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        鹽脅迫下大麥酵母雙雜交文庫的構(gòu)建與鑒定

        2020-01-02 06:49:02李穎波宗營杰劉成洪陸瑞菊黃劍華杜志釗許建華王亦菲
        關(guān)鍵詞:雙雜交文庫大麥

        李穎波,宗營杰,劉成洪,陸瑞菊,黃劍華,杜志釗,許建華,王亦菲*

        (1上海市農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物技術(shù)研究所,上海市農(nóng)業(yè)遺傳育種重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海201106;2上海市農(nóng)業(yè)科技服務(wù)中心,上海200335;3光明種業(yè)有限公司,上海202171)

        隨著氣候變遷和化肥的大量使用,我國農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中土壤鹽漬化問題越來越突出[1]。鹽脅迫顯著抑制作物生長速度,降低分蘗和分枝數(shù)量,甚至致死,最終影響作物產(chǎn)量[2],已成為制約我國農(nóng)作物生長與產(chǎn)量的重要因素之一。以往研究表明,植物的耐鹽機(jī)制主要由滲透調(diào)節(jié)、離子平衡和抗氧化3種方式組成[2]。

        受到高濃度鹽離子脅迫后,一方面,植物在細(xì)胞質(zhì)中積累多種次生代謝產(chǎn)物,如糖醇類、糖類、氨基酸及其衍生物、胺類和硫酸酯膽堿等,以增加細(xì)胞滲透能力,抵抗鹽脅迫造成的細(xì)胞內(nèi)滲透壓改變[3];另一方面,植物通過細(xì)胞內(nèi)的離子通道、質(zhì)子泵和轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白等相關(guān)蛋白的作用將Na+轉(zhuǎn)運(yùn)到液泡內(nèi)隔離或外排,同時(shí)植物的抗氧化系統(tǒng)能清除鹽脅迫下產(chǎn)生的大量活性氧、自由基等強(qiáng)氧化性物質(zhì)[3]。目前研究發(fā)現(xiàn),SOS基因家族、HKT基因家族和NHX基因家族在細(xì)胞Na+平衡上起著關(guān)鍵作用[4-7]。但是,植物對鹽脅迫的抗性是一個(gè)復(fù)雜的生理過程,植物應(yīng)對鹽脅迫反應(yīng)中許多信號途徑仍有待闡明,研究鹽脅迫下植物細(xì)胞中的信號途徑和蛋白互作網(wǎng)絡(luò),將有助于提高對鹽脅迫下信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑的認(rèn)識(shí)。相對于其他禾本科作物,大麥對鹽的耐受性特別是組織耐受性較強(qiáng),同時(shí)大麥也是遺傳學(xué)研究中廣泛應(yīng)用的模式作物之一,且在國民經(jīng)濟(jì)生產(chǎn)發(fā)展中具有十分重要的地位。因此,研究大麥耐鹽機(jī)制,不僅對我國大麥耐逆育種的進(jìn)一步發(fā)展具有重要的理論意義和應(yīng)用價(jià)值,也對研究其他禾本科作物的耐鹽性具有重要的參考價(jià)值。

        酵母雙雜交是利用酵母遺傳學(xué)分析蛋白質(zhì)之間相互作用的方法,已廣泛用于蛋白質(zhì)組學(xué)、細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)和功能基因組學(xué)等領(lǐng)域[8]。酵母雙雜交不但可以檢測已知蛋白之間的相互作用,而且可以發(fā)現(xiàn)已知蛋白的互作蛋白,并且可以發(fā)現(xiàn)蛋白的新功能。近年來,研究者已在小麥、水稻、大麥、玉米等許多重要農(nóng)作物中構(gòu)建了不同組織、器官的酵母雙雜交cDNA文庫[9-11],為相關(guān)作物的蛋白質(zhì)組學(xué)研究奠定了基礎(chǔ)。本實(shí)驗(yàn)室前期獲得了與鹽脅迫相關(guān)的E3泛素連接酶基因,擬采用酵母雙雜交技術(shù)篩選其互作靶蛋白,研究其在大麥耐鹽反應(yīng)中的作用通路。

