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        基于近紅外免疫層析技術(shù)快速檢測(cè)食源性甲型肝炎病毒

        2020-05-04 07:57:02萬曉楠暢曉暉齊瑋高欣喬彬楊向瑩李小林張惠媛石嵩張捷周熙成
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2020年7期
        關(guān)鍵詞:檢測(cè)

        萬曉楠,暢曉暉,齊瑋,高欣,喬彬,楊向瑩,李小林,張惠媛,石嵩,張捷*,周熙成

        1(北京海關(guān) 技術(shù)中心,北京,100026)2(皇崗海關(guān) 機(jī)關(guān)服務(wù)分中心,廣東 深圳,518000)

        甲型肝炎病毒(hepatitis A virus, HAV)是人類病毒性疾病的重要病原體,它是一種無包膜的核糖核酸(RNA),屬于小核糖核酸病毒科,通過人與人之間的接觸或攝入受污染的水或食物感染健康人群。它廣泛存在于自然界中,感染甲肝病毒的潛伏期可持續(xù)15~50 d[1]。據(jù)統(tǒng)計(jì)全世界約有130萬人死于病毒性肝炎,其中甲型肝炎病毒急性感染約11 000例死亡、戊型肝炎病毒約44 000例死亡,兩者均會(huì)引起肝炎和肝功能衰竭[2]。最常見的食物包括雙殼軟體動(dòng)物貝類、各種鱗莖類蔬菜等易感染此類病毒而引發(fā)疾病,該病毒在冷藏食品也較常見[3]。

        傳統(tǒng)的甲型肝炎病毒檢測(cè)方法耗時(shí)費(fèi)力,無法快速有效地檢測(cè)甲型肝炎病毒。比如細(xì)胞培養(yǎng)法,甲型肝炎病毒難以適應(yīng)細(xì)胞,培養(yǎng)周期太長(zhǎng),因此無法進(jìn)行檢測(cè)。目前甲型肝炎病毒的檢測(cè)方法主要包括分子生物學(xué)、DNA微陣列和電化學(xué)免疫傳感器等。實(shí)驗(yàn)人員采用普通PCR法對(duì)甲肝病毒的目標(biāo)基因進(jìn)行特異性擴(kuò)增,但對(duì)于給定的樣品PCR無法定量負(fù)荷病毒,靈敏度不高,所以該法在檢測(cè)中受限;熒光RT-PCR法,耗時(shí)較短價(jià)格相對(duì)便宜,在實(shí)驗(yàn)室中較為推廣,但精細(xì)操作對(duì)實(shí)驗(yàn)人員技術(shù)要求較高,同時(shí)缺乏對(duì)甲肝病毒感染性的指征。近年來DNA微陣列可以替代PCR法,鑒定樣品序列的單核苷酸多態(tài)性,但其價(jià)格昂貴,不適用于實(shí)驗(yàn)室常規(guī)檢測(cè)[4-6]。電化學(xué)免疫傳感器可以同時(shí)檢測(cè)到不同的甲肝病毒抗原,靈敏度較高,但同樣價(jià)格昂貴,需要大量的納米金顆粒和蛋白A,步驟復(fù)雜從而增加檢測(cè)成本[7]。因此為了進(jìn)一步提高口岸檢出進(jìn)出境食品中甲型肝炎病毒的效率,本研究針對(duì)甲型肝炎病毒,采用近紅外dylight 800熒光染料制備近紅外免疫層析試紙條進(jìn)行快速檢測(cè),可用于貝類等食品中甲肝病毒的高效檢測(cè),為進(jìn)出口食品安全監(jiān)管提供可靠的技術(shù)支持。

        1 實(shí)驗(yàn)材料

        1.1 病毒

        甲肝病毒,由中國(guó)疾病預(yù)防控制中心病毒病預(yù)防控制所提供。

        1.2 主要儀器與試劑

        高速低溫離心機(jī),德國(guó)Sigma公司;超純水儀,美國(guó)賽默飛公司;高壓滅菌設(shè)備,江蘇萬創(chuàng)滅菌設(shè)備科技有限公司;近紅外點(diǎn)熒光掃描儀,北京博潤(rùn)福得科技發(fā)展有限公司。

