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        Shh通路介導(dǎo)損傷后反應(yīng)性星形膠質(zhì)細(xì)胞獲得干細(xì)胞潛能

        2019-08-16 07:43:38許子寧李曉紅葉益超劉曉銀涂悅
        天津醫(yī)藥 2019年7期

        許子寧 ,李曉紅,葉益超,劉曉銀,3,涂悅△

        星形膠質(zhì)細(xì)胞(astrocytes,AST)是神經(jīng)組織中最重要的膠質(zhì)細(xì)胞,其主要作用是為神經(jīng)元的代謝提供營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)支持、維持細(xì)胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)、積極參與神經(jīng)回路構(gòu)成等[1]。中樞神經(jīng)系統(tǒng)受損之后,引起一系列急性的反應(yīng),AST會(huì)被激活,從而形成“反應(yīng)性星形膠質(zhì)細(xì)胞(reactive astrocytes,RAS)”[2]。RAS的過(guò)度增生會(huì)形成膠質(zhì)瘢痕,阻礙神經(jīng)元軸突再生,從而影響神經(jīng)功能的恢復(fù)[3]。不同的損傷類(lèi)型會(huì)誘導(dǎo)不同類(lèi)型的RAS。已有研究證明,激活的小膠質(zhì)細(xì)胞分泌的腫瘤壞死因子(TNF)-α,白細(xì)胞介素(IL)-1α和C1q會(huì)誘導(dǎo)AST形成神經(jīng)炎癥性反應(yīng)性星形膠質(zhì)細(xì)胞[4]。Shh(sonic hedgehog,Shh)是成年哺乳動(dòng)物中樞神經(jīng)系統(tǒng)中表達(dá)的唯一的Hh蛋白質(zhì),Shh信號(hào)通路在經(jīng)典途徑中由其補(bǔ)體受體(Ptch-1)和Smo以及轉(zhuǎn)錄因子Gli蛋白組成,在胚胎神經(jīng)發(fā)育階段起到關(guān)鍵作用[5]。近年來(lái),研究人員利用Shh信號(hào)通路參與肝膽管的損傷后修復(fù)[6],調(diào)節(jié)宮頸癌干細(xì)胞的特征[7],改善椎間盤(pán)疾?。?]等。該通路在神經(jīng)系統(tǒng)疾病中對(duì)受損的神經(jīng)功能也具有一定的修復(fù)作用。本文通過(guò)添加Shh信號(hào)通路的激活劑和抑制劑,探討該通路對(duì)不同損傷誘導(dǎo)的RAS轉(zhuǎn)分化為神經(jīng)干細(xì)胞的作用。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 SD孕鼠1只,由中國(guó)人民武裝警察部隊(duì)特色醫(yī)學(xué)中心提供[許可證號(hào)SCXK-(軍)2012-0004],購(gòu)自斯貝福實(shí)驗(yàn)動(dòng)物科技有限公司。

        1.2 主要試劑與儀器 DMEM/F 12培養(yǎng)基、胎牛血清(FBS)(Gibco,美國(guó)),小鼠抗Nestin抗體(Abcam,英國(guó)),兔抗GFAP抗體(Sigma,美國(guó)),兔抗Shh抗體(Proteintech,美國(guó)),山羊抗小鼠IgG二抗、山羊抗兔IgG二抗(Life technology,美國(guó)),IL-1α(Sigma,I3901)、TNF-α(Cell signaling technology,8902SF),C1q(My bio source,MBS143105),Shh 通 路 激 動(dòng) 劑(smoothened agonist,SAG)(MCE,HY-12848)、Shh 通路抑制劑環(huán)巴胺(cyclopamine,CYC)(MCE,HY-17024),總RNA提取試劑盒(離心柱型)(天根生化科技有限公司),BCA蛋白定量試劑盒(碧云天生物技術(shù)有限公司),ABI 7300熒光定量PCR儀(美國(guó)Applied Biosystems公司),倒置熒光顯微鏡(Leica DMI4000B)。