        本研究以鹽脅迫下的不同大麥組織為材料,利用Gateway技術(shù)構(gòu)建鹽脅迫下的大麥酵母雙雜交cDNA文庫,以期為深入研究植物應(yīng)對鹽脅迫信號網(wǎng)絡(luò)提供更多理論支持。

        1 材料與方法

        1.1 植物材料和鹽脅迫處理

        供試材料為‘花30’,是上海市農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物技術(shù)研究所細(xì)胞工程研究室育成的大麥品種?!?0’種子浸泡12 h露白后,挑取發(fā)芽一致的種子播于盆缽中培養(yǎng)(晝/夜溫度為22℃/20℃,相對濕度70%,晝/夜光周期為14 h/10 h)。當(dāng)幼苗處于2葉1心期時(shí),盆缽中加入400 mg/L的NaCl溶液進(jìn)行處理。在不同的處理時(shí)間(0 h、24 h、48 h),分別剪取根、莖、葉,迅速置于液氮中冷凍,-80℃冰箱保存。

        1.2 菌株和載體

        大腸桿菌 DH10B、酵母菌株 Y187、文庫載體 pDONR222、pGADT7-DEST均購自 Invitrogen公司(美國)。

        1.3 主要試劑

        Trizol Reagent、CloneMiner cDNA Library Construction Kit、FastTrack MAG mRNA Isolation Kit、UltraPureTMPhenol∶Chloroform∶Isoamyl alcohol(體積比25∶24∶1)購自 Thermo公司(美國);氨芐青霉素、卡那霉素購自Sigma公司(美國);DL2000 DNA Marker、Taq DNA Polymerase購自Takara公司(日本);瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒、質(zhì)粒小提試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司。

        1.4 大麥總RNA的提取和mRNA的分離

        參照李穎波等[12]方法提取鹽脅迫后的大麥根、莖和葉的總RNA。將根、莖和葉的總RNA按照濃度1∶1∶2混合后分離mRNA。mRNA分離參照FastTrack MAGmRNA Isolation Kit說明書進(jìn)行。分離的mRNA經(jīng)質(zhì)量及純度檢測后,用于后續(xù)的文庫構(gòu)建。

        1.5 酵母雙雜交初級cDNA文庫的構(gòu)建

        初級cDNA文庫構(gòu)建參照 CloneMiner cDNA Library Construction Kit說明書進(jìn)行。將純化得到的mRNA進(jìn)行cDNA第1鏈、第2鏈的合成及純化,加重組接頭attB1 Adapter。將cDNA利用Gateway技術(shù)與文庫載體質(zhì)粒pDONR222混合進(jìn)行BP重組反應(yīng);重組反應(yīng)產(chǎn)物經(jīng)Proteinase K處理、純化,利用電轉(zhuǎn)化法轉(zhuǎn)入大腸桿菌DH10B;加入1 mL SOC培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)1 h,即為cDNA初級文庫菌液;加甘油至終濃度為20%(V/V),-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.6 酵母雙雜交次級cDNA文庫的構(gòu)建

        次級cDNA文庫構(gòu)建參照CloneMiner cDNA Library Construction Kit說明書進(jìn)行。將得到的cDNA初級文庫菌液接種于含有相應(yīng)抗性的LB液體培養(yǎng)基中,30℃過夜培養(yǎng)后抽提質(zhì)粒,稀釋質(zhì)粒終質(zhì)量濃度至300 ng/μL。取出1μL質(zhì)粒,與文庫載體質(zhì)粒pGADT7-DEST混合進(jìn)行LR重組反應(yīng);反應(yīng)產(chǎn)物經(jīng)Proteinase K處理、純化,利用電轉(zhuǎn)化法轉(zhuǎn)入大腸桿菌DH10B。收集單克隆,加入3 mL SOC培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)1 h,即為酵母雙雜交次級cDNA文庫菌液;加甘油至終濃度為20%(V/V),-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.7 酵母文庫構(gòu)建