        熒光染料dylight 800,美國(guó)賽默飛世爾公司;鼠抗甲肝病毒單克隆抗體(monoclonal antibody,McAb)、羊抗雞免疫球蛋白,上海慧耘生物科技公司、羊抗甲肝病毒衣殼蛋白多克隆抗體,艾博抗Abcam公司;TaqDNA聚合酶、試劑盒,生物工程有限公司。

        2 實(shí)驗(yàn)方法

        2.1 近紅外熒光染料標(biāo)記甲肝病毒單克隆抗體

        標(biāo)記抗體的制備方法如下:

        參照文獻(xiàn)[22]所述方法,首先取100 μL磷酸鹽緩沖液稀釋好的鼠抗甲肝病毒單抗(質(zhì)量濃度為1 mg/mL),然后加入dylight 800熒光染料渦旋混勻后于室溫避光。1 h后加入100 μL磷酸鹽緩沖液混勻,終質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL。

        劃膜抗體的制備方法如下:

        參照文獻(xiàn)[22]所述方法,用劃膜液稀釋羊抗甲肝病毒多抗1.5 mg/mL,最后將標(biāo)記抗體放入磷酸鹽緩沖液中,4 ℃透析過夜,回收抗體作為最終標(biāo)記抗體。

        2.2 甲肝病毒近紅外免疫層析試紙條的制備

        將樣品墊、結(jié)合墊、抗體承載膜、吸水墊及反應(yīng)支持基質(zhì)按圖1所示依次搭接,切割機(jī)將其切成試紙條。采用劃線機(jī),將劃膜抗體(羊抗甲肝病毒多抗1.5 mg/mL)和羊抗雞IgY多抗劃在抗體承載膜上,分別作為檢測(cè)線(T)和質(zhì)控線(C),檢測(cè)線、質(zhì)控線間距0.5 cm,室溫風(fēng)干。

        1-樣品墊;2-結(jié)合墊(含有近紅外熒光染料標(biāo)記抗體的玻璃纖維素膜);3-硝酸纖維素膜(抗體承載膜);4-檢測(cè)線;5-質(zhì)控線;6-吸水墊;7-反應(yīng)支持基質(zhì)

        2.3 定性檢測(cè)

        實(shí)驗(yàn)人員使用配制好的層析緩沖液分別稀釋標(biāo)記抗體(鼠抗甲肝病毒單抗)和羊抗雞免疫球蛋白IgY(稀釋比為1∶50、1∶2 000)(質(zhì)量濃度0.5 mg/mL),鼠抗甲肝病毒單抗稀釋液與羊抗雞免疫球蛋白IgY 按1∶1比例渦旋混勻。隨后在上述溶液中,滴加甲肝病毒稀釋液(100 μL病毒稀釋液+4 μL混合液)渦旋混勻,滴加至制備好的近紅外免疫層析試紙條樣品墊上,充分反應(yīng)15 min后,采用便攜式近紅外熒光掃描儀檢測(cè)。

        2.4 定量檢測(cè)

        標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制:用PBS稀釋液(含5%BSA、0.1%Tween 20)將1 mg/mL的HAV抗原(HAV 抗原為猴腎細(xì)胞培養(yǎng)后的滅活全病毒)進(jìn)行倍數(shù)系列稀釋,分別按照表1,制成不同濃度的稀釋樣品;根據(jù)數(shù)學(xué)統(tǒng)計(jì)原理,繪制成標(biāo)準(zhǔn)工作曲線。每個(gè)稀釋度樣本平行測(cè)量2次,取平均值作為測(cè)量值,以該值對(duì)應(yīng)的樣品濃度作標(biāo)準(zhǔn)工作曲線。

