白曉璟 廉小平 王玉奎 張賀翠 劉倩瑩 左同鴻 張以忠 謝琴琴 胡燈科 任雪松 曾 靜 羅紹蘭 蒲 敏 朱利泉,*
甘藍SI相關(guān)基因的克隆與分析
白曉璟1,**廉小平2,**王玉奎1張賀翠1劉倩瑩1左同鴻1張以忠1謝琴琴1胡燈科1任雪松2曾 靜3羅紹蘭1蒲 敏1朱利泉1,*
1西南大學農(nóng)學與生物科技學院, 重慶 400716;2西南大學園藝園林學院, 重慶 400716;3長江師范學院現(xiàn)代農(nóng)業(yè)與生物工程學院, 重慶 408100
甘藍自交不親和性(self-incompatibility, SI)是柱頭對相同單倍型的花粉產(chǎn)生的排斥或抑制反應(yīng)。鈣依賴蛋白激酶(calcium-dependent protein kinase, CDPK)是植物面對逆境信號時參與抗逆反應(yīng)的重要元件。本文通過甘藍自花授粉0~60 min的柱頭轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)分析, 成功地篩選到一個受自花授粉誘導上調(diào)表達的基因, 該基因與擬南芥中參與植物逆境信號傳導的鈣依賴蛋白激酶基因高度同源?;蜷_放閱讀框1599 bp, 編碼一種具有533個氨基酸殘基的親水性蛋白, 可在大腸桿菌胞質(zhì)中被誘導表達, 其相對分子質(zhì)量為60.4 kD, 表明BoCDPK14為活性胞質(zhì)蛋白。該基因起始密碼子上游2000 bp的核苷酸序列中含有脅迫反應(yīng)、激素反應(yīng)、代謝調(diào)節(jié)等應(yīng)答元件。在甘藍柱頭、花粉、花蕾、花瓣和葉片中表達, 且柱頭中的表達量低于花粉。熒光定量PCR結(jié)果證實,在0~60 min的表達變化趨勢與轉(zhuǎn)錄組分析結(jié)果一致。通過酵母雙雜交發(fā)現(xiàn), BoCDPK14蛋白激酶結(jié)構(gòu)域與谷氨酸受體通道蛋白BoGLR2.8d存在相互作用, 表明BoCDPK14可能是參與SI反應(yīng)過程的新蛋白。本研究結(jié)果表明BoCDPK14可能作為Ca2+信號元件參與甘藍柱頭響應(yīng)花粉刺激的分子過程, 這為甘藍自交不親和的進一步研究和利用提供了新內(nèi)容。
甘藍;基因; 酵母雙雜交; 自花授粉; 自交不親和
自交不親和性(self-incompatibility, SI)是植物限制自交衰退、促進雜交優(yōu)勢, 在長期進化過程中形成的一種復雜而完善的重要遺傳機制。甘藍屬于典型的孢子體自交不親和植物, 其分子機制主要集中在SI信號傳導元件協(xié)同作用抑制自花花粉萌發(fā)或花粉管生長。目前研究最多的是由SRK-ARC1- Exo70A1等介導的蛋白質(zhì)泛素化降解途徑。Gu等[1]以SRK胞內(nèi)激酶域為誘餌, 通過酵母雙雜交技術(shù)從甘藍型油菜柱頭cDNA文庫中鑒定出與SRK結(jié)合的靶蛋白——ARC1, 其在自交不親和信號傳遞過程中起正調(diào)控作用。Vanoosthuyse等[2]和Stone等[3]利用RNAi和反義抑制技術(shù)分別抑制琴葉擬南芥()和甘藍型油菜()的表達, 以及在甘藍型油菜中過表達均只能部分打破自交不親和性。在擬南芥中,基因以假性遺傳因子存在, 向自交親和擬南芥中僅僅轉(zhuǎn)入琴葉擬南芥的SCR和SRK也能表現(xiàn)出強自交不親和性[4-6]。由此表明ARC1可能并非SRK唯一下游信號元件。
Elleman等[7]證明油菜柱頭乳突細胞質(zhì)內(nèi)的鈣峰與后續(xù)花粉粒的水合相對應(yīng), Iwano等[8]在親和授粉后觀察到擬南芥乳突細胞胞質(zhì)鈣濃度變化, 在花粉水化后、花粉萌發(fā)前和花粉管穿過柱頭細胞壁這3個時段Ca2+濃度顯著上升, 胞質(zhì)Ca2+的急劇增加, 是由相同單倍型的SCR與SRK相互作用造成的, 表明Ca2+在調(diào)控柱頭應(yīng)答的信號傳導中起重要作用。Dearnaley等[9]測定了自交親和與自交不親和花粉授粉后在柱頭突觸細胞的細胞質(zhì)和細胞壁中的鈣離子流, 發(fā)現(xiàn)這些鈣離子流與接觸花粉粒細胞區(qū)域相關(guān), 只在特定的一部分區(qū)域形成。因此Ca2+可能介導授粉和SI信號轉(zhuǎn)導過程。
鈣依賴蛋白激酶(calcium-dependent protein kinase, CDPK)已被廣泛證明參與植物的多種抗逆反應(yīng)[10-12]。目前報道, 植物CDPKs在與Ca2+結(jié)合后被激活, 從而磷酸化下游底物, 底物通過與CDPK的互作將Ca2+信號級聯(lián)放大并向下游傳導, 進而調(diào)控信號轉(zhuǎn)導途徑下游基因的表達, 調(diào)控植物逆境脅迫應(yīng)答等生物學過程。由于授粉過程中的自花花粉刺激柱頭產(chǎn)生SI信號傳導的過程, 類似于逆境刺激植物細胞產(chǎn)生Ca2+依賴性CDPKs的過程, 那么CDPKs是否有可能通過某種分子過程與自交不親和相聯(lián)系呢?本研究通過轉(zhuǎn)錄組測序分析甘藍自花和異花授粉后基因表達情況, 首次成功地篩選到1個受自花授粉誘導上調(diào)表達的基因, 它與擬南芥中參與植物逆境信號傳導的鈣依賴蛋白激酶基因高度同源, 命名為。然后經(jīng)克隆、序列分析、生物信息學、特異性表達和原核表達、亞細胞定位、啟動子活性分析以及通過構(gòu)建酵母雙雜交cDNA文庫, 篩選與其互作的蛋白等深入探索, 證明該基因參與了柱頭響應(yīng)花粉刺激的分子過程, 初步提供一個聯(lián)系自交不親和性和植物抗逆性的“橋梁”蛋白質(zhì), 為甘藍SI的深入研究提供了新內(nèi)容。
甘藍高代自交不親和系‘A4’和‘F1’由西南大學十字花科蔬菜研究所提供, 于2017年3月底至4月初, 選取長勢相同的‘A4’花蕾, 在開花當天人工去雄, 用成熟的‘A4’和‘F1’花粉對‘A4’植株進行自花和異花授粉。然后進行2種方式取材, 一是分別選取自花、異花授粉0、15、30、60 min的柱頭, 立即取下置液氮中保存; 另一處理是同時取花蕾、花瓣、葉片、萼片、花藥和柱頭置液氮中保存?zhèn)溆谩A硗膺x取甘藍‘A4’花蕾, 使用CloneMiner II cDNA文庫構(gòu)建試劑盒(Invitrogen公司, 美國)構(gòu)建cDNA文庫, 酵母質(zhì)粒小提試劑盒、各種引物合成及測序等均由上海生工生物工程有限公司完成。
