽洗脫15min。 4℃1500g 離心5min,上清即為pull-down 產(chǎn)物。將3 組pull-down 產(chǎn)物進(jìn)行質(zhì)譜檢測。

        五、質(zhì)譜檢測與生信分析

        將樣品進(jìn)行質(zhì)譜檢測,獲取與PHF7 特異結(jié)合的蛋白序列和分子量等信息, 該部分委托廣州駿輝生物科技有限公司完成。 使用Gene Ontology 數(shù)據(jù)庫(https://www.ebi.ac.uk/QuickGO/)進(jìn) 行GO 富 集 分 析[7]; 使 用KEGG pathway 數(shù) 據(jù) 庫(https://www.kegg.jp/kegg/pathway.html)信號通路富集分析[8];使用在線軟件Omics-Bean(http//www.omicsbean.cn)作圖。

        實驗結(jié)果

        一、GST pull-down 實驗與質(zhì)譜分析

        GST 組+ 精 子 蛋 白、GST-PHF7 組+ 裂 解 液、GST-PHF7 組+ 精子蛋白三組pull-down 產(chǎn)物SDSPAGE 結(jié)果如圖1 所示,可見GST-PHF7 組+精子蛋白組與另外兩組條帶有明顯差異。 結(jié)果表明,本次實驗用誘餌蛋白成功釣取了精子細(xì)胞中的結(jié)合蛋白。 將pull-down 產(chǎn)物進(jìn)行質(zhì)譜檢測, 質(zhì)譜得到的GST-PHF7的結(jié)合蛋白除去GST 對照組鑒定的蛋白后, 共鑒定到75 個直接或間接相互作用的蛋白。 對這些蛋白進(jìn)行注釋,注釋出組蛋白及其變體、轉(zhuǎn)錄因子、氧代謝相關(guān)蛋白等。

        圖1 GST pull-down 實驗考染膠圖

        二、PHF7 相互作用蛋白的GO 富集分析

        對質(zhì)譜得到的蛋白依次從生物學(xué)過程(Biological Process,BP),細(xì)胞組分(Cellular Component,CC)和分子功能(Molecule Function,MF)層面進(jìn)行GO 功能富集分析,共注釋出BP 條目2273 個,其中有統(tǒng)計學(xué)意義的條目(P<0.05)1377 個;注釋出CC 條目375 個,其中有統(tǒng)計學(xué)意義的條目(P<0.05)236 個; 注釋出MF 條目401 個,其中有統(tǒng)計學(xué)意義的條目(P<0.05)240 個。 各自取可信程度最高(根據(jù)P 值排列)的10 個條目,結(jié)果如圖2 所示。

        圖2 PHF7 互作蛋白在生物學(xué)過程、細(xì)胞組分和分子功能層面的富集分析

        PHF7 互作蛋白涉及到蛋白運(yùn)輸(intracellular protein transport),細(xì)胞內(nèi)定位(cellular localization),藥物代謝(Drug metabolic process)和分解代謝(Catabolic process)等多個生物學(xué)過程,根據(jù)P 值篩選出可信度最高的10 個條目繪制氣泡圖如圖3 所示。 PHF7 互作蛋白所涉及的分子功能在level 4 水平上,富集蛋白最多的是細(xì)胞器復(fù)合體代謝(Organonitrogen compound metabolic process)和運(yùn)輸(transport)的分布如圖4 所示。 每個蛋白可能同時分屬不同的生物學(xué)過程, 若將每個蛋白依據(jù)P 值大小歸到可信程度最高的條目下, 涉及蛋白最多的條目是藥物代謝(Drug metabolic process),其分布如圖5 所示。

        圖3 PHF7 互作蛋白涉及的可信度最高的10 個生物學(xué)過程

        圖4 PHF7 互作蛋白涉及的生物學(xué)過程在level4 水平上的分布

        圖5 PHF7 互作蛋白涉及的生物學(xué)過程分布餅圖

        PHF7 互作蛋白主要定位在各種胞內(nèi)細(xì)胞器(intracellularvesicle),細(xì)胞質(zhì)(cytoplasm),囊泡(vesicle),外泌體(extracellular exosome)等,涉及胞內(nèi)蛋白運(yùn)輸和分泌的多個環(huán)節(jié), 這些細(xì)胞成分在level4 水平上的分布如圖6 所示。每個蛋白可能同時分屬不同的細(xì)胞成分條目,若將每個蛋白依據(jù)P 值大小歸到可信程度最高的條目下,64%的蛋白定位于胞外膜界細(xì)胞器(Extracellular membrane-bounded organelle),其次是胞質(zhì)(cytoplasm),其分布如圖7 所示。