        表1 甲肝病毒實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系

        2.5 特異性實(shí)驗(yàn)

        在無菌條件下,將5種食源性病毒包括腺病毒、諾如病毒、輪狀病毒W(wǎng)a、輪狀病毒SALL和腸道病毒71型(EV71)原液稀釋,稀釋液按3∶7體積比與4 μL制備好的層析混合液渦旋混合,隨后滴加到樣品墊上,室溫放置15 min后,近紅外熒光掃描儀檢測(cè)近紅外免疫層析試紙條。

        3 評(píng)價(jià)方法

        3.1 RT-PCR檢測(cè)方法

        貝類、海螺絲、蟶子等15份樣品,均來自北京海關(guān)技術(shù)中心食品實(shí)驗(yàn)室。

        貝類、海螺絲等前處理方法均按照國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)[8]進(jìn)行檢測(cè)。

        3.2 甲肝病毒實(shí)時(shí)熒光RT-PCR

        引物序列如下所示:

        正向引物5’-TTTCCGGAGCCCCTCTTG-3’,

        反向引物5’-AAAGGGAAATTTAGCCTATAGCC-3’

        探針序列5’-FAM-ACTTGATACCTCACCGCCG TTTGCCT-TAMRA-3’

        采用甲肝病毒試劑盒試劑盒:sureFast Norovirus/Hepatitis A 3plex。

        3.3 染毒實(shí)驗(yàn)組貝類樣品的處理

        用鑷子等工具分別稱取貝類、海螺絲、蟶子等樣品(未檢出甲肝病毒)各消化腺1g,用7 mL甘氨酸緩沖液(pH 9.6)用超聲波方法對(duì)消化腺進(jìn)行粉碎,并將上清液加入,進(jìn)行樣品濃縮。

        3.4 用實(shí)際樣品進(jìn)行符合性評(píng)價(jià)

        按照所建立的甲肝病毒近紅外免疫層析法,對(duì)15份實(shí)際樣品(北京海關(guān)技術(shù)中心食品實(shí)驗(yàn)室)進(jìn)行檢測(cè),并將近紅外檢測(cè)結(jié)果與熒光RT-PCR法進(jìn)行比較。

        3.4.1 貝類樣品甲肝病毒的富集

        按照3.3建立的方法,15份貝類樣品進(jìn)行前處理后充分研磨。采用離心分離過濾膜過濾的方式形成待測(cè)物。

        3.4.2 檢測(cè)

        來自實(shí)驗(yàn)室的15份貝類樣品分別按照3∶7比例再加4 μL混合液滴加到近紅外免疫試劑條樣品墊上,分別做兩個(gè)平行實(shí)驗(yàn),室溫反應(yīng)15 min后用近紅外熒光掃描儀檢測(cè)。

        4 結(jié)果分析

        4.1 定性檢測(cè)

        根據(jù)2.3定性檢測(cè)方法,發(fā)現(xiàn)若貝類、蟶子等食品樣品中含有甲型肝炎病毒(目標(biāo)病毒),目標(biāo)病毒將與結(jié)合墊中的熒光標(biāo)記單抗形成甲肝病毒抗原-抗體復(fù)合物。然后抗原抗體復(fù)合物通過毛細(xì)管作用移動(dòng)至檢測(cè)線,發(fā)生抗原抗體免疫反應(yīng),被它們各自的特異性多抗捕獲。結(jié)果表明,若甲肝病毒近紅外免疫層析試紙條質(zhì)控線(T)區(qū)域不存在(未出現(xiàn)熒光發(fā)射峰),則認(rèn)為該測(cè)試無效。若T線區(qū)域、C線區(qū)域同時(shí)出現(xiàn)熒光發(fā)射峰,則認(rèn)為檢測(cè)結(jié)果為陽性;若僅T線區(qū)域測(cè)試出現(xiàn)熒光發(fā)射峰則為陰性結(jié)果。