        1.3 方法

        1.3.1 原代AST的提取和鑒定 取1~3 d新生SD大鼠,用75%乙醇浸泡5 min消毒表皮,無(wú)菌條件下剪開(kāi)頭皮與顱骨,暴露大腦,鉗取皮層部分放入磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline,PBS)中充分漂洗,隨后放入DMEM/F 12培養(yǎng)基中并于冰上剔除腦膜和血管等組織,將組織轉(zhuǎn)移至15 mL離心管中并加入0.25%的胰蛋白酶,置于37℃、5%CO2細(xì)胞孵箱消化5 min,用培養(yǎng)基終止消化,1 000 r/min離心10 min,棄上清,加入含有10%FBS的DMEM/F 12培養(yǎng)基重懸沉淀后置于培養(yǎng)瓶中,于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2 h進(jìn)行差速黏附,吸出懸液。之后使用200目不銹鋼濾網(wǎng)進(jìn)行研磨過(guò)濾,1 000 r/min離心10 min,棄上清,加入含有10%FBS的DMEM/F 12培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)至細(xì)胞融合度80%~90%,置于恒溫?fù)u床振蕩16 h(37℃、260 r/min),換液繼續(xù)培養(yǎng)并檢測(cè)純度,以備后用。

        1.3.2 免疫熒光技術(shù)檢測(cè)AST純度 細(xì)胞計(jì)數(shù)板調(diào)整星形膠質(zhì)細(xì)胞濃度為1×105/mL后接種于48孔板,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)至細(xì)胞貼壁,4%多聚甲醛固定后,0.5%Triton X-100破膜,5%BSA封閉,使用膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)(1∶1 000)抗體進(jìn)行免疫熒光染色,4℃過(guò)夜。次日使用山羊抗小鼠IgG二抗37℃孵育1 h,全程避光操作。在熒光顯微鏡下取6個(gè)視野,拍照并計(jì)算GFAP陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)占細(xì)胞總數(shù)的百分比。

        1.3.3 實(shí)驗(yàn)分組 實(shí)驗(yàn)分為對(duì)照組、炎癥組和劃痕組。對(duì)照組細(xì)胞為普通星形膠質(zhì)細(xì)胞,置于37℃、5%CO2孵箱中正常培養(yǎng)。炎癥組在普通星形膠質(zhì)細(xì)胞中加入IL-1α(3μg/L)、TNF-α(30 μg/L)、C1q(400μg/L)。劃痕組細(xì)胞是將星形膠質(zhì)細(xì)胞以1×104/mL種植于24孔板,用10μL無(wú)菌加樣槍頭“井”字劃痕,劃痕間距0.3 mm,注意劃痕時(shí)保持勻速和相同力度。劃后換液除去脫落和死亡細(xì)胞及碎片,每隔3 d半量換液。

        1.3.4 免疫熒光染色法檢測(cè)Nestin表達(dá)量 炎癥組培養(yǎng)至干預(yù)后24 h,對(duì)照組和劃痕組培養(yǎng)至第5天,4%多聚甲醛固定細(xì)胞30 min,PBS浸洗3×5 min,使用0.5%Triton X-100破膜20 min,PBS浸洗3×5 min,5%BSA封閉20 min之后加入Nestin(1∶100)抗體,4 ℃過(guò)夜。第2天復(fù)溫20 min,PBS浸洗3×5 min,后續(xù)操作避光,加入山羊抗小鼠IgG二抗(1∶200),37℃孵育1 h,PBS浸洗3×10 min,加入DAPI(1∶100)染核,37℃孵育10 min,PBS浸洗3×10 min后熒光顯微鏡觀察并拍照。

