宋健剛，鐘方麗*，王曉林，牟榮琴

吉林化工學(xué)院化學(xué)與制藥工程學(xué)院（吉林 132022）

黑果腺肋花楸（Aronia melanocarpa）系薔薇科腺肋花楸屬灌木，該樹種集藥用、食用、園林和生態(tài)價(jià)值于一體，市場(chǎng)前景非常廣闊。其果實(shí)為黑色球形，味甜酸稍有澀感，食用方法眾多，如果汁、果脯、果干和果醬等[1-3]。果實(shí)富含多酚、維生素和黃酮類化合物，具有眾多的保健功能。在歐美等國(guó)家，其果實(shí)提取物已在食品、藥品等領(lǐng)域廣泛應(yīng)用[4-5]。黑果腺肋花楸果具有保肝、抗微波輻射及紫外線作用，還有防治糖尿病及心腦血管疾病等生理活性[6-9]。已從黑果腺肋花楸果實(shí)中成分分離得到三萜類、黃酮類、酚酸類、甾醇類、糖及糖苷類等成分[10]，黃酮類化合物以花色苷、槲皮素及其衍生物為主。槲皮素衍生物主要以金絲桃苷、異槲皮素為主，金絲桃苷具有抗炎、抗腫瘤、利尿、止咳、降血壓、降低膽固醇、增強(qiáng)免疫力和抗抑郁等眾多功能[11-12]。離子液體是在室溫下呈液體的有機(jī)離子體系，具有溶解能力高、性質(zhì)穩(wěn)定、揮發(fā)性低等獨(dú)特的物理化學(xué)性質(zhì)，與傳統(tǒng)有機(jī)溶劑相比，離子液體具有綠色環(huán)保、不易燃燒等特點(diǎn)，其在天然植物活性成分提取領(lǐng)域已有所應(yīng)用[13-15]。超聲波能夠使植物組織破碎，加速提取溶劑在植物中的滲透，如果將離子液體與超聲波聯(lián)用，將提高目標(biāo)物質(zhì)的提取率[16-17]。因此，試驗(yàn)采用離子液體輔助超聲波技術(shù)，通過單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)優(yōu)化了黑果腺肋花楸果中金絲桃苷的提取工藝條件，為黑果腺肋花楸果的深入開發(fā)提供了試驗(yàn)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

黑果腺肋花楸果購自吉林省黑果花楸農(nóng)業(yè)科技開發(fā)有限責(zé)任公司，干燥，粉碎，待用。

金絲桃苷對(duì)照品（成都曼思特生物科技有限公司）；1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽、氯化-1-丁基-3-甲基咪唑、1-丁基-3-甲基咪唑四氟硼酸鹽、1-丁基-3-甲基咪唑硫酸氫鹽、溴化-1-丁基-3-甲基咪唑（純度99%，上海成捷化學(xué)有限公司）；甲醇、乙腈（色譜純，天津大茂化學(xué)試劑公司）；水為重蒸餾水；其余所用試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

1.2 儀器與設(shè)備

LC-2000型高效液相色譜儀（大連依利特分析儀器有限公司）；W 5-100 SP型恒溫水浴鍋（上海申生科技有限公司）；FA 2004 N型電子分析天平（上海精密科學(xué)儀有限公司）；JBT/C-YCL型超聲波藥品處理機(jī)（濟(jì)寧金百特電子有限責(zé)任公司）；JYL型粉碎料理機(jī)（山東九陽小家電有限公司）。

1.3 方法

1.3.1 黑果腺肋花楸果提取液中金絲桃苷的HPLC含量測(cè)定方法

1.3.1.1 色譜條件

色譜柱為大連依利特ODS2 C18（4.6 mm×250 mm，5 μm）；流動(dòng)相A為乙腈，流動(dòng)相B為0.25%醋酸水溶液；程序：0～45 min，15%～20% A；流速為1.0 mL/min；柱溫為30 ℃；進(jìn)樣量為20 μL；檢測(cè)波長(zhǎng)為360 nm[18]。在此條件下，金絲桃苷的保留時(shí)間為16.03 min，理論塔板數(shù)為87 242，與相鄰峰的分離度為2.53。HPLC色譜圖見圖1。