        圖2 甲肝病毒低噪聲激發(fā)式熒光檢測(cè)圖

        4.2 定量檢測(cè)

        按照2.4定量檢測(cè)方法進(jìn)行試驗(yàn),用移液器加50 μL已知濃度的甲肝病毒至樣品墊,待樣品吸收后再滴加50 μL配制好的層析液,室溫靜置10 min。低噪聲激發(fā)式熒光掃描儀檢測(cè)甲肝病毒標(biāo)準(zhǔn)品,樣品中的目標(biāo)檢測(cè)物甲肝病毒采用近紅外光標(biāo)記,甲肝病毒濃度通過反射光強(qiáng)度表征。掃描獲得檢測(cè)線(T)和質(zhì)控線(C)的熒光峰值,若兩者同時(shí)出現(xiàn)發(fā)射峰,則為陽性樣品。將樣品測(cè)試2次后取平均值,檢測(cè)結(jié)果見表2。

        表2 不同質(zhì)量濃度甲肝病毒標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)應(yīng)檢測(cè)結(jié)果

        以檢測(cè)峰值對(duì)相應(yīng)的樣品質(zhì)量濃度制作標(biāo)準(zhǔn)工作曲線,如圖3所示得出計(jì)算公式Y(jié)=0.018 8x+0.232 5,R2=0.958 8。結(jié)果顯示,甲肝病毒質(zhì)量濃度在1~100 μg/mL時(shí),熒光比值與質(zhì)量濃度線性關(guān)系良好,即線性范圍1~100 μg/mL。檢測(cè)限為1 μg/mL。

        圖3 甲肝病毒近紅外免疫層析標(biāo)準(zhǔn)曲線

        4.3 特異性實(shí)驗(yàn)

        按照2.5實(shí)驗(yàn)方法將5種病毒包括諾如病毒、輪狀病毒W(wǎng)a病毒株(rotavrius strain Wa)、腸道病毒71型(EV71)等原液稀釋后,分別滴加入甲肝病毒近紅外免疫層析試紙條進(jìn)行檢測(cè)。僅甲肝病毒檢測(cè)線區(qū)域和質(zhì)控線區(qū)域出現(xiàn)熒光峰值,其余5種病毒均未出現(xiàn)檢測(cè)線發(fā)射峰。由此可見本團(tuán)隊(duì)研制的甲肝病毒免疫層析試紙條與腺病毒、腸道病毒EV71、輪狀病毒、諾如病毒等均無交叉反應(yīng)。

        4.4 近紅外免疫層析法、熒光RT-PCR法比較

        按照3.4實(shí)驗(yàn)方法對(duì)北京海關(guān)技術(shù)中心實(shí)驗(yàn)室15份貝類樣品進(jìn)行檢測(cè)。檢測(cè)結(jié)果發(fā)現(xiàn)15份貝類、蟶子等樣品的近紅外免疫層析法和熒光RT-PCR檢測(cè)結(jié)果一致,結(jié)果均為陰性(如表3所示)。甲肝病毒近紅外熒光法與熒光RT-PCR法的符合率達(dá)到100%。

