陳蜜 岳仁葉 李智 王剛林 馬楠
摘 要 MicroRNA(miRNA)的檢測在癌癥診斷和治療中具有重要意義。本研究設(shè)計了DNA序列,組裝了3組金納米粒子-量子點復合物, 基于此疊加構(gòu)建了以熵驅(qū)動催化循環(huán)為模型的單重、雙重和多重循環(huán)放大的3種納米傳感器。疊加的傳感器中,上層復合物催化循環(huán)解組裝輸出的產(chǎn)物作為下層復合物的催化鏈,引發(fā)其解組裝,釋放更多熒光信號,實現(xiàn)了多重放大。傳感器中每疊加一個核酸催化循環(huán)體系,檢測限降低一個數(shù)量級,最終構(gòu)建的傳感器的檢測限達到fmol/L級。本研究通過串聯(lián)熵驅(qū)動的核酸催化循環(huán)體系,構(gòu)建了動態(tài)可調(diào)的、可定量檢測細胞中不同表達水平miRNA的新型納米傳感器。
關(guān)鍵詞 miRNA; 金納米粒子; 量子點; 核酸循環(huán); 熒光檢測
1 引 言
MicroRNA(miRNA)是一類內(nèi)源性的小尺寸的非編碼RNA分子,長度約為18~25個核苷酸[1~4]。miRNA主要通過與靶基因mRNA配對引導沉默復合體,降解mRNA或阻礙mRNA的翻譯[5]。miRNA不僅在生物調(diào)節(jié)途徑中起重要作用[6],也參與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展等病理過程[7]。miRNA的異常表達與癌癥的發(fā)生密切相關(guān),被認為是診斷癌癥的重要生物標志物[8~12]。然而,miRNA序列的高度同源性、尺寸小以及在生物體內(nèi)含量低等特點[13],使癌細胞中miRNA的精準、靈敏檢測極具挑戰(zhàn)性。在過去的十幾年中,研究者開發(fā)了很多技術(shù)以提高檢測miRNA的靈敏度[14~17],如定量逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈式反應(yīng)(qRT-PCR)技術(shù)能靈敏地定量檢測低表達的miRNA[17,18],但該方法的儀器設(shè)備昂貴且耗時長。
近年來,作為一種有效的信號放大策略,核酸循環(huán)為檢測低濃度目標物提供了一個重要的技術(shù)平臺[19,20]。Yin等[21]采用雙鏈特異性核酸酶剪切與miRNA雜交的分子信標放大熒光信號,但核酸酶并不能普遍適用于復雜的生物環(huán)境體內(nèi); Wu等[22]利用兩個發(fā)夾DNA間循環(huán)催化反應(yīng)檢測細胞內(nèi)低表達的mRNA,一個靶目標分子經(jīng)過發(fā)夾DNA循環(huán)反應(yīng)后,輸出多個熒光信號,但熒光染料光學性能的局限性影響了方法靈敏度。
金納米粒子(GNP)具有比表面積大、生物相容性好和毒性低等特性,可作為載體將核酸運輸至細胞內(nèi)[23,24],并且對熒光基團有很好的淬滅能力[25]。與傳統(tǒng)的熒光染料相比, 量子點(Quantum dots, QDs)具有發(fā)射波長可調(diào)節(jié)、量子產(chǎn)率高、光穩(wěn)定性好等優(yōu)點,被廣泛應(yīng)用于生物傳感、生物成像領(lǐng)域[26~29]。 Ma等[30]以DNA為模板一步合成生物功能化的水相碲化鎘量子點(CdTe QDs),簡化了QDs生物功能化的步驟,為構(gòu)建基于QDs的納米傳感器提供了參考。 Ma等[31]報導了以熵驅(qū)動核酸催化循環(huán)[32]為模型構(gòu)建的GNP和QDs組裝的納米傳感器,檢測細胞內(nèi)miRNA,檢出限達到pmol/L級。盡管對于提高檢測miRNA靈敏度的研究取得了一些進展[33,34],但不同癌細胞中miRNA表達水平差異顯著,常規(guī)傳感器的檢測限和線性檢測區(qū)間限制了其在定量分析miRNA中的實際應(yīng)用。