1.3.1.2 對(duì)照品溶液的制備

精密稱取2.30 mg干燥至恒質(zhì)量的金絲桃苷對(duì)照品，置于25 mL的容量瓶中，用甲醇溶解并定容至刻度，搖勻，配制成質(zhì)量濃度為0.092 mg·mL-1的對(duì)照品溶液，置于冰箱中避光保存?zhèn)溆肹19]。

1.3.1.3 供試樣品溶液的制備

稱取5 g黑果腺肋花楸果粉末，放入圓底燒瓶中，以一定的料液比加入離子液體乙醇水溶液，超聲提取，過濾，收集提取液，轉(zhuǎn)移至50 mL容量瓶中并用提取溶劑稀釋至刻度，搖勻，用微孔濾膜（0.22 μm）濾過，取續(xù)濾液，作為供試品溶液。

1.3.1.4 流動(dòng)相的選擇

試驗(yàn)主要考察甲醇-0.1%醋酸水溶液、乙腈-0.25%醋酸水溶液、乙腈-0.25%磷酸水溶液等各種流動(dòng)相對(duì)黑果腺肋花楸果提取液中金絲桃苷保留時(shí)間和分離度的影響。

圖1 對(duì)照品溶液及供試品溶液的HPLC圖譜

1.3.1.5 線性關(guān)系考察

吸取金絲桃苷的對(duì)照品溶液，配制成質(zhì)量濃度分別為0.97，1.84，3.68，5.52，7.36，29.0，11.04，14.72和18.40 μg·mL-1的系列對(duì)照品溶液，分別進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積。以金絲桃苷峰面積為縱坐標(biāo)、質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線[20]，得回歸方程Y=56.205X+11.297，R=0.998 1（n=9）。結(jié)果表明金絲桃苷進(jìn)樣濃度在0.97～18.40 μg·mL-1范圍內(nèi)與峰面積線性關(guān)系良好。

1.3.1.6 重復(fù)性試驗(yàn)

取6份同一批號(hào)黑果腺肋花楸果粉末，按1.3.1.3項(xiàng)下方法制備供試品溶液，進(jìn)樣量各20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積。金絲桃苷峰面積分別為140.68，141.87，140.84，141.54，141.95和140.76，RSD為0.41%，表明該含量測(cè)定方法具有較好的重復(fù)性。

1.3.1.7 儀器精密度試驗(yàn)

吸取對(duì)照品及供試品溶液，連續(xù)進(jìn)樣6次，每次進(jìn)樣20 μL，分別測(cè)定對(duì)照品及供試品溶液中金絲桃苷的峰面積。供試品中金絲桃苷峰面積分別為141.84，142.28，139.87，145.62，141.95和140.88，RSD為1.37%。對(duì)照品中金絲桃苷峰面積分別為496.09，485.94，497.15，488.47，491.28和487.96，RSD為0.93%，表明儀器精密度符合要求。

1.3.1.8 供試品溶液的穩(wěn)定性試驗(yàn)

吸取供試品溶液，分別于0，1，3，5，7和24 h進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積。供試品中金絲桃苷峰面積分別為141.84，140.82，138.75，142.73，141.07和142.12，RSD為0.99%，表明供試品溶液在室溫下24 h內(nèi)穩(wěn)定，滿足測(cè)定要求。

1.3.1.9 加樣回收率試驗(yàn)

稱取6份金絲桃苷含量已知的黑果腺肋花楸果粉末，每份中加入0.5 mL質(zhì)量濃度為92.00 μg·mL-1的金絲桃苷對(duì)照品溶液，按1.3.1.3項(xiàng)下方法制備供試品溶液，在上述色譜條件下，測(cè)定金絲桃苷的峰面積。

1.3.1.10 檢測(cè)限與定量限試驗(yàn)