收集未授粉柱頭, 自花授粉15、30、60 min以及異花授粉15、30、60 min的柱頭, 并提取其總RNA,送北京百邁克公司用Illumina HiSeq高通量測序平臺測序分析, 測序類型為PE150, 構(gòu)建轉(zhuǎn)錄組文庫進行建庫測序, 獲得轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)。采用FPKM (Fragments Per Kilobase of transcript per Million fragments mapped)作為衡量轉(zhuǎn)錄本或基因表達水平的指標。在差異表達基因檢測過程中, 將差異倍數(shù)Fold Change≥2且錯誤發(fā)現(xiàn)率(False Discovery Rate) FDR<0.01作為篩選標準。根據(jù)基因在不同授粉處理后的相對表達量, 篩選在自花授粉后表達差異明顯、異花授粉后變化趨勢不明顯的基因。
利用MEGA7軟件和NCBI網(wǎng)站(http://www. ncbi.nlm.nih.gov/)上的蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫構(gòu)建BoCDPK14系統(tǒng)進化樹; 利用在線工具ProtParam (https://web. expasy.org/protparam/)分析BoCDPK14蛋白質(zhì)的理化性質(zhì); 用ProtScale在線分析軟件預測蛋白疏水性/親水性; 通過Predict protein (https://www.predictprotein. org/signin)等軟件對CDS的氨基酸編碼序列進行在線預測分析; 利用Bio-soft (http://www.bio-soft.net/ sms/index.html)軟件推導基因編碼的氨基酸序列; 從BRAD數(shù)據(jù)庫(http://brassicadb.org/brad/index. php)獲得基因啟動子序列(起始密碼子上游2000 bp), 以F: 5¢-GCTCTAGTCATCGCCGGC-3¢和R: 5¢-TGTACAATTATAATGTTCTTGAAAACGT-3¢為引物擴增該序列, 運用快速克隆技術(shù)將目的片段連接到T載體上后轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)細胞DH5α, 經(jīng)菌液PCR篩選陽性克隆后送上海生工生物工程有限公司測序。利用PlantCARE (http:// bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)分析其啟動子順式作用元件。
根據(jù)目的基因編碼區(qū)3¢端和5¢端的保守序列, 以甘藍A4柱頭cDNA和gDNA為模板, 利用Kodaq 2X PCR MasterMix(abm), 以F: 5¢-ATGGGGAATTG CTGTGGAAC-3¢和R: 5¢-CTCTGCATCGCGATTAT TAGAA-3¢為引物擴增基因全長。同時用NCBI網(wǎng)站和SMART (http://smart.embl-heidelberg.de/)在線分析CDPK14蛋白保守結(jié)構(gòu)域。根據(jù)分析結(jié)果, 結(jié)合酵母表達載體pGBDT7序列設(shè)計引物/, 以擴增BoCDPK14激酶結(jié)構(gòu)域序列(表1)。PCR產(chǎn)物經(jīng)1×104mg L-1瓊脂糖凝膠電泳, 回收目的片段, 運用快速克隆技術(shù)將目的片段連接到相應(yīng)載體上后轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)細胞DH5α, 經(jīng)菌液PCR篩選陽性克隆后送上海生工生物工程有限公司測序。
表1 基因克隆及定量PCR中的引物
根據(jù)目的基因編碼區(qū)3¢端和5¢端的保守序列以及原核表達載體pGEX-4T-1的序列, 用Primer Premier 6.0軟件設(shè)計引物/(表1), 以甘藍A4柱頭cDNA為模板擴增全長編碼區(qū)序列, PCR體系含8.5 μL ddH2O、12.5 μL Kodaq 2X PCR MasterMix緩沖液、上下游引物各1 μL和模板2 μL; 反應(yīng)程序為94℃ 3 min; 94℃ 30 s, 60℃ 30 s, 72℃ 96 s, 40個循環(huán); 72℃延伸5 min, 回收目的片段, 運用快速克隆技術(shù)將目的片段連接到pGEX- 4T-1載體上后轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)細胞DH5α, 經(jīng)菌液PCR篩選陽性克隆后送生工生物工程(上海)有限公司測序。將測序正確的原核表達菌株擴大培養(yǎng)后抽提重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化表達菌株Transetta (DE3), 用引物/進行PCR檢測, 將陽性轉(zhuǎn)化子單克隆按1∶100擴大培養(yǎng), 取500 μL菌液接種于50 mL含100 μg mL-1氨芐抗性LB培養(yǎng)基中, 搖床37℃, 250 r min-1振蕩培養(yǎng)至OD600達到0.6~0.8,加入IPTG至終濃度為1 mmol L-1, 16℃過夜誘導, 誘導結(jié)束后, 收集誘導的菌體, 將所有的樣品保存于-80℃, 用于表達產(chǎn)物SDS-PAGE電泳檢測。
根據(jù)目的基因全長編碼區(qū)序列和Pro Ligation-Free Cloning Kit (abm)快速克隆技術(shù)原理以及GFP融合表達載體PAN580序列設(shè)計引物和(表1), 利用PCR技術(shù)擴增得到目的基因的片段。將擴增產(chǎn)物與PAN580載體連接, 構(gòu)建GFP融合蛋白的瞬時表達載體后轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)細胞DH5α, 篩選陽性克隆后送測序, 測序正確后, 提取質(zhì)粒, 將重組質(zhì)粒以及空載質(zhì)粒用PEG法轉(zhuǎn)入擬南芥原生質(zhì)體, 培養(yǎng)箱暗培養(yǎng)16 h后, 在激光共聚焦顯微鏡下觀察GFP綠色熒光以研究目的基因的亞細胞定位情況。