        表3 本方法與熒光RT-PCR法比較

        5 討論

        甲型肝炎病毒是一種正鏈RNA病毒,非細(xì)菌性肝炎的重要病原體[2],易被其感染的食物類別多為海鮮,包括貝類、蟶子、生的肉類等缺少熱處理的食品[9-11]。研究發(fā)現(xiàn),甲型肝炎病毒(HAV)感染通常是自限型的并且誘導(dǎo)永久的主動(dòng)免疫。目前RT-PCR是最為通用、常見的檢測(cè)法,但其檢測(cè)特異性和靈敏性不是很高[12]。近年來,澳大利亞、美國(guó)、日本等檢測(cè)食源性甲肝病毒,通常采用RT-PCR檢測(cè)目標(biāo)基因,可達(dá)到10~40 copy的病毒核酸。但由于食品種類繁多,成分較為復(fù)雜,大多會(huì)富含RT-PCR的抑制劑,靈敏度會(huì)很大程度地減低,因此該法存在一些局限性。20世紀(jì)90年代初期,研究人員采用斑點(diǎn)金免疫結(jié)合法進(jìn)行甲肝病毒抗體的檢測(cè)[13]。其優(yōu)點(diǎn)是操作簡(jiǎn)單快捷,膠體金試劑保存時(shí)間長(zhǎng),但實(shí)驗(yàn)人員易將弱陽性標(biāo)本誤讀,性價(jià)比和準(zhǔn)確度不高。基因芯片檢測(cè)法具有信息量大、高度平行化和集成化等特點(diǎn),適用于各種病原體的篩查和診斷。目前基因芯片法需建立穩(wěn)定的標(biāo)準(zhǔn)程序才能在病毒篩查和傳染病的預(yù)防中廣泛應(yīng)用[14]。2014年喬煜婷等[15]將制備的特異性甲肝病毒免疫磁珠與SYBR-GREEN熒光定量技術(shù)聯(lián)合使用成功檢測(cè)了水體中的甲型肝炎病毒,該法主要適用于環(huán)境中甲肝病毒污染狀況的評(píng)價(jià)。

        近年來,近紅外熒光免疫層析技術(shù)在醫(yī)學(xué)診斷、環(huán)境微生物、生物物理學(xué)等各領(lǐng)域受到廣泛關(guān)注[16-18]。近紅外免疫層析技術(shù)是將近紅外熒光與免疫層析技術(shù)相結(jié)合的一種新型側(cè)向流技術(shù),具有背景熒光低、檢測(cè)信噪比高,檢測(cè)靈敏度高的特點(diǎn)。2017年JIHANE等[19]通過將甲肝病毒HAV固定在碳納米粉末糊狀電極的表面上,開發(fā)了用于甲型肝炎病毒抗原(HAV)檢測(cè)的間接競(jìng)爭(zhēng)性電化學(xué)免疫傳感器,具有良好的穩(wěn)定性和高生物選擇性,也成功應(yīng)用于水樣中HAV的測(cè)定,但檢測(cè)成本昂貴,操作步驟繁瑣,難以在實(shí)驗(yàn)室推廣。本研究利用近紅外染料標(biāo)記抗體,依據(jù)雙抗體夾心免疫層析原理制備甲肝病毒免疫層析試紙條,選用熒光探針Dyligh 800信噪比較高,靈敏度較高,生物基體極少在該區(qū)域自發(fā)熒光,使得背景熒光干擾較少?;?50 nm波長(zhǎng)的熒光免疫層析試紙條對(duì)甲肝病毒的最低檢測(cè)限為1 μg/mL。

        2015年開始本團(tuán)隊(duì)采用近紅外熒光染料dyllight 800作為標(biāo)記,研制出一系列近紅外熒光免疫層析試紙條檢測(cè)食源性致病微生物, 檢測(cè)對(duì)象包括沙門氏菌、副溶血弧菌、霍亂弧菌、諾如病毒等[20-23]。本研究將近紅外熒光探針與免疫層析技術(shù)結(jié)合制備了甲肝病毒近紅外免疫層析試紙條,該試紙條能夠應(yīng)用于進(jìn)出口食品類樣品中的甲肝病毒實(shí)時(shí)檢測(cè),具有結(jié)果準(zhǔn)確、高效的特點(diǎn),同時(shí)便于攜帶,能夠?yàn)槭称钒踩谋O(jiān)管、現(xiàn)場(chǎng)查驗(yàn)提供強(qiáng)有力的技術(shù)支撐。

        致謝感謝中國(guó)疾病預(yù)防控制中心病毒病預(yù)防控制所張曉光老師研究團(tuán)隊(duì)和中國(guó)科學(xué)研究院理論物理所舒咬根研究團(tuán)隊(duì)對(duì)本研究的大力支持和幫助。

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