        1.3.5 Western blot檢測(cè)Shh蛋白表達(dá)量 炎癥組培養(yǎng)至干預(yù)后24 h、劃痕組培養(yǎng)至第5天提取細(xì)胞蛋白,將提取出的細(xì)胞蛋白與5×上樣緩沖液按體積比4∶1比例制備樣品,放入100℃水浴鍋中加熱煮沸5~7 min進(jìn)行變性。使用BCA蛋白定量法,繪制蛋白光密度(OD)值的標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),計(jì)算出各個(gè)樣品蛋白濃度。配制10%分離膠(下層)和濃縮膠(上層)后將電泳緩沖液倒入電泳槽中,以80 V電壓進(jìn)行電泳20 min,后調(diào)制電壓為120 V,直至電泳結(jié)束。進(jìn)行半干轉(zhuǎn),脫脂奶粉溶液封閉1 h,孵育一抗Shh(1∶2 000)、過(guò)夜,孵育二抗,顯色顯影液A∶顯影液B=1∶1比例配用,顯影并保存圖片。用Image J圖像處理軟件測(cè)量條帶灰度值,目的蛋白的相對(duì)表達(dá)量為目的條帶灰度值與內(nèi)參比值。

        1.3.6 Shh信號(hào)通路的干預(yù) 3組細(xì)胞培養(yǎng)至第7天,更換神經(jīng)干細(xì)胞條件培養(yǎng)基(DMEM/F 12、20 mg/L EGF、20 mg/L BFGF、2%B27)后,對(duì)上述3組細(xì)胞分別添加Shh激活劑(smoothened agonist,SAG,1 μmol/L)和抑制劑(cyclopamine,CYC,3μmol/L),37℃細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)14 d行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

        1.3.7 熒光實(shí)時(shí)定量PCR(qRT-PCR)檢測(cè)各組中神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因表達(dá)水平 將各組細(xì)胞按照每皿1.0×105/mL密度接種,培養(yǎng)24 h后待細(xì)胞貼壁,提取樣本mRNA,使用羅氏(Rocke)反轉(zhuǎn)錄試劑盒反轉(zhuǎn)錄為cDNA。在熒光定量PCR儀中檢測(cè)神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因的表達(dá)。內(nèi)參與檢測(cè)樣本均設(shè)置3個(gè)復(fù)孔,全程冰上操作。qRT-PCR結(jié)果分析保證3復(fù)孔同Ct值相差-0.3~0.3,取復(fù)孔平均值以減少誤差,以β-actin作為內(nèi)參。神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因引物序列見(jiàn)表1。PCR反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性10 min;95℃變性15 s、60℃退火延伸1 min,40個(gè)循環(huán)。以β-actin作為內(nèi)參,應(yīng)用7300 system software分析檢測(cè)數(shù)據(jù)。ΔΔCt=(Ct目的基因-Ct內(nèi)參基因)干預(yù)組-(Ct目的基因-Ct內(nèi)參基因)對(duì)照組,計(jì)算2-ΔΔCt值為目的基因的相對(duì)表達(dá)水平。

        Tab.1 The specific primer sequences of neural stem cells表1 神經(jīng)干細(xì)胞qRT-PCR引物序列

        1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 22.0軟件分析數(shù)據(jù),所得數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,2組間數(shù)據(jù)比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),3組間比較采用單因素方差分析(one way ANOVA),組間多重比較使用LSD-t檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 AST的培養(yǎng)及純度鑒定 提取后的原代星形膠質(zhì)細(xì)胞傳至第3代后,細(xì)胞核呈圓形或卵圓形,細(xì)胞突觸粗短,且分支較多,胞體較小。免疫熒光染色檢測(cè)純度為熒光顯微鏡下GFAP陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)所占細(xì)胞總數(shù)的百分比,結(jié)果顯示純度為94.11%,符合后續(xù)實(shí)驗(yàn)要求,見(jiàn)圖1。

        Fig.1 Purity detection of primary astrocytes(×200)圖1 原代星形膠質(zhì)細(xì)胞的純度檢測(cè)(×200)

        2.2 各組細(xì)胞中Nestin蛋白的表達(dá)量 倒置熒光顯微鏡下觀察,結(jié)果顯示劃痕組的Nestin表達(dá)量明顯高于對(duì)照組和炎癥組,見(jiàn)圖2。

        Fig.2 The Nestin expression of RAS in each group analyzed by immunofluorescence(immunofluorescence staining,×200)圖2 免疫熒光染色檢測(cè)各組RAS的Nestin表達(dá)(免疫熒光染色,×200)