參照RNA提取試劑盒RNAprep Pure Plant Kit說明書提取甘藍柱頭、葉片、花藥等組織的RNA, 參照TransScript First-Strand cDNA Synthesis SuperMix說明書反轉(zhuǎn)錄合成cDNA, 于–20oC保存?zhèn)溆?。以作為?nèi)參(表1), 根據(jù)獲得的基因全長序列設(shè)計熒光定量PCR特異性引物:、(表1), 以葉片、花蕾、萼片、花瓣、花粉和柱頭組織的cDNA為模板, 參照SYBR Premix Ex說明書, 用7500型實時熒光定量PCR儀擴增。同時以未授粉柱頭, 自花授粉15、30和60 min和異花授粉15、30和60 min的柱頭cDNA為模板,為內(nèi)參, 在熒光定量PCR儀上對目的基因進行熒光定量PCR。反應(yīng)體系為20 μL, 含2×SYBR Premix Ex10 μL、引物各1 μL、cDNA模板1 μL、超純水至7 μL。擴增程序為95oC預變性1 min; 95oC 15 s, 58oC 15 s, 72oC 30 s共40個循環(huán)。每個試驗設(shè)置3次生物學重復和3次技術(shù)重復, 采用2–ΔΔCt法計算目的基因的相對表達水平。
1.8.1 誘餌蛋白毒性及自激活活性檢測 將BoCDPK14基因激酶結(jié)構(gòu)域克隆到pGBDT7載體上作為誘餌, 所用引物為/(表1), 將誘餌載體重組質(zhì)粒pGBDT7- CDPK14D和pGBDT7空質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)化酵母Y2HGold感受態(tài)細胞, 涂布于SD-Trp平板上, 30℃倒置培養(yǎng)3~5 d, 以轉(zhuǎn)化pGBDT7空質(zhì)粒的平板作為對照, 觀察菌落生長狀況。若轉(zhuǎn)化重組質(zhì)粒的菌落明顯比空質(zhì)粒小, 說明重組質(zhì)粒有毒性。
將重組質(zhì)粒pGBDT7-CDPK14D與pGADT7空載共轉(zhuǎn)化酵母Y2HGold感受態(tài)細胞, 轉(zhuǎn)化后的菌液涂布在SD/?Leu/?Trp/?His平板上, 30℃倒置培養(yǎng)3~5 d, 以共轉(zhuǎn)陰性對照pGBDT7-Lam×pGADT7-T和陽性對照pGBDT7-p53×pGADT7-T平板作為對照,觀察菌落顯色情況。
1.8.2 文庫陽性克隆的初步鑒定、測序和生物信息學分析 根據(jù)制造商酵母方案手冊(Invitrogen), 使用Clontech雙雜交系統(tǒng)進行酵母雙雜交篩選, 將共轉(zhuǎn)化后的酵母感受態(tài)細胞涂布于TDO (SD/?Leu/ ?Trp/?His)固體培養(yǎng)基上, 30℃倒置培養(yǎng)3~5 d, 觀察菌落在TDO平板的生長情況, 參考酵母質(zhì)粒提取試劑盒說明書提取質(zhì)粒pGADT7載體, 然后以提取的酵母質(zhì)粒為模板, 以T75¢-TAATACGACTCACTA TAGGG-3¢和3¢AD 5¢-AGATGGTGCACGATGCACA G-3¢為引物進行RCR擴增, 將膠回收產(chǎn)物送上海生工生物工程有限公司測序。將測得的序列在NCBI數(shù)據(jù)庫進行BLAST比對, 找到同源序列, 統(tǒng)計序列長度、基因登錄號、基因注釋等信息。
1.8.3 點對點回轉(zhuǎn)陽性驗證 從陽性克隆中選擇基因作為候選獵物, 將去除信號肽(1~31 aa)和跨膜結(jié)構(gòu)域(580~960 aa)的基因序列BoGLR2.8連接到pGADT7載體上, 所用引物為:GLR2.8-AD- F/GLR2.8-AD-R (表1), 將其與pGBDT7-CDPK14D質(zhì)粒共轉(zhuǎn)化Y2HGold感受態(tài)細胞, 設(shè)立陰性對照(pGBDT7-Lam×pGADT7-T)和陽性對照(pGBDT7- p53×pGADT7-T), 將共轉(zhuǎn)化后的酵母Y2HGold細胞涂布于DDO (SD/?Leu/?Trp)和TDO(SD/?Leu/? Trp/?His)平板上, 30℃倒置培養(yǎng)3~5 d, 挑取DDO平板上的單菌落進行PCR檢測后, 將DDO平板上的陽性克隆菌斑接種至四缺培養(yǎng)基QDO (SD/?Leu/? Trp/?His/?Ade/X/A)上, 30℃倒置培養(yǎng)3~5 d, 觀察其生長情況。
根據(jù)甘藍自花和異花授粉0~60 min的柱頭轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)分析, 成功地篩選到1個受自花授粉誘導上調(diào)表達的基因, 它與擬南芥中參與植物逆境信號傳導的鈣依賴蛋白激酶基因高度同源[13], 命名為?;蛟谖词诜蹠r相對表達量為0.03, 自花授粉60 min后達到最高, 為3.82, 顯著上調(diào)表達; 而在異花授粉15、30、60 min后其表達量分別約為0.62、0.76、0.72, 其表達量趨于穩(wěn)定(圖1)。上述結(jié)果表明參與植物逆境反應(yīng)的CDPK也可能參與了SI反應(yīng)。
gDNA PCR產(chǎn)物大小約2200 bp, 柱頭cDNA PCR產(chǎn)物約1600 bp (圖2)。PCR擴增所獲得的gDNA序列長度為2214 bp, cDNA 序列長度為1599 bp, 包含了完整的編碼框。
由于使用同一對引物同源克隆得到cDNA和gDNA序列相差615 bp, 所以本研究進一步對兩者進行了Clustal軟件比對分析, 發(fā)現(xiàn)該基因由8個外顯子(分別為504、124、144、153、116、168、231和159 bp)和7個內(nèi)含子(分別為91、68、97、89、86、97和87 bp)組成?;虻拈_放閱讀框(ORF)全長為1599 bp, 編碼532個氨基酸殘基, 相對分子質(zhì)量為60.4 kD, 理論等電點(pI)為6.73, 不穩(wěn)定系數(shù)為34.02, 屬于穩(wěn)定蛋白。平均親水性系數(shù)為-0.396, 推測為親水性蛋白。由圖3可以看出, 在氨基酸組成中, 亮氨酸、賴氨酸和谷氨酸出現(xiàn)頻率最高, 分別占氨基酸總數(shù)的8.8%、8.6%和8.6%。帶負電荷的氨基酸殘基(Asp+Glu)總數(shù)為83個, 帶正電荷的氨基酸殘基(Arg+Lys)為81個。這種偏酸的親水蛋白, 正是SI反應(yīng)和抗逆反應(yīng)所需要的。
圖1 甘藍柱頭內(nèi)響應(yīng)自花和異花授粉后BoCDPK14表達模式
SP: 自花授粉; CP: 異花授粉。
SP: self-pollination; CP: cross-pollination.