吸取適量對(duì)照品溶液，逐步稀釋，直到檢測(cè)峰高為基線噪聲的3倍為止，計(jì)算金絲桃苷的最低檢測(cè)濃度。結(jié)果表明，金絲桃苷的最低檢測(cè)限為0.029 44 μg·mL-1。吸取適量對(duì)照品溶液，逐步稀釋，直到檢測(cè)峰高為基線噪聲的10倍為止，計(jì)算金絲桃苷的定量限[21]。結(jié)果表明，金絲桃苷的定量限為0.055 20 μg·mL-1。

1.3.2 離子液體超聲輔助提取黑果腺肋花楸果中金絲桃苷工藝條件的優(yōu)化

1.3.2.1 單因素試驗(yàn)

1) 離子液體類型的選擇。稱取5 g黑果腺肋花楸果粉末，放入圓底燒瓶中，加入濃度為0.05 mol·L-1的不同離子液體的50%乙醇水溶液，離子液體分別為：溴化-1-丁基-3-甲基咪唑、氯化-1-丁基-3-甲基咪唑、1-丁基-3-甲基咪唑四氟硼酸鹽、1-丁基-3-甲基咪唑硫酸氫鹽、1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽。放入超聲機(jī)中，料液比為1:20（g/mL），設(shè)定水浴溫度50～60 ℃、超聲功率80 W、提取30 min，過濾，濾液轉(zhuǎn)移到50 mL容量瓶中，50%乙醇水溶液定容，搖勻，用微孔濾膜（0.22 μm）濾過，棄去初濾液，取續(xù)濾液作為供試品溶液。按1.3.1.1節(jié)色譜條件進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積，計(jì)算金絲桃苷的提取率。

式中：C為提取液中金絲桃苷的質(zhì)量濃度（μg·mL-1）；V為提取液定容的體積（mL）；W為黑果腺肋花楸果粉末的質(zhì)量（g）。

2) 提取溶劑的選擇。稱取5 g黑果腺肋花楸果粉末，放入圓底燒瓶中，加入濃度為0.05 mol·L-1的1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽乙醇水溶液，乙醇體積分?jǐn)?shù)分別設(shè)定為0，10%，30%，50%，70%和90%，放入超聲機(jī)中，其他按1.3.2.1節(jié)中（1）方法提取。按1.3.1.1節(jié)色譜條件進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積，計(jì)算金絲桃苷的提取率。

3) 離子液體濃度的選擇。稱取5 g黑果腺肋花楸果粉末，放入圓底燒瓶中，加入濃度分別為0.05，0.1，0.3，0.5，0.7，0.9和1.1 mol·L-1的1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽50%乙醇水溶液[22]，放入超聲機(jī)中，其他按1.3.2.1節(jié)中（1）方法提取。按1.3.1.1節(jié)色譜條件進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積，計(jì)算金絲桃苷的提取率。

4) 料液比的選擇。稱取5 g黑果腺肋花楸果粉末，放入圓底燒瓶中，加入濃度為0.05 mol·L-1的1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽50%乙醇水溶液，放入超聲機(jī)中，料液比分別設(shè)定為1:5，1:10，1:20，1:30，1:40和1:50（g/mL），其他按1.3.2.1節(jié)中（1）方法提取。按1.3.1.1節(jié)色譜條件進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積，計(jì)算金絲桃苷的提取率。

5) 提取時(shí)間的選擇。稱取5 g黑果腺肋花楸果粉末，放入圓底燒瓶中，加入濃度為0.05 mol·L-1的1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽50%乙醇水溶液，放入超聲機(jī)中，料液比設(shè)定為1:20（g/mL），提取時(shí)間分別設(shè)定為5，10，15，20，30，40，50和60 min，其他按1.3.2.1節(jié)中（1）方法提取。按1.3.1.1節(jié)色譜條件進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積，計(jì)算金絲桃苷的提取率。

6) 超聲功率的選擇。稱取5 g黑果腺肋花楸果粉末，放入圓底燒瓶中，加入濃度為0.05 mol·L-1的1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽50%乙醇水溶液，放入超聲機(jī)中，超聲功率分別為60，70，80，90和100 W，料液比為1:20（g/mL），提取時(shí)間為40 min，其他按1.3.2.1節(jié)中（1）方法提取。按1.3.1.1節(jié)色譜條件進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積，計(jì)算金絲桃苷的提取率。