本研究通過合理設(shè)計DNA序列,組裝了3組金納米粒子-碲化鎘量子點復合物(GNP-QDs composite, GQC),并依次疊加構(gòu)建了以熵驅(qū)動催化循環(huán)為模型的單重、雙重和多重循環(huán)放大的3種納米傳感器。疊加的傳感器中,上層GQC催化循環(huán)解組裝輸出的產(chǎn)物作為下層GQC的催化鏈,引發(fā)其解組裝,釋放更多熒光信號,實現(xiàn)QDs熒光信號的多重放大。通過疊加多個催化循環(huán)體系[35]調(diào)控傳感器的線性檢測區(qū)間,降低檢測限,用于定量檢測不同細胞內(nèi)不同表達水平的miRNA。
2 實驗部分
2.1 儀器與試劑
FE20K酸度計(美國Mettler Toledo公司); AvaSpec-ULS2048-USB2 熒光光譜儀(荷蘭Avantes公司);? Tecnai G2 F20 S-Twin透射電鏡 (美國FEI公司);? Agilent 8453 紫外-可見分光光度計(美國 Agilent 公司); GelDoc-It 310 UVP 凝膠成像儀(美國 UVP 公司); Mini-PROTEAN Tetra 垂直電泳裝置(美國 Bio-Rad 公司); DYCP-31DN瓊脂糖水平電泳儀(北京六一儀器廠); Infinite M200 PRO多功能酶標儀(美國TECAN公司); Nano ZS90 激光粒度儀(英國 Malvern 公司); Olympus IX71 倒置熒光顯微鏡(日本 Olympus公司)。
氯化鎘(CdCl2, 99.99%)、谷胱甘肽(GSH, 98%)、碲粉(Te, 99.99%)、硼氫化鈉(NaBH4, 98%)、氯金酸(HAuCl4·3H2O, 99.9%)均購自Sigma-Aldrich公司; 瓊脂糖(Agrose,99%)購自Biowest公司; 檸檬酸鈉(99%)購自百靈威公司; 三(羥甲基)氨基甲烷(Tris)、過硫酸銨(APS)、MgCl2、NaCl、NaOH、乙酸(HAc)、HNO3、無水甲醇(CH3OH)均至少為分析純,購自國藥集團化學試劑有限公司;? HCl購自強盛功能公司; 聚丙烯酰胺(40%)、N,N,N',N'-四甲基乙二胺(TEMED,98%)、甘油(99.0%)購自北京索萊寶公司; 二硫蘇糖醇(DTT, 99%)、6-巰基-1-己醇(MCH, 98.0%)購自阿拉丁試劑公司; 三(2-羧乙基)膦鹽酸鹽(TCEP,98.0%)購自TCI公司; HeLa細胞系購自中國典型培養(yǎng)物保藏中心; 22Rv1細胞系購自上海生物科學研究院細胞資源中心; DMEM培養(yǎng)基、RPMI 1640培養(yǎng)基、1×PBS緩沖溶液、胎牛血清、胰蛋白酶均購自Hyclone公司; miRcute miRNA分離試劑盒購自Tiangen Biotech公司。巰基修飾(Thiolated)DNA購自Takara公司; 熒光染料修飾的DNA購自上海生工生物工程有限公司;硫代DNA以及其它未修飾DNA(序列見表1)購自IDT公司。實驗用水為超純水(Milli-Q Direct8 超純水系統(tǒng),美國Millipore公司)。
2.2 實驗方法
2.2.1 以硫代DNA為模板一步合成CdTe QDs
按文獻\[30\]的方法,用Te和NaBH4制備Te離子的前驅(qū)液; 以GSH為配體,與CdCl2配制Cd離子前驅(qū)液,與硫代DNA混合后加入Te離子前驅(qū)液, 混勻后在100℃下反應(yīng),可一步合成DNA4修飾CdTe QDs(Q1)、DNA5修飾CdTe QDs(Q2)和DNA6修飾CdTe QDs(Q3)。用30 kD離心超濾管離心超濾(12500 r/min, 3 min)兩次,重新分散于水中。根據(jù)文獻\[36\]方法計算濃度。