圖2 甘藍BoCDPK14基因cDNA和gDNA序列擴增
通過Predict protein等軟件對CDS的氨基酸編碼序列進行在線預測分析, 該蛋白含有4個N-糖基化位點、3個cAMP或cGMP依賴性蛋白激酶磷酸化位點、8個蛋白激酶C磷酸化位點、15個酪蛋白激酶II磷酸化位點、4個N-肉豆蔻?;稽c、1個蛋白激酶ATP結(jié)合區(qū)、1個絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶活性位點、4個EF-hand鈣結(jié)合結(jié)構(gòu)域(圖3), 而已報道的自交不親和信號傳導元件中, SRK屬于蛋白激酶類, 其C端具有絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶活性位點, 是研究SI信號傳導的關(guān)鍵位點。
Ca2+結(jié)合的核心區(qū)域分別位于第369~381、第404~416、第440~452、第476~488位氨基酸殘基, 其特點是由12個氨基酸殘基組成的α-螺旋環(huán)結(jié)構(gòu), 其中的第1、第3、第6和第12位氨基酸較為保守(圖4-A)。在這12個殘基的前一位氨基酸(第0位氨基酸)為疏水性氨基酸殘基, 由第1、第3、第5、第7、第9和第12位氨基酸殘基分別按照X、Y、Z、-Y、-X和-Z空間排列形成五邊形雙錐結(jié)構(gòu), 而第12位保守的Asp或Glu的2個氧原子與Ca2+以雙齒配體的方式結(jié)合, 使EF-hand結(jié)構(gòu)域構(gòu)象改變, 最終導致靶蛋白的激活或者失活[14-16], 說明BoCDPK14可能參與Ca2+信號調(diào)控。
利用Swiss-modle在線軟件對BoCDPK14蛋白的三級結(jié)構(gòu)進行預測, 得到該蛋白的三維結(jié)構(gòu)(圖4-B)。利用MEGA7軟件構(gòu)建BoCDPK14遺傳進化樹發(fā)現(xiàn)BoCDPK14與BrCDPK14親緣關(guān)系最近(圖5)。
利用 BRAD數(shù)據(jù)庫及PlantCARE啟動子分析軟件在位于基因起始密碼子上游2000 bp的核苷酸序列中預測到脅迫反應(yīng)、激素反應(yīng)、代謝調(diào)節(jié)等多種順式作用元件(表2), 表明基因除了響應(yīng)授粉刺激, 還可能響應(yīng)包括逆境在內(nèi)的其他多種信號。
圖3 甘藍BoCDPK14 CDNA結(jié)構(gòu)圖及其推導的氨基酸序列
下劃直線為酪蛋白激酶II磷酸化位點, 虛線框為蛋白激酶C磷酸化位點, 橢圓為N-糖基化位點, 實線框為cAMP或cGMP依賴性蛋白激酶磷酸化位點, 雙線框表示N-肉豆蔻?;稽c, 圓點為EF-hand鈣結(jié)合結(jié)構(gòu)域, 雙線表示蛋白激酶ATP結(jié)合區(qū), 星星表示絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶活性位點。
The underline show protein kinase II phosphorylation site; the dashed box show protein kinase C phosphorylation site; the oval show N-glycosylation site; the box show cAMP or cGMP-dependent protein kinase phosphorylation site; the double box show N-myristoylation site; the dot show the EF-hand calcium binding domain; double line show protein kinase ATP binding domain; stars show serine/threonine protein kinase active site.
圖4 BoCDPK14 蛋白Ca2+結(jié)合核心區(qū)域(A)和BoCDPK14蛋白三維結(jié)構(gòu)預測(B)
A圖下排數(shù)字表示對這12個氨基酸殘基的編號。
The figures at lower part in Fig. A are the serial number of the 12 amino acid residues of the core area of calcium ion binding.