        圖6 PHF7 互作蛋白所涉及的細(xì)胞成分在level4 水平上的分布

        圖7 PHF7 互作蛋白所涉及的細(xì)胞成分分布餅圖

        PHF7 互作蛋白涉及到蛋白結(jié)合(protein binding),RNA 結(jié)合(RNAbinding)和酶結(jié)合(enzymebinding)等分子功能, 根據(jù)P 值篩選出可信度最高的10 個條目繪制氣泡圖如圖8 所示。 PHF7 互作蛋白所涉及的分子功能在level 4 水平上的分布如圖9 所示,識別與結(jié)合核酸是其主要分子功能。每個蛋白可能同時分屬不同的分子功能條目,若將每個蛋白依據(jù)P 值大小歸到可信程度最高的條目下,71%的蛋白分子功能被歸類于蛋白結(jié)合,其分布如圖10 所示。

        圖8 PHF7 互作蛋白涉及的可信度最高的10 個分子功能

        圖9 PHF7 互作蛋白分子功能在level4 上的分布

        圖10 PHF7 互作蛋白所涉及的分子功能分布餅圖

        三、PHF7 相互作用蛋白的KEGG 分析

        KEGG 數(shù)據(jù)庫中,信號通路分為以下6 個亞類:代謝(metabolism);遺傳信息處理(genetic information processing);環(huán)境信息處理(environmental information processing);細(xì)胞過程(cellular processes);生物體系統(tǒng)organismal systems)和人類疾?。╤uman diseases)。 PHF7互作蛋白共注釋出KEGG 通路118 條, 其中有統(tǒng)計學(xué)意義的通路(P<0.05)27 條,其分布如圖11 所示。 結(jié)果表明,這些蛋白涉及代謝,遺傳信息處理,生物體系統(tǒng)和人類疾病4 個亞類, 富集基因較多的通路有代謝大類中的代謝通路(metabolic pathways),糖代謝(glycolysis),氧化磷酸化(oxidative phosphorylation)等,在遺傳信息的處理大類中涉及核糖體(ribosome),在人類疾病中涉及帕金森病,阿爾茨海默癥和亨廷頓舞蹈病等。 可信度最高的十條富集通路根據(jù)P 值從小到大排列依次是 核 糖 體 (ribosome), 丙 酮 酸 代 謝(pyruvate metabolism),大腸埃希菌感染(Pathogenic Escherichia coli infection),帕金森?。≒arkinson’s disese),氧化磷酸化 (Oxidative phosphorylation), 代 謝 通 路(metabolic pathways), 亨廷頓病 (Huntington’s diaease), 糖代謝(glycolysis),藥物代謝(drug metabolism),阿爾茨海默癥(Alzhemer’disease),繪制氣泡圖如圖12。 KEGG 結(jié)果表明,PHF7 在精子中的相互作用蛋白要參與了細(xì)胞代謝和遺傳信息處理的多種信號通路。

        討 論

        蛋白相互作用的研究是揭示蛋白作用機(jī)制的重要手段,之前的針對果蠅的研究中,我們對PHF7 在精子發(fā)生中的作用有了初步的了解。盡管PHF7 基因在不同物種之間的序列高度保守,但PHF7 在果蠅和哺乳動物中的位置及表達(dá)模式等差異很大, 哺乳動物和人類的生精過程調(diào)節(jié)機(jī)制也更為復(fù)雜,PHF7 在精子發(fā)生中的具體分子機(jī)制尚不清楚。 因此, 我們構(gòu)建質(zhì)粒并表達(dá)GST-PHF7 融合蛋白,通過體外實驗釣取其在人精子中的互作蛋白,并通過生物信息學(xué)方法分析其富集通路,為進(jìn)一步研究PHF7 在精子發(fā)生中的作用機(jī)制提供探索方向和理論基礎(chǔ)。

