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        血必凈注射液通過調(diào)控p38 MAPK/NF-κB通路對百草枯中毒大鼠急性肺損傷保護(hù)作用的研究*

        2019-06-05 02:34:10吳程程婁成龍韓淑萍
        中國中醫(yī)急癥 2019年5期
        關(guān)鍵詞:劑量血清模型

        吳程程 婁成龍 韓淑萍

        (1.浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬杭州市第一人民醫(yī)院,浙江 杭州 310006;2.浙江省杭州市紅十字會醫(yī)院,浙江 杭州310003)

        百草枯(PQ)為速效觸滅型的除草劑,其常見商品名是克蕪蹤,對牲畜和人類有較強(qiáng)毒性。PQ中毒后,可迅速分布于人體的各大組織器官,尤以肺組織濃度最高,可在肺內(nèi)蓄積,可通過多胺攝取途徑導(dǎo)致氧化應(yīng)激損傷及炎癥反應(yīng)的發(fā)生。PQ引起的肺損傷主要出現(xiàn)肺泡上皮細(xì)胞的損害及炎性細(xì)胞的浸潤,導(dǎo)致肺組織的炎癥、水腫,最終可誘發(fā)肺纖維化的發(fā)生,危及患者生命。目前,對于PQ所致的肺損傷暫無有效解毒劑,主要以預(yù)防性減輕肺損傷程度為主。關(guān)于PQ中毒所致的肺損傷的致病機(jī)理尚不完全明確。相關(guān)研究顯示,絲裂原激活蛋白激酶(MAPK)路徑為細(xì)胞內(nèi)傳導(dǎo)信號的主要通路,很多刺細(xì)胞轉(zhuǎn)化、增殖、分化及凋亡等生物學(xué)反應(yīng)都需要此通路傳導(dǎo),而MAPK內(nèi)主要成員為p38 MAPK,可調(diào)控肺損傷中炎性反應(yīng)與細(xì)胞凋亡,并調(diào)節(jié)內(nèi)皮通透性[1-2]。 轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子(NF-κB)為多種細(xì)胞因子調(diào)節(jié)與炎性介質(zhì)表達(dá)的主要轉(zhuǎn)錄因子,涉及機(jī)體內(nèi)細(xì)胞凋亡與分化、應(yīng)激及組織損傷等過程中信息傳遞[2-3]。血必凈注射液為在血府逐瘀湯基礎(chǔ)上,經(jīng)過反復(fù)篩選精煉所提取靜脈制劑,有研究顯示對臨床PQ中毒患者有一定療效,但其對PQ所致肺損傷的療效及機(jī)制研究報(bào)道較少[4]。因此,本研究成功復(fù)制PQ中毒大鼠急性肺損傷模型,觀察血必凈注射液通過調(diào)控p38 MAPK/NF-κB通路對PQ中毒大鼠急性肺損傷保護(hù)影響,為臨床患者診療提供一些實(shí)驗(yàn)室依據(jù)?,F(xiàn)報(bào)告如下。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

        選取SPF級Wistar雄性大鼠75只,8周齡,購自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物公司,許可證號SCXK(京)2018-21,體質(zhì)量(208.71±5.62) g。 常規(guī)飼養(yǎng) 1 周后開始實(shí)驗(yàn),大鼠分籠飼養(yǎng),每個(gè)籠內(nèi)5只,室溫維持在22~26℃,相對濕度在55%~65%間,晝夜循環(huán),保持12 h光照,大鼠灌胃、添加飼料及換水等都有專人進(jìn)行[3]。本文研究經(jīng)本院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會批準(zhǔn)。

        1.2 試藥與儀器

        體積分?jǐn)?shù)20%PQ溶液 (購自青島瀚生生物公司,加入0.9%氯化鈉注射液稀釋至25 mg/mL),血必凈注射液(10 mL/支,購自天津紅日藥業(yè)公司)。 Trizol(購自美國Invitrogen公司,生產(chǎn)批號50473208),谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-PX)、丙二醛(MDA)、髓過氧化物酶(MPO)、超氧化物歧化酶 (SOD)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、胰島素樣生長因子-1(IGF-1)、白細(xì)胞介素-6(IL-6)及IL-1β(購自南京建成生物研究所)。 電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱(型號DHG-9023A)、離心機(jī)(型號TGL-168)均由美國KIMBLE公司生產(chǎn),PCR擴(kuò)增儀(型號PE9600,由美國PE公司生產(chǎn)),病理組織漂烘儀(型號PHY-Ⅲ,由常州中威電子儀器廠生產(chǎn)),轉(zhuǎn)輪式切片機(jī)(型號萊卡-2016,由德國萊卡公司生產(chǎn)),包埋機(jī)(型號BMJ-Ⅲ,由常州中威電子儀器廠生產(chǎn)),全自動(dòng)封閉式組織脫水機(jī)(型號TSJ-Ⅱ,由常州中威電子儀器廠生產(chǎn))。

        1.3 分組與造模

        隨機(jī)數(shù)字表法將大鼠分成5組,模型組、正常組及血必凈低、中、高劑量組,每組各15只。除正常組外,其他各組大鼠一次性灌胃劑量為25 mg/kg的PQ溶液染毒。染毒2 h[4]后血必凈低、中、高劑量組大鼠分別經(jīng)尾巴靜脈注射含生藥0.43、0.86、1.72 g/kg的血必凈注射液2 mL,模型組和正常組大鼠注射等劑量0.9%氯化鈉注射液[5],每日 1 次,連續(xù)注射 3 d。