圖5 BoCDPK14與其他物種CDPK14氨基酸序列的系統(tǒng)進化樹
將GST-BoCDPK14重組菌株擴大培養(yǎng), 并在16℃過夜誘導表達, 誘導結(jié)果電泳檢測如圖6。與未誘導的GST-BoCDPK14 (泳道1)相比, 在80 kD左右, 誘導表達后的泳道2多出1條帶, 其蛋白質(zhì)相對分子質(zhì)量與GST-BoCDPK14估計值相符。其中pGEX-4T-1空載體表達約26 kD的蛋白, BoCDPK14預測分子大小約為60.4 kD, 二者融合約為86 kD的蛋白, 表明GST-BoCDPK14融合蛋白在原核細胞中誘導表達成功。通過構(gòu)建GFP-BoCDPK14融合表達載體, 并轉(zhuǎn)化擬南芥原生質(zhì)體細胞。發(fā)現(xiàn)GFP蛋白分布在細胞質(zhì)和細胞核中, 而GFP-BoCDPK14融合蛋白綠色熒光明顯定位在細胞質(zhì)(圖7), 表明該親水性蛋白定位于細胞質(zhì)。以上研究結(jié)果表明BoCDPK14可能是細胞質(zhì)內(nèi)的活性蛋白, 而該蛋白質(zhì)的胞質(zhì)親水特性正是參與SI和抗逆反應(yīng)所需要的。
表2 BoCDPK14基因上游調(diào)控區(qū)順式作用元件
圖6 BoCDPK14蛋白的原核表達
M: 蛋白相對分子質(zhì)量標準; 1: BoCDPK14-GST未誘導蛋白; 2: BoCDPK14-GST誘導蛋白; 3: BoCDPK14-GST純化蛋白; 4: GST蛋白。
M: marker; 1: uninduced control; 2: BoCDPK14-GST fusion protein; 3: BoCDPK14-GST purified protein; 4: GST protein.
在甘藍柱頭、花粉、花蕾、花瓣和葉片中表達, 且柱頭中的表達量低于花粉(圖8-B)。對不同授粉處理后柱頭中的qRT-PCR分析(圖8-A)表明,在自花授粉0~60 min持續(xù)上調(diào)表達, 在異花授粉過程中變化不大。自花授粉60 min后的相對表達量約為16.09, 約為授粉0 min的13.5倍, 而異花授粉60 min后的相對表達量約為5.36, 前者明顯高于后者且相差3倍, 說明自花授粉能顯著誘導該基因的表達。該結(jié)果與轉(zhuǎn)錄組分析結(jié)果一致, 說明這個參與植物逆境信號傳導的基因也可能參與甘藍SI反應(yīng)過程。
圖7 BoCDPK14-GFP融合蛋白的亞細胞定位
綠色表示GFP 蛋白在激光共聚焦顯微鏡下所發(fā)的綠色熒光。
GFP protein showed the green fluorescence under confocal laser scanning microscope.
圖8 甘藍柱頭內(nèi)BoCDPK14響應(yīng)自花和異花授粉后表達模式(A)和BoCDPK14基因在甘藍不同組織中的表達分析(B)
SP: 自花授粉; CP: 異花授粉。SP: self-pollination; CP: cross-pollination.
NCBI保守域預測表明, BoCDPK14分為4個典型的結(jié)構(gòu)域, 從N端到C端依次為N-末端可變域、催化域(激酶域)、連接域(自抑制域)和C-末端類鈣調(diào)結(jié)構(gòu)域(圖9)??勺冇虬被衢L度一般在20~200個不等, 氨基酸水平同源性不高, 保守性差, 多數(shù)CDPK的N端含有豆蔻?;稽c, 可被豆蔻酰化或棕櫚?;4呋蚓哂械湫偷腟er/Thr蛋白激酶保守序列, 同源性較高, 該區(qū)域突變會喪失催化活性。CDPK連接域由20~30個氨基酸殘基組成, 當無Ca2+或Ca2+低于某一濃度時, 該區(qū)域結(jié)合催化區(qū)的激酶結(jié)構(gòu)域從而抑制其活性。Ca2+結(jié)合區(qū)即類鈣調(diào)結(jié)構(gòu)域, 包含4個可與Ca2+結(jié)合的EF手型結(jié)構(gòu), 能夠與Ca2+結(jié)合, 引起蛋白結(jié)構(gòu)變化, 解除連接域?qū)っ竻^(qū)的抑制作用從而激活CDPK的活性[17-18]。為了確定與CDPK14激酶域相互作用的蛋白, 擴增CDPK14截短體的編碼序列D, 利用分子克隆技術(shù)將D序列克隆到pGBDT7載體中。
圖9 典型鈣依賴蛋白激酶(CDPK)結(jié)構(gòu)
V: 可變域; J: 連接域; EF: EF-hand 結(jié)構(gòu)域。
V: variable domain; J: junction domain; EF: EF-hand domain.
將pGBDT7-CDPK14D和pGBDT7空質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)化Y2Hgold酵母感受態(tài)細胞, 涂布于SD?Trp平板上, 30℃倒置培養(yǎng)3~5 d。結(jié)果發(fā)現(xiàn)重組質(zhì)粒在平板上均可以長出菌落, 且大小和轉(zhuǎn)化pGBDT7空質(zhì)粒的酵母菌落大小一致, 表明重組質(zhì)粒沒有毒性。將pGBDT7-CDPK14D與pGADT7空載共轉(zhuǎn)化酵母Y2HGold感受態(tài)細胞, 結(jié)果發(fā)現(xiàn)只有陽性對照轉(zhuǎn)化的菌落在SD/?Leu/?Trp/?His平板上生長, 其余無斑生長, 說明表達的重組蛋白沒有自激活能力。
將酵母文庫篩選出的BoGLR2.8基因連接到pGADT7載體上, 與CDPK14D-BD重組質(zhì)粒共轉(zhuǎn)化酵母Y2Hgold感受態(tài)細胞, 分別涂在DDO和TDO固體培養(yǎng)基上, 30℃倒置培養(yǎng)3~5 d, 固體平板有菌落生成(圖10)。通過PCR檢測, 在同一個單克隆中可以同時擴增出2個目的片段, 說明重組質(zhì)粒成功轉(zhuǎn)入酵母細胞。為進一步檢測蛋白質(zhì)之間的相互作用, 將SD/?Leu/?Trp平板上的單菌落轉(zhuǎn)移至SD/?Leu/?Trp/?His/?Ade/X-α-gal/AbA平板上, 30℃倒置培養(yǎng)3~5 d, 發(fā)現(xiàn)pGBDT7-CDPK14D× pGADT7-GLR2.8d和陽性對照能生長且呈藍色, 而陰性對照菌落不能生長。研究已發(fā)現(xiàn)GLR參與了自交不親和反應(yīng)[19], 而BoCDPK14激酶結(jié)構(gòu)域在酵母中與BoGLR2.8d(XP_013635321.1)之間存在相互作用(圖10), 進一步表明CDPK14也參與了甘藍SI反應(yīng)。
圖10 酵母雙雜交驗證CDPK14D和GLR2.8d之間的相互作用
第1排表示pGADT7-BoGLR2.8d×pGBDT7-BoCDPK14D; 第2排表示陽性對照(pGADT7-T×pGBDT7-p53); 第3排表示陰性對照(pGADT7-T×pGBDT7-Lam)。
The first row indicates pGADT7-BoGLR2.8d×pGBDT7-BoCDPK14D; the second row indicates positive control (pGADT7-T×pGBDT7-p53); the third row indicates negative control (pGADT7-T×pGBDT7-Lam). DDO: SD/?Leu/?Trp; TDO: SD/?Leu/?Trp/-His; QDO/X/A: SD/?Leu/?Trp/?His/?Ade/X-α-gal/AbA.