        2.3 不同損傷類(lèi)型細(xì)胞中Shh蛋白表達(dá)量 Western blot結(jié)果顯示,劃痕組Shh蛋白表達(dá)量明顯高于炎癥組(0.768±0.341vs.0.094±0.026,n=3,t=3.412,P<0.05),見(jiàn)圖3。

        Fig.3 The shh expressions of RAS in different injured groups analyzed by Western blot assay圖3 Western blot檢測(cè)不同損傷組RAS的Shh表達(dá)量

        2.4 Shh激活劑對(duì)不同損傷類(lèi)型誘導(dǎo)RAS源性神經(jīng)干細(xì)胞基因表達(dá)的影響 添加Shh信號(hào)通路激活劑SAG后的對(duì)照組中神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因表達(dá)量較低,炎癥組較對(duì)照組有所升高(P<0.01),劃痕誘導(dǎo)RAS的神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因表達(dá)量較炎癥組和對(duì)照組均有明顯增高(P<0.01),見(jiàn)表2。

        2.5 Shh抑制劑對(duì)不同損傷類(lèi)型誘導(dǎo)RAS源性神經(jīng)干細(xì)胞基因表達(dá)的影響 添加Shh信號(hào)通路的抑制劑cyclopamine后3組中神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因表達(dá)量明顯降低,炎癥組較對(duì)照組略有升高(P<0.01),劃痕誘導(dǎo)RAS的表達(dá)量較炎癥組和對(duì)照組仍有一定增高趨勢(shì)(P<0.01),見(jiàn)表3。

        3 討論

        3.1 RAS的特點(diǎn) AST受損后,胞體肥大、周?chē)黄鹪龆?、延展性好、胞漿豐富。這些不同程度的防御性改變統(tǒng)稱(chēng)為“星形膠質(zhì)細(xì)胞反應(yīng)性膠質(zhì)化”。有研究表明,通過(guò)對(duì)小鼠進(jìn)行炎癥因子誘導(dǎo)神經(jīng)炎癥和大腦中動(dòng)脈閉塞誘導(dǎo)腦缺血缺氧,會(huì)產(chǎn)生2種不同的RAS:即A1型RAS和A2型RAS,A1型RAS基本不表達(dá)Nestin,且這2種不同的RAS表面基因以及對(duì)神經(jīng)系統(tǒng)的作用皆不相同[9]。因此需要研究和利用不同的RAS,以達(dá)到修復(fù)神經(jīng)系統(tǒng)損傷的目的。本研究通過(guò)在AST中添加IL-1α、TNF-α和C1q三種因子作為炎癥RAS模型,以劃痕實(shí)驗(yàn)制備創(chuàng)傷RAS模型,通過(guò)免疫熒光染色分析神經(jīng)干細(xì)胞的特異性標(biāo)志物Nestin在不同損傷細(xì)胞模型中的表達(dá)量,發(fā)現(xiàn)炎癥誘導(dǎo)的RAS中Nestin的表達(dá)量低于創(chuàng)傷誘導(dǎo)的RAS。出現(xiàn)這一結(jié)果可能是因?yàn)椴煌膿p傷方式對(duì)AST活化的程度有影響,導(dǎo)致活化后不同損傷類(lèi)型的RAS出現(xiàn)差異。所以,探究炎癥誘導(dǎo)的RAS和創(chuàng)傷誘導(dǎo)的RAS到底具有哪些差異可以成為后續(xù)研究的問(wèn)題。

        Tab.2 Results of qRT-PCR showing expressions of neural stem cell related genes in each group after treatment with SAG表2 qRT-PCR檢測(cè)各組細(xì)胞添加SAG后神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因的表達(dá)量 (n=3,±s)

        Tab.2 Results of qRT-PCR showing expressions of neural stem cell related genes in each group after treatment with SAG表2 qRT-PCR檢測(cè)各組細(xì)胞添加SAG后神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因的表達(dá)量 (n=3,±s)