7) 提取水浴溫度的選擇。稱取5 g黑果腺肋花楸果粉末，放入圓底燒瓶中，加入濃度為0.05 mol·L-1的1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽50%乙醇水溶液，放入超聲機(jī)中，料液比設(shè)定為1:20（g/mL），超聲功率為90 W，提取時(shí)間為40 min，提取水浴溫度分別設(shè)定為30～40，40～50，50～60，60～70和70～80 ℃，其他按1.3.2.1節(jié)中（1）方法提取。按1.3.1.1節(jié)色譜條件進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積，計(jì)算金絲桃苷的提取率。

1.3.2.2 正交試驗(yàn)

根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果，將提取水浴溫度固定為70～80 ℃，離子液體固定為1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽，離子液體濃度固定為0.05 mol·L-1，選擇提取溶劑乙醇體積分?jǐn)?shù)、料液比、提取時(shí)間、超聲功率作為考察因素，按四因素三水平進(jìn)行試驗(yàn)，因素水平表見表1。

表1 正交試驗(yàn)因素水平表

1.3.2.3 工藝驗(yàn)證性試驗(yàn)

稱取3份黑果腺肋花楸果粉末，每份5 g，放入圓底燒瓶中，加入濃度為0.05 mol·L-1的1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽60%乙醇水溶液，放入超聲機(jī)中，料液比為1:25（g/mL），設(shè)定水浴溫度70～80 ℃、超聲功率80 W、提取35 min，過濾，濾液轉(zhuǎn)移到50 mL容量瓶中，60%乙醇水溶液定容，搖勻，用微孔濾膜（0.22 μm）濾過，棄去初濾液，取續(xù)濾液作為供試品溶液。按1.3.1.1節(jié)色譜條件，分別進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積，計(jì)算金絲桃苷的提取率。

1.3.2.4 離子液體輔助提取黑果腺肋花楸果中金絲桃苷的對(duì)比試驗(yàn)

稱取3份黑果腺肋花楸果粉末，每份5 g，放入圓底燒瓶中，加入60%乙醇水溶液，放入超聲機(jī)中，料液比為1:25（g/mL），設(shè)定水浴溫度70～80 ℃、超聲功率80 W、提取35 min，過濾，濾液轉(zhuǎn)移到50 mL容量瓶中，60%乙醇水溶液定容，搖勻，用微孔濾膜（0.22 μm）濾過，棄去初濾液，取續(xù)濾液作為供試品溶液。按1.3.1.1節(jié)色譜條件，分別進(jìn)樣20 μL，測(cè)定金絲桃苷的峰面積，計(jì)算金絲桃苷的提取率。

2 結(jié)果與分析

2.1 流動(dòng)相條件的選擇

結(jié)果表明，適宜的流動(dòng)相為乙腈-0.25%醋酸水溶液梯度洗脫，它能夠?qū)⒑诠倮呋ㄩ惫崛∫褐械慕鸾z桃苷與其他物質(zhì)分開，保留時(shí)間適中。按照金絲桃苷峰計(jì)理論，塔板數(shù)為87 242，與相鄰峰的分離度為2.53，故選擇在上述流動(dòng)相條件下進(jìn)行相關(guān)試驗(yàn)。

2.2 加樣回收率試驗(yàn)

表2顯示，金絲桃苷的平均回收率為98.17%，RSD為1.89%。

表2 回收率試驗(yàn)結(jié)果

2.3 離子液體超聲輔助提取黑果腺肋花楸果中金絲桃苷工藝條件優(yōu)化試驗(yàn)結(jié)果

2.3.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

2.3.1.1 離子液體類型的選擇

表3顯示，在5種離子液體中，1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽對(duì)金絲桃苷的提取效果最好，所以選擇1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽為后續(xù)試驗(yàn)的離子液體。