本研究基于以自交不親和甘藍經(jīng)不同授粉處理后的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù), 成功地篩選到1個受自花授粉誘導上調(diào)表達的基因, 它與擬南芥中參與植物逆境信號傳導的鈣依賴蛋白激酶基因高度同源, 命名為。BoCDPK14-GFP融合蛋白綠色熒光主要出現(xiàn)在細胞質(zhì)區(qū)域?;虻膯幼訁^(qū)域含有脅迫反應(yīng)、激素反應(yīng)、代謝調(diào)節(jié)等多種順式作用元件, 表明基因可能參與調(diào)控復雜的生物反應(yīng)過程。Vanoosthuyse等[2]發(fā)現(xiàn)鈣調(diào)素CaM1和CaM2與iSRK (SRK胞內(nèi)激酶域)能發(fā)生相互作用。許俊強等[20]研究發(fā)現(xiàn)甘藍花粉管鈣調(diào)蛋白CaM12與iSRK相互作用, 而缺失EF-hand模體的鈣調(diào)蛋白均不能與iSRK相互作用。本文通過蛋白結(jié)構(gòu)分析發(fā)現(xiàn), BoCDPK14含有4個能與Ca2+結(jié)合的EF-hand模體,推測BoCDPK14可能通過調(diào)控柱頭中Ca2+濃度參與SI過程。
Sheen等[21]研究發(fā)現(xiàn)CDPK可激活脅迫誘導的啟動子, 以促進逆境蛋白的表達, 說明CDPKs可能在逆境脅迫信號中起正調(diào)節(jié)因子的作用, 以調(diào)控植物中脅迫信號的轉(zhuǎn)導。Botella等[22]發(fā)現(xiàn)在機械刺激等環(huán)境脅迫的信號轉(zhuǎn)導過程中, CDPKs發(fā)揮重要的調(diào)節(jié)作用。同時鈣依賴蛋白激酶屬于蛋白激酶類, 已報道的自交不親和信號傳導元件中SRK屬于蛋白激酶類, SRK在自交不親和反應(yīng)過程中作為雌性決定因子, 在花粉與柱頭的反應(yīng)中具有重要作用[23]。自交不親和反應(yīng)的本質(zhì)是花粉與柱頭識別及信號傳導的過程, 而Ca2+作為第二信使, 在植物細胞信號轉(zhuǎn)導過程中發(fā)揮重要作用[24]。已有研究表明, 植物體內(nèi)鈣信號的傳遞主要是通過鈣依賴蛋白激酶(CDPK)來完成[25]。Kunz等[26]發(fā)現(xiàn)來自花粉管中的鈣依賴蛋白激酶可激活花柱傳導組織中的S-核糖核酸酶, 該酶通過催化RNA的降解來抑制花粉萌發(fā)。Iwano等[19]通過觀察自交不親和擬南芥發(fā)現(xiàn)在用相同單倍型的SCR/SP11花粉授粉后, 柱頭乳突細胞中Ca2+濃度顯著上升, 花粉不能正常萌發(fā)生長, 表現(xiàn)自交不親和性, 用不同單倍型的SCR/SP11花粉授粉后, 柱頭乳突細胞中Ca2+濃度上升不明顯。當用谷氨酸通道抑制劑AP-5處理柱頭表面時, 胞內(nèi)Ca2+濃度無明顯上升, 說明谷氨酸通道調(diào)控的鈣離子流是自交不親和反應(yīng)所必需的。以上結(jié)果表明可能存在Ca2+信號途徑參與調(diào)控自交不親和性。
有研究表明, 擬南芥AtGLRs具有介導Ca2+跨膜轉(zhuǎn)運和調(diào)節(jié)胞內(nèi)Ca2+動態(tài)平衡, 調(diào)控花粉管的生長, 以及感應(yīng)和傳遞外源與內(nèi)源信號的多重功能, 在煙草和擬南芥中發(fā)現(xiàn)GLRs利用D-絲氨酸(D-serine)作為配體介導Ca2+梯度, 最終影響花粉管生長及其形態(tài)建成, 在敲除絲氨酸消旋酶基因的擬南芥突變體雌蕊中野生型植物花粉管伸長生長發(fā)生缺陷并伴以GLR1.2和GLR3.7的Ca2+通道活性降低[27-34]。說明高等植物GLR家族成員需要特定的配體物質(zhì)以開啟其Ca2+通道功能。本研究通過酵母雙雜交試驗證明BoCDPK14激酶結(jié)構(gòu)域能與BoGLR2.8d蛋白相互作用。BoCDPK14蛋白可能通過Ca2+結(jié)合區(qū)結(jié)合Ca2+, 激活CDPK激酶活性, 使其與谷氨酸受體通道蛋白BoGLR2.8d相結(jié)合, 促使柱頭內(nèi)Ca2+濃度經(jīng)谷氨酸受體通道(GLR)內(nèi)流而顯著上升, 使花粉不能正常萌發(fā)生長, 最終導致自交不親和反應(yīng)的發(fā)生。
基因在自花授粉過程中0~60 min持續(xù)上調(diào)表達, 在異花授粉過程中變化不大。而甘藍自交不親和反應(yīng)主要在開花后30~60 min之內(nèi)完成[35], 進一步表明該基因可能參與自花授粉后花粉與柱頭相互作用的復雜反應(yīng)過程, 可能跟自花授粉后相同單倍型的SRK與SCR/SP11特異識別后的Ca2+濃度的顯著上升有關(guān), 推測該基因可能作為Ca2+信號元件參與甘藍自花授粉后的反應(yīng)過程。由于該基因是已知的參與抗逆反應(yīng)的基因, 所以本文初步提供一個聯(lián)系自交不親和性和植物抗逆性的“橋梁”蛋白質(zhì), 為SI的深入研究提供了新內(nèi)容。
從甘藍轉(zhuǎn)錄組文庫篩選并克隆1個受自花授粉誘導顯著上調(diào)表達的基因, 其開放閱讀框為1599 bp, 編碼533個氨基酸, 編碼蛋白大小約為60.4 kD。BoCDPK14蛋白分布于細胞質(zhì), 在柱頭中的表達量低于花粉中。該基因在自花授粉0~60 min持續(xù)上調(diào)表達, 在異花授粉過程中表達量變化并不明顯。BoCDPK14蛋白可能通過結(jié)合Ca2+激活CDPK激酶, 使其與谷氨酸受體通道蛋白BoGLR2.8d結(jié)合, 促使柱頭內(nèi)Ca2+濃度顯著上升, 花粉不能正常萌發(fā)生長, 推測該蛋白是參與SI相關(guān)過程的新蛋白。
[1] Gu T, Mazzurco M, Sulaman W, Matias D D, Goring D R. Binding of an arm repeat protein to the kinase domain of the-locus receptor kinase., 1998, 95: 382–387.