2.2.2 GNP的合成以及表面DNA的修飾 采用檸檬酸還原法合成約13 nm的GNP[32],用 0.22 μm微孔濾膜過濾,紫外可見分光光度計測定520 nm處吸光度, 并計算GNP的濃度(摩爾吸光系數(shù)為2.7×108 L/(cm·mol)。? 在巰基DNA1、 DNA2和DNA3中加入TCEP, 孵育2 h, 將GNP和巰基DNA按1∶80的摩爾比例混合,37℃恒溫搖蕩1 h后離心,加入檸檬酸鈉-鹽酸緩沖溶液(pH 3),搖蕩1 h,12500 r/min離心7 min,分散在1×PBS中,得到GNP -DNA1(G1)、GNP-DNA2(G2)和GNP -DNA3(G3)。
2.2.3 GQC的組裝 將G1與L1按摩爾比1∶60混合,加入NaCl(終濃度50 mmol/L)和MgCl2(終濃度2.5 mmol/L),于37℃反應(yīng)過夜,12000 r/min離心6 min,分散在1×PBS緩沖液中。將組裝好的G1-L1與Q1按照GNP與QDs摩爾比為1∶60混合,加入NaCl(終濃度50 mmol/L)和MgCl2(終濃度2.5 mmol/L) 37℃反應(yīng)3 h,緩慢降至室溫。12000 r/min離心7 min,分散于1×PBS緩沖液中,得到復合物GNP-QDs1(GQC1)。按同樣步驟,分別通過L2和L3將G2和Q2、G3和Q3組裝成GQC2和GQC3。
2.2.4 GNP修飾DNA數(shù)量的測定 將序列與DNA1一致的FAM-DNA1按照2.2.2節(jié)的步驟修飾在GNP表面,取100 μL FAM-DNA1-GNP(36.5 nmol/L)與80 μL DTT(10 mmol/L)混合,振蕩12 h,14000 r/min離心5 min,收集上清液,酶標儀測定熒光強度,激發(fā)波長480 nm,發(fā)射波長520 nm。酶標儀測定濃度分別為10、20、30、40和50 nmol/L 的FAM-DNA1熒光強度,繪制標準曲線,通過標準曲線計算GNP表面連接的FAM-DNA1的濃度,與GNP濃度的比值即為GNP表面修飾DNA1的數(shù)量。GNP表面修飾的DNA2和DNA3的數(shù)量按照以上方法測定。
將與L1序列一致的FAM-L1與G1按照2.2.3節(jié)組裝,測定GNP連接的L1條數(shù)。采用同樣方法測定和計算GNP表面連接的L2和L3的數(shù)量。
2.2.5 納米復合物特異性測試
用1×PBS緩沖液配制一系列含5 nmol/L GNP 的GQC1溶液,并與 F1(終濃度60 nmol/L)混合,加入miR-21(終濃度為100、10、2、1、0.2、0.1和 0 nmol/L); 對照組(C' control)的GQC1中加入終濃度為100 nmol/L miR-141和 60 nmol/L F1, 37℃反應(yīng)6 h,12000 r/min離心3 min,取上清液測熒光信號。
2.2.6 納米傳感器的構(gòu)建和循環(huán)檢測DNA 由GNP濃度為5 nmol/L GQC1構(gòu)建傳感器C1;? 由GNP濃度均為5 nmol/L GQC1和GQC2混合(即串聯(lián)),構(gòu)建傳感器C2; 由GNP濃度分別為5、5和10 nmol/L的 GQC1、GQC2和GQC3混合,構(gòu)建傳感器C3。
在3組傳感器C1、C2和C3中加入對應(yīng)的fuel DNA(終濃度分別是60 nmol/L F1; 60 nmol/L F1和60 nmol/L F2; 60 nmol/L F1、60 nmol/L F2和120 nmol/L F3),加入靶分子C'至終濃度分別是100、10、2、1、0.5、0.2、0.1、0.05、0.02、0.01、0.005、0.002、0.001和0 nmol/L,在37℃分別反應(yīng)6、8和12 h。離心,測定上清液熒光信號,下層沉淀用1×PBS緩沖液分散后,進行瓊脂糖凝膠電泳分析。