        **P<0.01;a與對(duì)照+SAG組比較,b與炎癥+SAG組比較,P<0.05

        組別對(duì)照組對(duì)照+SAG組炎癥+SAG組劃痕+SAG組F Nestin 1.000±0 0.421±0.109 2.381±0.153a 5.354±0.845ab 74.065**Pax-6 1.000±0 0.173±0.090 1.462±0.172a 2.654±0.486ab 50.516**Sox-2 1.000±0 0.343±0.122 1.449±0.110a 3.250±0.148ab 397.170**Oct-4 1.000±0 0.244±0.062 1.536±0.256a 2.404±0.310ab 64.308**Map-2 1.000±0 0.156±0.033 1.236±0.252a 3.801±0.639ab 66.731**

        Tab.3 Results of qRT-PCR showing expressions of neural stem cell related genes in each group after treatment with cyclopamine表3 qRT-PCR檢測(cè)各組細(xì)胞添加環(huán)巴胺后神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因的表達(dá)量 (n=3,±s)

        Tab.3 Results of qRT-PCR showing expressions of neural stem cell related genes in each group after treatment with cyclopamine表3 qRT-PCR檢測(cè)各組細(xì)胞添加環(huán)巴胺后神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因的表達(dá)量 (n=3,±s)

        **P<0.01;a與對(duì)照+CYC組比較,b與炎癥+CYC組比較,P<0.05

        組別對(duì)照組對(duì)照+CYC組炎癥+CYC組劃痕+CYC組F Nestin 1.000±0 0.029±0.017 0.125±0.026a 0.222±0.031ab 44.290**Pax-6 1.000±0 0.021±0.019 0.101±0.019a 0.176±0.048ab 17.958**Sox-2 1.000±0 0.040±0.024 0.126±0.028a 0.194±0.010ab 36.623**Oct-4 1.000±0 0.029±0.016 0.100±0.021a 0.171±0.034ab 24.590**Map-2 1.000±0 0.013±0.007 0.080±0.021a 0.202±0.010ab 142.947**

        3.2 Shh蛋白在不同損傷模型中的表達(dá)差異 Shh作為一個(gè)重要的調(diào)節(jié)通路,在神經(jīng)系統(tǒng)中有著不可忽視的作用[10]。正常的中樞神經(jīng)系統(tǒng)中,星形膠質(zhì)細(xì)胞對(duì)Shh分泌較少甚至不分泌。而據(jù)報(bào)道,腦創(chuàng)傷等大腦侵襲性損傷相比大腦慢性淀粉樣變性或誘導(dǎo)性神經(jīng)元死亡等非侵襲性損傷導(dǎo)致的腦疾病可引起細(xì)胞分泌更多Shh蛋白,從而激活了Shh信號(hào)通路,使該通路能夠促進(jìn)具有神經(jīng)干細(xì)胞特性的RAS在體內(nèi)增殖[11]。在本研究中,通過(guò)Western blot檢測(cè)炎癥組和劃痕組的Shh表達(dá)量,發(fā)現(xiàn)劃痕誘導(dǎo)RAS中Shh表達(dá)水平明顯高于炎癥誘導(dǎo)的RAS,這一現(xiàn)象即說(shuō)明Shh的大量釋放是依賴(lài)于侵襲性損傷而不是神經(jīng)炎癥等非侵襲性損傷。