[2] Vanoosthuyse V, Tichtinsky G, Dumas C, Gaude T, Cock J M. Interaction of calmodulin, a sorting nexin and kinase-associated protein phosphatase with theS locus receptor kinase., 2003, 133: 919–929.
[3] Stone S L, Anderson E M, Mullen R T, Goring D R. ARC1 is an E3 ubiquitin ligase and promotes the ubiquitination of proteins during the rejection of self-incompatiblepollen., 2003, 15: 885–898.
[4] Nasrallah M E, Liu P, Nasrallah J B. Generation of self-incompatibleby transfer of two S locus genes from., 2002, 297: 247–249.
[5] Nasrallah M, Liu P, Sherman-Broyles S, Boggs N, Nasrallah J. Natural variation in expression of self-incompatibility in: implications for the evolution of selfing., 2004, 101: 16070–16074.
[6] Nasrallah J B, Nasrallah M E. Robust self-incompatibility in the absence of a functionalgene in., 2014, 26: 3838–3841.
[7] Elleman C, Dickinson H G. Commonalities between pollen/ stigma and host/pathogen interactions: calcium accumulation during stigmatic penetration bypollen., 1999, 12: 94–202.
[8] Iwano M, Shiba H, Matoba K, Miwa T, Funato M, Entani T, Nakayama P, Shimosato H, Takaoka A, Isogai A. Actin dynamics in papilla cells ofduring self and cross-pollination., 2007, 144: 72–81.
[9] Dearnaley J D W, Levina N N, Lew R R, Heath I B, Goring D R. Interrelationships between cytoplasmic Ca2+peaks, pollen hydration and plasma membrane conductances during compatible and incompatible pollinations of., 1997, 38: 985–999.
[10] Yang G, Shen S, Yang S, Komatsu S., a calcium-dependent protein kinase gene from rice, is induced in response to cold and gibberellin., 2003, 41: 369–374.
[11] Yoon G M, Cho H S, Ha H J, Liu J R, Lee H S P. Characterization of, a calcium-dependent protein kinase gene in, and the activity of its encoded protein., 1999, 39: 991–1001.
[12] Ye S, Wang L, Xie W, Wan B, Li X, Lin Y. Expression profile of calcium-dependent protein kinase (CDPKs) genes during the whole lifespan and under phytohormone treatment conditions in rice (L. ssp.)., 2009, 70: 311–325.
[13] Chotikacharoensuk T, Arteca R N, Arteca J M. Use of differential display for the identification of touch-induced genes from an ethylene-insensitivemutant and partial characterization of these genes., 2006, 163: 1305–1320.
[14] Skelton N J, K?rdel J, Akke M, Chazin W. Signal transduction versus buffering activity in Ca2+-binding proteins., 1994, 1: 239–245.
[15] Ikura M. Calcium binding and conformational response in EF- hand proteins., 1996, 21: 14–17.
[16] Kretsinger R H. EF-hands embrace., 1997, 4: 514–516.
[17] Hrabak E M, Chan C W, Gribskov M, Harper J F, Choi J H, Halford N, Kudla J, Luan S, Nimmo H G, Sussman M R. TheCDPK-SnRK superfamily of protein kinases., 2003, 132: 666–680.
[18] Rutschmann F, Stalder U, Piotrowski M, Oecking C, Schaller A. LeCPK1, a calcium-dependent protein kinase from tomato. Plasma membrane targeting and biochemical characterization., 2002, 129: 156–168.
[19] Iwano M, Ito K, Fujii S, Kakita M, Asano-Shimosato H, Igarashi M, Kaothien-Nakayama P, Entani T, Kanatani A, Takehisa M. Calcium signalling mediates self-incompatibility response in the., 2015, 1: 15128.
[20] 許俊強, 孫梓健, 宋明, 湯青林, 王志敏, 王小佳. 甘藍花粉管鈣感應(yīng)蛋白CaM與SRK相互作用研究. 園藝學報, 2013, 40: 2429–2440. Xu J Q, Sun Z J, Song M, Tang Q L, Wang Z M, Wang X J. Studies on the interactions between the pollen tube. calmodulin (CaM) and SRK fromvar.., 2013, 40: 2429–2440 (in Chinese with English abstract).
[21] Sheen J. Ca2+-dependent protein kinases and stress signal transduction in plants., 1996, 274: 1900–1902.
[22] Botella J R, Arteca J M, Somodevilla M, Arteca R N. Calcium-dependent protein kinase gene expression in response to physical and chemical stimuli in mungbean ()., 1996, 30: 1129–1137.