        GST pull-down 法和免疫共沉淀法是篩選細(xì)胞內(nèi)與已知蛋白和位置蛋白相互作用的經(jīng)典方法。 GST pull-down 法是將GST-PHF7 融合蛋白作為探針固定到凝膠柱上,與精子細(xì)胞總蛋白中的目的蛋白結(jié)合。 由于體外實驗不同于細(xì)胞內(nèi)的生理環(huán)境, 部分蛋白可能會由于分子力或者電荷相互作用與融合蛋白結(jié)合; 部分蛋白雖能與PHF7 直接相互作用,但由于在精子細(xì)胞內(nèi)的空間分布不同,生理環(huán)境下無法直接接觸,這些因素可能會造成假陽性[9]。 免疫共沉淀法可以分離得到天然狀態(tài)下相互作用的蛋白復(fù)合體, 這種蛋白復(fù)合體不一定是蛋白與蛋白之間的直接結(jié)合, 可能有其他蛋白在中間起橋梁作用使無關(guān)蛋白與其間接結(jié)合, 從而造成假陽性。 本研究同時進(jìn)行了免疫共沉淀實驗和GST pull-down 實驗,經(jīng)過考馬斯亮藍(lán)染色驗證,現(xiàn)有抗體無法在自然狀態(tài)下拉下PHF7 相互作用蛋白復(fù)合體,而GST pull-down 法則成功釣取PHF7 蛋白復(fù)合體, 故本研究使用GST pull-down 實驗產(chǎn)物進(jìn)行質(zhì)譜檢測和進(jìn)一步分析。 本次共鑒定出75 個與PHF7 直接或間接相互作用蛋白, 其中大部分未被已知的STRING 蛋白相互作用數(shù)據(jù)庫收錄[10]。

        圖11 PHF 互作蛋白在KEGG 數(shù)據(jù)庫中的富集通路

        圖12 PHF 互作蛋白富集通路氣泡圖

        GO 功能富集和KEGG 代謝通路注釋是蛋白質(zhì)組學(xué)研究的重要方法,PHF7 的互作蛋白被顯著富集在數(shù)個功能和代謝通路中, 為進(jìn)一步驗證其在精子發(fā)生中的功能提供了研究方向。 GO 富集分析的結(jié)果表明,PHF7 的互作蛋白在細(xì)胞組分上定位在從胞內(nèi)細(xì)胞器、囊泡到細(xì)胞膜上, 涉及細(xì)胞器代謝和蛋白運(yùn)輸?shù)壬飳W(xué)過程,這和其在泛素-蛋白酶體系統(tǒng)中的定位是一致的[11]。 精子發(fā)生后期,圓形的單倍體精子細(xì)胞將經(jīng)歷一系列的變形過程, 最終形成成熟精子。 精子形成過程中,組蛋白先被過渡核蛋白替代,然后又被魚精蛋白所取代。 其中一個關(guān)鍵的過程是組蛋白,過渡蛋白等關(guān)鍵蛋白的胞內(nèi)定向運(yùn)輸和降解。 這次注釋出的組蛋白及其變體,核糖體蛋白RPL,翻譯起始因子eIF,和熱休克蛋白HSP 家族等,均參與了精子發(fā)生過程中蛋白合成,運(yùn)輸和代謝過程[12,13]。 這在一定程度上暗示了PHF7 及其互作蛋白可能的調(diào)節(jié)機(jī)制, 即在關(guān)鍵蛋白的裝配和運(yùn)輸上發(fā)揮作用。 在分子功能上,PHF7 的互作蛋白注釋出了酶結(jié)合,蛋白結(jié)合和核酸結(jié)合的條目,這和其在表觀遺傳學(xué)層面調(diào)節(jié)精子發(fā)生的功能是相符合的[14,15]。在KEGG 的信號通路注釋中,PHF7 互作蛋白大多富集在各種代謝通路上,包括氧化磷酸化,丙酮酸代謝和糖代謝等, 這些關(guān)鍵蛋白的缺失均會影響生精功能[16,17]。考慮到PHF7 的互作蛋白有約10%富集在線粒體代謝復(fù)合體和呼吸鏈上, 對精子細(xì)胞能量代謝的影響可能是其另一種作用機(jī)制。 同時我們發(fā)現(xiàn),PHF7 基因敲除小鼠的精子活力明顯下降(數(shù)據(jù)未發(fā)表),PHF7 基因缺失影響了精子線粒體代謝是一種可能的解釋。 此外,KEGG 的結(jié)果提示部分蛋白(NDUFS7,UQCR,ATP5F等) 可能與神經(jīng)系統(tǒng)疾病如帕金森病和阿爾茨海默癥等有關(guān), 在這些神經(jīng)系統(tǒng)疾病中這些基因的表達(dá)也表現(xiàn)出不同程度的相關(guān)性[18-20]。 考慮到PHF7 在腦組織中也有少量表達(dá),而一些基因如DJ-1 也可同時涉及神經(jīng)系統(tǒng)疾病和男性不育[21],PHF7 及其互作蛋白在神經(jīng)系統(tǒng)中也可能發(fā)揮一定的調(diào)節(jié)作用。 但由于本實驗存在著一定的假陽性可能, 富集在神經(jīng)系統(tǒng)疾病通路的基因相比于背景基因也并不多,PHF7 及其互作蛋白是否能在神經(jīng)系統(tǒng)中發(fā)揮作用仍待進(jìn)一步的確認(rèn)。

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