2.2.7 固定細胞成像 在48孔板中接種HeLa細胞和22Rv1細胞,每孔細胞數(shù)約2×104個,在細胞培養(yǎng)箱中37℃孵育24 h。棄去培養(yǎng)液,細胞用甲醇固定,加入傳感器C1、C2和C3以及相應(yīng)的Fuel DNA,培養(yǎng)箱中37℃孵育6、8和12 h,用1×PBS緩沖液清洗細胞,采用熒光倒置顯微鏡成像。
2.2.8 提取RNA定量檢測miRNA 在細胞培養(yǎng)瓶中分別接種HeLa細胞和22Rv1細胞,待2種細胞長滿培養(yǎng)瓶后,采用試劑盒提取細胞的總RNA,測量總RNA在260 nm處的吸光度(1 OD=40 ng/μL RNA)。將提取的RNA稀釋,與相應(yīng)FuelDNA混合后加入對應(yīng)的傳感器中,測定熒光光譜,計算熒光恢復率,并根據(jù)線性曲線計算miR-141在兩種細胞中的表達量。
3 結(jié)果與討論
3.1 QDs和GNP組裝和表征
DNA功能化CdTe QDs的吸收光譜和熒光譜如圖1A所示, QDs的最大吸收峰位于571 nm(曲線a),最大發(fā)射波長為627 nm(曲線b), 計算QDs的量子產(chǎn)率為17.6%[32]。采用透射電鏡和高分辨透射電鏡對QDs進行表征(圖1B), QDs直徑為(3.43±0.18) nm。QDs進行凝膠電泳圖譜見圖1C,QDs表面大多修飾了一條DNA鏈。
GNP電鏡表征圖如圖2A所示,其直徑為(15.48±0.23) nm。使用DTT法測得每個GNP表面修飾了36條巰基DNA和20條Linker DNA。瓊脂糖電泳表征圖(圖2B)和電鏡表征圖(圖2C)都表明GNP和QDs形成了組裝體,且每個GNP表面組裝了約12個QDs[32]。
3.2 串聯(lián)傳感器的構(gòu)建以及可行性驗證
本研究以熵驅(qū)動核酸催化循環(huán)為模型構(gòu)建納米傳感器,實現(xiàn)檢測信號的放大。在傳感器C1中,Q1通過L1與G1組裝成GQC1,由于熒光共振能量轉(zhuǎn)移作用,Q1的熒光被G1猝滅,miR-141作為GQC1的靶分子,進攻作用位點Toehold 1,將G1取代,由于G1與Q1距離增大,不能發(fā)生熒光共振能量轉(zhuǎn)移,Q1的熒光信號恢復。同時,作用位點Toehold 2暴露,F(xiàn)1與之結(jié)合,將Q1從組裝中取代出來,同時又置換出miR-141,miR-141繼續(xù)進攻下一個作用位點Toehold 1,釋放Q1,如此循環(huán)下去,一個靶目標循環(huán)解組裝GQC1輸出多個Q1熒光信號(圖3A)。將GQC1和GQC2按1∶1比例疊加構(gòu)建傳感器C2,miR-141作為靶向物催化解組裝GQC1中置換出的Q1作為GQC2的催化鏈,與F2通過Toehold 3和Toehold 4兩作用位點,按照上述循環(huán)方式繼續(xù)催化解組裝GQC2,釋放Q2。如此,在傳感器C2中輸入一個靶目標分子,能夠輸出多個Q1和Q2的熒光信號;? 將GQC1、GQC2和GQC3按1∶1∶2比例疊加構(gòu)建傳感器C3,GQC2中被Q1催化解組裝輸出的Q2又作為GQC3的催化鏈,與F3通過Toehold 5和Toehold 6兩作用位點催化解組裝GQC3,釋放Q3,如此,在傳感器C3中,輸入一個靶目標能夠輸出多個Q1、Q2和Q3的熒光信號(圖3B),檢測靶目標miR-141對應(yīng)的熒光信號,得到多重放大。
采用凝膠電泳表征單鏈DNA間雜交、鏈取代反應(yīng),以驗證該實驗設(shè)計的可行性。如圖4所示,泳道g對應(yīng)在GQC2的單鏈組裝體加入對應(yīng)的催化鏈(DNA4)和F2后解組裝的條帶;? 泳道h對應(yīng)將GQC1和GQC2的單鏈組裝體1∶1串聯(lián),只加入了GQC1的靶目標(0.05×C')和F1和F2的情況; 泳道h中同樣也出現(xiàn)了GQC2單鏈組裝體解組裝的條帶, 并且條帶的熒光強度比泳道g中的條帶的熒光強度高,表明將核酸循環(huán)串聯(lián)可實現(xiàn)信號的多重放大。