2.3.1.2 提取溶劑的選擇

由圖2可知，乙醇體積分?jǐn)?shù)在0～50%范圍內(nèi)，金絲桃苷的提取率隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的升高而增加；當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)達(dá)到50%時(shí)，金絲桃苷的提取率達(dá)到了最高值，繼續(xù)提高乙醇體積分?jǐn)?shù)，金絲桃苷的提取率逐漸下降。分析其原因可能是金絲桃苷為黃酮苷，極性較高，當(dāng)提取溶劑乙醇體積分?jǐn)?shù)較高時(shí)，溶劑的極性降低，其對(duì)黃酮苷金絲桃苷的溶解能力下降，提取率逐漸降低，所以選擇50%乙醇水溶液為后續(xù)試驗(yàn)的提取溶劑。

表3 離子液體類型的選擇

圖2 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)提取率的影響

2.3.1.3 離子液體濃度的選擇

由圖3可知，當(dāng)離子液體濃度為0.05 mol·L-1時(shí)，金絲桃苷的提取率達(dá)到最高值，之后隨著離子液體濃度的增加，金絲桃苷的提取率逐漸下降。分析其原因可能是隨著離子液體濃度的升高，溶液的黏度增大，溶劑滲透進(jìn)藥材基質(zhì)內(nèi)的能力減小，所以提取時(shí)離子液體濃度不要太高。

圖3 離子液體濃度對(duì)提取率的影響

2.3.1.4 料液比的選擇

由圖4可知，隨著料液比的增加，金絲桃苷的提取率逐漸升高，當(dāng)料液比達(dá)到1:20（g/mL）時(shí)，金絲桃苷的提取率達(dá)到最大值。繼續(xù)加大料液比，金絲桃苷的提取率緩慢下降。分析原因可能是黑果腺肋花楸果的質(zhì)量固定時(shí)，在一定范圍內(nèi)提高提取溶劑的用量，會(huì)使黑果腺肋花楸果中的金絲桃苷更好地轉(zhuǎn)移到溶劑中，所以當(dāng)料液比為1:20（g/mL）時(shí)，黑果腺肋花楸果中的金絲桃苷幾乎全部溶出，如果繼續(xù)增大料液比，黑果腺肋花楸果中金絲桃苷的溶出變化就不明顯了，所以選擇1:20（g/mL）為后續(xù)試驗(yàn)的料液比。

圖4 料液比對(duì)提取率的影響

2.3.1.5 提取時(shí)間的選擇

由圖5可知，隨著提取時(shí)間的不斷延長(zhǎng)，金絲桃苷的提取率不斷提高，當(dāng)提取時(shí)間從5 min增加到40 min時(shí)，金絲桃苷的提取率達(dá)到到最大值，當(dāng)提取時(shí)間繼續(xù)延長(zhǎng)時(shí)，金絲桃苷的提取率略有下降。分析原因可能是提取時(shí)間越長(zhǎng)，越有利于金絲桃苷的溶出，但如果提取時(shí)間過長(zhǎng)會(huì)使雜質(zhì)溶出增加，可能會(huì)對(duì)其測(cè)定有一定的影響，所以選擇40 min為后續(xù)試驗(yàn)的提取時(shí)間。

圖5 提取時(shí)間對(duì)提取率的影響

2.3.1.6 超聲功率的選擇

由圖6可知，隨著超聲功率的不斷增加，金絲桃苷的提取率不斷增加，當(dāng)超聲功率由60 W提高到90 W時(shí)，金絲桃苷的提取率達(dá)到最高值，繼續(xù)提高超聲功率，金絲桃苷的提取率略有下降。分析其原因可能是隨著超聲功率的提高，超聲波對(duì)黑果腺肋花楸果細(xì)胞的破碎程度不斷增大，從而加速了金絲桃苷的溶出，但超聲功率過高，可能會(huì)對(duì)金絲桃苷的結(jié)構(gòu)產(chǎn)生影響或可能會(huì)使雜質(zhì)溶出增加，從而對(duì)其測(cè)定產(chǎn)生一定的影響，需要進(jìn)一步研究。