        3.3 Shh信號(hào)通路的激活和抑制 SAG作為Shh信號(hào)通路特異性激活劑,是一種苯并噻吩化合物,通過(guò)調(diào)節(jié)跨膜蛋白smo與下游效應(yīng)子的結(jié)合來(lái)激活通路,對(duì)神經(jīng)發(fā)生和神經(jīng)元的存活均表現(xiàn)出有益的作用[12]。Cyclopamine是一種甾體生物堿,具有致畸性和抗瘤性,通過(guò)其高親和力直接與smoothened結(jié)合來(lái)阻斷shh信號(hào)通路,從而抑制細(xì)胞生長(zhǎng)[13]。在本研究中,添加SAG后,創(chuàng)傷誘導(dǎo)的RAS相比炎癥誘導(dǎo)的RAS能表達(dá)更多神經(jīng)干細(xì)胞的相關(guān)基因,這說(shuō)明Shh信號(hào)通路大量的激活使得創(chuàng)傷性RAS基因組開(kāi)始轉(zhuǎn)錄和翻譯為神經(jīng)干細(xì)胞;而炎癥組較對(duì)照組細(xì)胞基因的升高是細(xì)微的。這種結(jié)果的出現(xiàn)可能是因?yàn)閯?chuàng)傷性RAS相比炎癥性RAS具有發(fā)展為神經(jīng)干細(xì)胞的潛能,Shh信號(hào)通路的大量激活使其潛能逐漸被激發(fā)。在添加cyclopamine后,對(duì)照組神經(jīng)干細(xì)胞的相關(guān)基因表達(dá)量極低,但劃痕組表達(dá)量明顯較炎癥組仍具優(yōu)勢(shì),這種結(jié)果可能是因?yàn)樘砑右种苿┖蠹?xì)胞培養(yǎng)的時(shí)間較長(zhǎng),導(dǎo)致cyclopamine抑制效果逐漸減弱并恢復(fù)了部分Shh信號(hào)通路傳導(dǎo),但創(chuàng)傷誘導(dǎo)RAS較炎癥誘導(dǎo)RAS釋放更多的Shh,因此仍能夠提高部分神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因的表達(dá)。

        3.4 Shh信號(hào)通路誘導(dǎo)RAS獲得干細(xì)胞潛能的優(yōu)缺點(diǎn) 在損傷后具有神經(jīng)干細(xì)胞特征的細(xì)胞可以為內(nèi)源性神經(jīng)修復(fù)提供重要的新資源,調(diào)節(jié)和控制Shh信號(hào)通路來(lái)治療中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病是一種具有潛力的方法。在發(fā)生腦損傷后,Shh信號(hào)通路不僅可以幫助損傷后內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞擴(kuò)散[14],還可以使受損后RAS啟動(dòng)內(nèi)源性神經(jīng)保護(hù)功能[15]。外源性激活Shh通路亦可促進(jìn)RAS介導(dǎo)的神經(jīng)保護(hù)作用[16]。該信號(hào)通路的神經(jīng)保護(hù)作用能夠減少星形膠質(zhì)細(xì)胞的反應(yīng)性并維持正常神經(jīng)系統(tǒng)的微環(huán)境[17]。因此,可以認(rèn)為Shh信號(hào)通路是RAS轉(zhuǎn)分化的關(guān)鍵因素。雖然Shh信號(hào)通路具有良好的修復(fù)作用,但其中的某些轉(zhuǎn)錄因子易激活體內(nèi)致癌靶點(diǎn),加速腫瘤的發(fā)生與增殖[18]。因此,Shh信號(hào)通路不當(dāng)?shù)募せ顣?huì)加速腫瘤干細(xì)胞的無(wú)限增殖,從而引起各種類(lèi)型癌癥或者加重癌變程度。本研究發(fā)現(xiàn),單憑Shh信號(hào)通路不足以將RAS真正地誘導(dǎo)為神經(jīng)干細(xì)胞??紤]該信號(hào)通路具有一定致瘤性,因此在運(yùn)用時(shí)應(yīng)考慮是否通過(guò)添加轉(zhuǎn)錄因子等方法提高誘導(dǎo)效率,并控制Shh激活劑或抑制劑的用量來(lái)防止其致瘤性。

        綜上所述,本研究證明不同類(lèi)型的RAS對(duì)Shh的釋放有差異,而Shh信號(hào)通路可以介導(dǎo)損傷后RAS表達(dá)神經(jīng)干細(xì)胞相關(guān)基因,從而使得其獲得神經(jīng)干細(xì)胞潛能。為進(jìn)一步證明誘導(dǎo)的RAS源性神經(jīng)干細(xì)胞是否具有多能性提供了理論依據(jù)。

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