        將次級cDNA文庫菌液接種于含有相應(yīng)抗性的LB液體培養(yǎng)基中,30℃過夜培養(yǎng)后提取質(zhì)粒。將5μg文庫質(zhì)粒用PEG/LiAc法轉(zhuǎn)入酵母菌株Y187中,涂布于SD/-Leu平板上。于28℃培養(yǎng)3—6 d后收集單克隆,加甘油至終濃度為50%(V/V),-80℃保存。

        1.8 文庫庫容量鑒定

        分別從1.5、1.6和1.7轉(zhuǎn)化后的文庫原液中取10μL(酵母文庫取100μL),稀釋1 000倍(酵母文庫菌液稀釋10 000倍),吸出50μL(酵母文庫涂100μL)涂布于含有相應(yīng)抗性的LB平板上(初級文庫使用卡那霉素抗性、次級文庫使用氨芐青霉素抗性、酵母文庫使用SD/-Leu平板),37℃培養(yǎng)12—16 h(酵母文庫28℃培養(yǎng)2—3 d)后進(jìn)行統(tǒng)計(jì)。文庫滴度(CFU/mL)=克隆數(shù)×稀釋倍數(shù)/涂板體積;文庫總?cè)萘浚–FU)=文庫滴度×文庫總體積。

        1.9 文庫插入片段長度和重組率鑒定

        從各級文庫LB抗性平板上隨機(jī)挑取24個(gè)單克隆進(jìn)行菌落PCR,初級文庫菌落PCR使用的引物分別是 M13Forward(5’-TGTAAAACGACGGCCAGT-3’)和 M13Reverse(5’-TGTAAAACGACGGCCAGT-3’),次級文庫和酵母文庫菌落PCR使用的引物分別是pDEST22Forward(5’-TCGATGATGAAGATACCCCACC-3’)和pDEST22Reverse(5’-TCGATGATGAAGATACCCCACC-3’)。PCR反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性3 min;94℃ 30 s,56℃30 s,72℃3 min,30個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min,4℃保存。PCR產(chǎn)物用0.8%(W/V)的瓊脂糖凝膠電泳檢測,統(tǒng)計(jì)陽性克隆重組率,并鑒定插入片段長度。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 大麥總RNA提取、m RNA純化和dscDNA合成

        提取NaCl溶液脅迫后的大麥品種‘花30’根、莖、葉的總RNA,用1.2%(W/V)瓊脂糖凝膠電泳檢測,可見28S和18S條帶明亮清晰,表明該總RNA完整性好,未發(fā)生降解(圖1A)。分離純化混合后的總RNA樣品得到mRNA,電泳檢測mRNA質(zhì)量,結(jié)果顯示分離純化的mRNA在較大范圍內(nèi)呈彌散狀分布(圖1B),表明mRNA質(zhì)量良好。將mRNA反轉(zhuǎn)錄合成dscDNA,電泳顯示dscDNA呈彌散狀(圖1C),片段分布較廣。

        圖1 大麥總RNA、m RNA和dscDNA電泳鑒定Fig.1 Electrophoresis of total RNA,mRNA and dscDNA of barley

        2.2 初級cDNA文庫構(gòu)建和質(zhì)量鑒定

        將dscDNA和pDONR222載體重組,重組產(chǎn)物轉(zhuǎn)入大腸桿菌中,獲得初級cDNA文庫。從初級cDNA文庫中取10μL原始菌液稀釋1 000倍,取50μL涂布于LB抗性平板上,37℃培養(yǎng)12—16 h后單克隆數(shù)為1 500個(gè)。經(jīng)計(jì)算,文庫滴度為3.0×106CFU/mL,初級cDNA文庫總克隆數(shù)為1.2×107個(gè)。隨機(jī)挑取24個(gè)單克隆進(jìn)行菌落PCR,電泳結(jié)果顯示,僅1個(gè)克隆呈陰性,其余為陽性克隆,重組率為95.8%,插入片段長度多為500—2 000 bp,插入片段平均長度大于1 000 bp(圖2)。