2.3.1.7 提取水浴溫度的選擇

由圖7可知，隨著水浴溫度的提高，金絲桃苷的提取率逐漸提高，當(dāng)水浴溫度達(dá)到70～80 ℃時(shí)，金絲桃苷的提取率達(dá)到最高值。分析原因可能是隨著水浴溫度的不斷升高，提取溶劑的運(yùn)動(dòng)速度不斷增大，當(dāng)水浴溫度提高到70～80 ℃時(shí)，提取溶劑處于微沸狀態(tài)，此時(shí)溶劑滲透到黑果腺肋花楸果組織細(xì)胞中的能力最強(qiáng)，提取率最高。

圖6 超聲功率對(duì)提取率的影響

圖7 提取溫度對(duì)提取率的影響

2.3.2 正交試驗(yàn)結(jié)果

稱取9份黑果腺肋花楸果粉，每份5 g，放入圓底燒瓶中，按正交試驗(yàn)表進(jìn)行試驗(yàn)，將每組試驗(yàn)的提取水浴溫度固定為70～80 ℃，離子液體濃度固定為0.05 mol·L-1，結(jié)果見表4。

表4 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)及試驗(yàn)結(jié)果

結(jié)果表明：離子液體超聲輔助提取黑果腺肋花楸果中金絲桃苷的最優(yōu)方案為A3B3C1D2，各因素的影響大小為乙醇體積分?jǐn)?shù)＞超聲功率＞料液比＞提取時(shí)間，即離子液體為1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽，離子液體濃度為0.05 mol·L-1，料液比為1:25（g/mL），提取溶劑為60%乙醇水溶液，提取時(shí)間為35 min，提取溫度為70～80 ℃，超聲功率為80 W。

2.3.3 工藝穩(wěn)定性驗(yàn)證試驗(yàn)

經(jīng)3次驗(yàn)證試驗(yàn)，金絲桃苷的峰面積分別為158.28，165.75和168.95，平均值為164.33，其提取率分別為26.24，27.57和28.30 μg·g-1，平均值為27.37 μg·g-1，RSD為3.80%，結(jié)果表明，優(yōu)選的離子液體超聲輔助提取工藝比較穩(wěn)定。

2.3.4 對(duì)比試驗(yàn)

提取體系不加入離子液體，其它操作條件與2.3.3節(jié)相同，3次試驗(yàn)結(jié)果中，金絲桃苷的峰面積分別為119.55，119.18和112.21，平均值為116.98，其提取率分別為19.32，19.19和17.95 μg·g-1，平均值為18.82 μg·g-1，RSD為3.98%，根據(jù)2.3.3節(jié)試驗(yàn)結(jié)果可知，離子液體的加入使金絲桃苷提取率提高了45.43%。

3 結(jié)論與討論

1) 試驗(yàn)對(duì)黑果腺肋花楸果中金絲桃苷含量的HPLC測(cè)定方法進(jìn)行了考察。結(jié)果表明，所建立的含量測(cè)定方法操作簡(jiǎn)便，精密度高，重復(fù)性及線性關(guān)系良好，金絲桃苷的平均回收率為98.17%。

2) 試驗(yàn)采用超聲波輔助離子液體法對(duì)黑果腺肋花楸果中的金絲桃苷進(jìn)行了提取，在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上，通過正交試驗(yàn)進(jìn)一步考察了提取工藝參數(shù)。結(jié)果顯示，最佳提取工藝：離子液體為1-丁基-3-甲基咪唑硝酸鹽，離子液體濃度為0.05 mol·L-1，料液比為1:25（g/mL），提取溶劑為60%乙醇水溶液，提取時(shí)間為35 min，提取溫度為70～80 ℃，超聲功率為80 W。在優(yōu)化提取條件下，金絲桃苷的提取率為27.37 μg·g-1。結(jié)果表明，添加有離子液體的乙醇水溶液比純乙醇水溶液對(duì)金絲桃苷的提取率提高了45.43%，可能是因?yàn)殡x子液體對(duì)植物纖維素的溶解能力較高，有利于目標(biāo)成分的溶出，從而使提取率提高。該方法具有快速、高效、環(huán)保等優(yōu)點(diǎn)，為黑果腺肋花楸果活性成分的提取提供了一種新方法。