[23] 岳堯. 基于轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)的甘藍型油菜自交不親和相關(guān)基因的挖掘. 華中農(nóng)業(yè)大學碩士學位論文, 湖北武漢, 2016.Yue Y. The Mining ofSelf-incompatibility Related Gene Based on RNA-Seq. MS Thesis of Huazhong Agricultural University, Wuhan, Hubei, China, 2016 (in Chinese with English abstract).
[24] Messerli M A, Creton R, Jaffe L F, Robinson K R. Periodic increases in elongation rate precede increases in cytosolic Ca2+during pollen tube growth., 2000, 222: 84–98.
[25] Hamel L P, Sheen J, Seguin A. Ancient signals: comparative genomics of green plant CDPKs., 2014, 19: 79–89.
[26] Kunz C, Chang A, Faure J D, Clarke A E, Polya G M, Anderson M A. Phosphorylation of style S-RNases by Ca2+dependent protein kinases from pollen tubes., 1996, 9: 25–34.
[27] Kim S A, Kwak J, Jae S K, Wang M H, Nam H. Overexpression of thegene encoding anhomolog of mammalian glutamate receptors impairs calcium utilization and sensitivity to ionic stress in transgenic plants., 2001, 42: 74–84.
[28] Dubos C, Huggins D, Grant G H, Knight M R, Campbell M M. A role for glycine in the gating of plant NMDA-like receptors., 2003, 35: 800–810.
[29] Kang S, Kim H B, Lee H, Choi J Y, Heu S, Oh C J, Kwon S I, An C S. Overexpression inof a plasma membrane-targeting glutamate receptor from small radish increases glutamate-mediated Ca2+influx and delays fungal infection., 2006, 21: 418–427.
[30] Qi Z, Stephens N R, Spalding E P. Calcium entry mediated by GLR3.3, anglutamate receptor with a broad agonist profile., 2006, 142: 963–971.
[31] Cho D, Kim S A, Murata Y, Lee S, Jae S K, Nam H G, Kwak J M. De-regulated expression of the plant glutamate receptor homolog AtGLR3.1 impairs long-term Ca2+-programmed stomatal closure., 2009, 58: 437–449.
[32] Vincill E D, Bieck A M, Spalding E P. Ca2+conduction by an amino acid-gated ion channel related to glutamate receptors., 2012, 159: 40–46.
[33] Michard E, Lima P T, Borges F, Silva A C, Portes M T, Carvalho J E, Gilliham M, Liu L H, Obermeyer G, Feijó J A. Glutamate receptor-like genes form Ca2+channels in pollen tubes and are regulated by pistil D-serine., 2011, 332: 434–437.
[34] 何明潔, 孫伊辰, 程曉園, 時冬雪, 李迪秦, 陳益銀, 馮永坤, 劉璐, 范騰飛, 楊超, 曹鳳秋, 劉來華. 植物谷氨酸受體的研究進展. 植物學報, 2016, 51: 827–840. He M J, Sun Y C, Cheng X Y, Shi D X, Li D Q, Chen Y Y, Feng Y K, Liu L, Fan T F, Yang C, Cao F Q, Liu L H. Current research advances on glutamate receptors (GLRs) in Plants.,2016, 51: 827–840 (in Chinese with English abstract).
[35] Jiang J, Jiang J, Qiu L, Miao Y, Yao L, Cao J. Identification of gene expression profile during fertilization insubsp., 2012, 56: 39–48.
Cloning and analysis ofin self-incompatibility
BAI Xiao-Jing1,**, LIAN Xiao-Ping2,**, WANG Yu-Kui1, ZHANG He-Cui1, LIU Qian-Ying1, ZUO Tong- Hong1, ZHANG Yi-Zhong1, XIE Qin-Qin1, HU Deng-Ke1, REN Xue-Song2, ZENG Jing3, LUO Shao-Lan1, PU Min1, and ZHU Li-Quan1,*
1College of Agronomy and Biotechnology, Southwest University, Chongqing 400716, China;2College of Horticulture and Landscape Architecture, Southwest University, Chongqing 400716, China;3School of Life Advanced Agriculture Bioengineering, Yangtze Normal University, Chongqing 408100, China
self-incompatibility (SI) is the reaction of rejection or inhibition of stigma to pollens from the same haplotype. Calcium-dependent protein kinase (CDPK) is an important component of plants involved in resistance to stress signals. In this study, we identified an up-regulated gene namedbased on the stigma transcriptome data in 0–60 min self-pollination. The gene was highly homologous to the calcium dependent protein kinase gene involved in stress signaling in.gene contained an open reading frame (ORF) with the length of 1599 bp, encoding a protein with the length of 533 amino acid residues. It was a hydrophilic protein expressed in cytoplasm, and could be induced to express a 60.4 kD protein in the cytoplasm ofTransetta (DE3). It was suggested that BoCDPK14 is an active cytoplasmic protein. The 2000 bp upstream oftranslation initial codon contained elements for responses to stress, hormone, and metabolic regulation.was expressed in stigma, pollen, flower bud, petal, and leaf, with lower expression level in stigma than in pollen. The results of qRT-PCR revealed thatmRNA expression level after self- and cross-pollinations for 0 min to 60 min was consistent with that of RNA-seq data. The interaction between BoCDPK14 protein kinase domain and glutamate receptor channel protein BoGLR2.8dwas identified by yeast two-hybrid, suggesting thatmight be a novel protein involved in SI reaction. These results suggest that BoCDPK14 may act as a Ca2+signal element to participate the process of response to pollen stimulation in the stigma of, which provides a new insight into the further research and utilization of self-incompatibility of.
;gene; yeast two-hybrid; self-pollination; self-incompatibility
本研究由國家自然科學基金項目(31572127)和西南大學基本科研業(yè)務(wù)費專項資金項目(XDJK2017D073)資助。
This study was supported by the National Natural Science Foundation of China (31572127) and the Fundamental Research Fund of Southwest University (XDJK2017D073).
朱利泉, E-mail: zhuliquan@swu.edu.cn, Tel: 023-68250794
**同等貢獻(Contributed equally to this work)
E-mail: xiamoyanyu33@163.com
2019-03-15;
2019-06-12;
2019-07-09.
URL: http://kns.cnki.net/kcms/detail/11.1809.s.20190705.1347.012.html
10.3724/SP.J.1006.2019.94040