        圖2 初級文庫cDNA插入片段的PCR檢測Fig.2 PCR detection of inserted cDNA fragments in primary library

        2.3 次級cDNA文庫構(gòu)建和質(zhì)量鑒定

        將初級cDNA文庫搖菌提取質(zhì)粒,并稀釋至300 ng/μL。以pGADT7-DEST為目的載體,LR重組反應(yīng)后轉(zhuǎn)入大腸桿菌DH10B中,獲得次級cDNA文庫。從次級cDNA文庫中取10μL原始菌液稀釋1 000倍,取50μL涂布于LB抗性平板上,37℃培養(yǎng)過夜后的單克隆數(shù)為1 300個(gè)。經(jīng)計(jì)算,文庫滴度為2.6×106CFU/mL,次級cDNA文庫總克隆數(shù)為1.04×107個(gè)。隨機(jī)挑取24個(gè)單克隆進(jìn)行菌落PCR,電泳結(jié)果顯示,除1個(gè)克隆呈陰性外,其余均為陽性克隆,重組率為95.8%,插入片段多為500—2 000 bp,插入片段平均長度大于1 000 bp(圖3),具有較好的多態(tài)性。

        圖3 次級文庫cDNA插入片段的PCR檢測Fig.3 PCR detection of inserted cDNA fragments in secondary library

        2.4 出芽酵母雙雜交文庫的構(gòu)建和質(zhì)量鑒定

        將次級cDNA文庫搖菌提取質(zhì)粒,取5μg轉(zhuǎn)入酵母菌株Y187中,涂布于SD/-Leu平板上,收集單克隆獲得酵母雙雜交文庫。從酵母文庫原始菌液中取100μL,稀釋10 000倍后涂布于SD/-Leu平板上,28℃培養(yǎng)2—3 d后單克隆數(shù)為700個(gè)。經(jīng)計(jì)算,文庫滴度為7.0×107CFU/mL。隨機(jī)挑取24個(gè)單克隆進(jìn)行菌落PCR,電泳結(jié)果顯示全部為陽性(圖4)。

        圖4 酵母雙雜交文庫cDNA插入片段的PCR檢測Fig.4 PCR detection of inserted cDNA fragments in yeast two hybrid library

        3 討論

        高質(zhì)量酵母雙雜交文庫是進(jìn)行大規(guī)?;プ鞯鞍缀Y選,獲得陽性互作蛋白的前提[13]。本研究提取了鹽脅迫后的大麥根、莖、葉的總RNA,并將其混合后用于構(gòu)建酵母雙雜交cDNA文庫,防止了文庫中組織特異性表達(dá)基因的丟失。

        評價(jià)文庫質(zhì)量有兩個(gè)重要指標(biāo),即cDNA文庫的庫容量和重組序列的完整性[14]。本研究分離純化后得到的mRNA呈彌散狀,具有較高的純度和完整性,保證了后續(xù)文庫構(gòu)建質(zhì)量。Clarke等[15]研究表明,滿足低豐度mRNA篩選要求的最低文庫滴定濃度為1.0×106CFU/mL。本研究中初級cDNA文庫滴度為3.0×106CFU/mL,次級cDNA文庫滴度為2.6×106CFU/mL,插入片段平均長度大于1 000 bp,表明所構(gòu)建的cDNA文庫覆蓋度和和完整性良好,可滿足常規(guī)文庫篩選要求。酵母雙雜交篩選主要有共轉(zhuǎn)化和交配兩種方法,其中交配法的效率相對較高[16]。本研究在次級cDNA文庫的基礎(chǔ)上,構(gòu)建了大麥酵母雙雜交文庫,可以最大程度地保證篩選到所有的與靶蛋白具有相互作用的蛋白質(zhì)分子。

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