考察了GQC1對miR-141的特異性響應(yīng)。將miR-21按照與L1(100 nmol/L)摩爾比分別為1、0.1、0.02、0.01、0.002、0.001和0的比例,與F1加入至C1傳感器中,與對照組(C' control)相比,GQC1的熒光強度基本沒有變化(圖5),即沒有QDs被miR-21從GQC1解組裝出來,表明此復合物可特異性識別miR-141。
3.3 串聯(lián)傳感器循環(huán)檢測miRNA
探究3組傳感器C1、C2和C3對不同濃度的靶向物C'(miR-141)的響應(yīng)能力,將與L1(100 nmol/L)不同摩爾比(1、01、002、001、0005、0002、0001、00005、00002、00001、000005、000002、000001和0)的C'和對應(yīng)的Fuel加入至C1、C2和C3傳感器中,采用瓊脂糖電泳和熒光光譜表征復合物解組裝的程度。
如圖6所示,隨著C'/L1的比例不斷增加, 復合物解組裝越完全,在泳道中遷移速率越快。傳感器C1、C2和C3分別對在0001~1、00001~1和000001~1(C'/L1摩爾比)范圍內(nèi)對靶向物有響應(yīng)。隨著核酸循環(huán)體系的疊加,對應(yīng)的傳感器的靈敏度也隨之提高,可響應(yīng)的靶向物濃度更低。因此,可通過改變疊加的循環(huán)體系的數(shù)量調(diào)控靶向物檢測范圍。
圖7A~7C是由不同比例的C'/L1分別滴定C1、C2和C3傳感器釋放的QDs的熒光譜圖,在不同C'/L比例下傳感器解組裝釋放的QDs熒光強度與瓊脂糖電泳表征的解組裝結(jié)果基本一致。圖7D為3組傳感器中QDs熒光恢復率(F/F0-1)與不同比例C'/L1的關(guān)系圖, 根據(jù)圖7D將3組傳感器檢測的C'/L1摩爾比例區(qū)間轉(zhuǎn)化為C'濃度區(qū)間,其中C1為10-10~10-7 mol/L,C2為10-11~10-7?mol/L,C3為10-12~10-7mol/L,可見每疊加一個核酸催化循環(huán)體系,其對應(yīng)的傳感器最低檢測范圍降低一個數(shù)量級。
根據(jù)圖8中3組傳感器的線性檢測曲線,計算C1、C2和C3的檢測限分別為47.3 pmol/L、4.23 pmol/L和552 fmol/L(3σ/k)。
3.4 固定細胞成像
miR-141在22Rv1細胞中表達含量高, 在HeLa細胞中表達含量較低[21,37]。將C1、C2和C3傳感器和對應(yīng)的Fuel與上述兩種固定細胞分別孵育6、8和12 h后的細胞熒光成像圖如圖9所示, 22Rv1細胞與3組傳感器孵育后均有明顯的熒光成像信號, 并隨著每一次核酸循環(huán)體系的疊加, 熒光信號強度也隨之增強; C1傳感器在HeLa細胞中并沒有明顯的QDs熒光成像信號,這是因為HeLa細胞中miR-141表達含量比較低[38], 其含量低于C1傳感器檢測限。選取相應(yīng)的傳感器定量檢測兩種細胞中miR -141的含量(表2),并與文獻對比發(fā)現(xiàn),提取RNA定量檢測miR -141的拷貝量與文獻報導的值相接近[21,37~39]。
4 結(jié) 論
通過將核酸循環(huán)體系疊加,開發(fā)了新型納米傳感器,與常規(guī)的納米傳感器相比,串聯(lián)的納米傳感器具有動態(tài)可調(diào)的線性檢測區(qū)間和檢測限,可用于靈敏檢測癌細胞中不同表達水平的miRNA分子。雖然通過串聯(lián)核酸循環(huán)能夠放大檢測信號,但伴隨著信號的放大,傳感器的背景信號也隨之增大,影響串聯(lián)傳感器的靈敏度的提高。 后續(xù)研究將對傳感器背景信號增加的原因進行分析,進一步提高串聯(lián)傳感器的靈敏度。
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