        1.4 標(biāo)本采集與檢測

        給藥1 d后各組隨機(jī)選取5只大鼠,腹腔注射劑量為0.8 mL/100 g的2.4%水合氯醛麻醉,斷頸處死,取股動(dòng)脈血清,分離后保存在-70℃冰箱內(nèi)待測。給藥3 d后將剩余10只大鼠斷頸處死,取股動(dòng)脈血清和肺組織,血清分離后和肺組織均保存在-70℃冰箱內(nèi)待測。

        1.4.1 檢測大鼠肺濕/干重比例 觀察大鼠飲食、活動(dòng)及呼吸等一般狀況,取大鼠右肺上葉對其濕重進(jìn)行精確稱量,而后在80℃的烤箱內(nèi)烘烤至恒重,稱量后確定其肺濕/干重比例。

        1.4.2 大鼠肝臟組織病理學(xué)觀察 取大鼠肝臟組織,緩沖液沖洗,10%甲醛固定,酒精梯度脫水、透明,石蠟包埋后切片,厚度為4 m,常規(guī)行HE染色,在光鏡下觀察各組大鼠肺組織病理狀況。

        1.4.3 檢測血清氧化應(yīng)激指標(biāo)及炎性因子 生化法檢測血清 GSH-PX、SOD、MPO、MDA 活性,ELISA 法檢測血清IGF-1、TNF-α、IL-1β及IL-6含量,具體步驟依據(jù)試劑盒說明書進(jìn)行。

        1.4.4 免疫組化檢測各組大鼠肺組織內(nèi)Bax、Bcl-2表達(dá)狀況 石蠟切片脫蠟后將內(nèi)源性過氧化物酶滅活,熱修復(fù)暴露抗原位點(diǎn),置入孵育盒內(nèi),PBS溶液沖洗3次,每次3 min,加入山羊血清,孵育10 min,在加入一抗兔多克隆抗體,在4℃下過夜。PBS溶液沖洗3次,每次3 min,滴入二抗在室溫下孵育10 min,PBS溶液沖洗3次,每次3 min,在滴入辣根酶標(biāo)記鏈霉卵白素,采用DAB顯色,中性樹膠封片。棕黃色為染色陽性,使用Image-Pro Plus6.0圖片分析檢測檢測圖像光密度。

        1.4.5 Real time-PCR檢測各組大鼠肺組織內(nèi)NF-κB及IκB mRNA相對表達(dá)量 Trizol法提取大鼠肺組織細(xì)胞總RNA行 RT-PCR擴(kuò)增,NF-κB上游引物5′-CATTGAGAAGATCTTGGAG-3′, 下游引物 5′-CTATGTTCAGTACAT GATTG-3′, 擴(kuò)增片段是 482 bp;IκB上游引物 5′-GCTCCAGGAATTCCTCGGTA-3′,下游引物 5′-GAGT CCTGCATGCTAGCTAG-3′。 擴(kuò)增片段為389 bp;內(nèi)參 GAPDH 上游引物 5′-CTTGATCGTACGTAGCCTGA-3′, 下游引物 5′-GTGTAGTGTACTGTCATGCA-3′,擴(kuò)增片段 482 bp。PCR 反應(yīng)條件:94 ℃下45 s,55℃下50 s,72℃下 75 s, 在 40次循環(huán)以后獲取 NF-κB 及 IκB mRNA 循環(huán)閾值(Ct),ΔΔCt(ΔΔCt=Ct目的基因-ΔCt內(nèi)參基因)分析,算出 2-ΔΔCt目的基因相對表達(dá)量。

        1.4.6 Western blotting檢測肺組織p38-MAPK蛋白表達(dá) 選取肺組織組織研磨,經(jīng)過組織裂解后上樣電泳,起始電壓80 V,溴酚藍(lán)染料前緣進(jìn)入到分離膠上緣后電壓提升到100 V,溴酚藍(lán)泳出分離膠下緣后電泳結(jié)束。半干電轉(zhuǎn)移儀于PVDF膜內(nèi)行蛋白質(zhì)電轉(zhuǎn)移,恒流為30 mA,連續(xù)90 min。PVDF膜取出后采用5%TBST脫脂奶粉封閉,震蕩60 min。結(jié)束封閉后采用TNS-T漂洗液洗膜10 min,3次,把膜轉(zhuǎn)移到雜交袋內(nèi),加入適量漂洗液稀釋抗體,封口后在4℃下孵育過夜;TBST漂洗液洗膜10 min,3次,在加入漂洗液稀釋的辣根過氧化物酶標(biāo)記二抗,震蕩60 min。PVDF膜放置在ECL顯色液內(nèi)震蕩溫育5 min,暗室下曝光、顯影及定影。清水沖洗以后,晾干掃描,Image J軟件對掃描圖像目的條帶行灰度分析。內(nèi)參蛋白為β-actin校準(zhǔn),各組蛋白與內(nèi)參蛋白的灰度值間比值為目的蛋白相對表達(dá)量。

        1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

        2 結(jié) 果

        2.1 各組大鼠一般狀況及肺組織肺濕/干質(zhì)量比較

        見表1。正常組大鼠飲食及活動(dòng)正常,毛色有光澤,沒有發(fā)生呼吸急促或者呼吸困難;模型組大鼠飲水和飲食量降低,毛色發(fā)暗,易煩躁,活動(dòng)量下降,發(fā)生呼吸困難或者呼吸急促狀況,口、鼻周邊有血性分泌物,出現(xiàn)瀕死狀或者全身衰竭,血必凈低劑量組大鼠和模型組近似;血必凈中、高劑量組大鼠毛發(fā)較模型組有光澤,食量、活動(dòng)量增大,呼吸急促或者呼吸困難等癥狀明顯好轉(zhuǎn)。和正常組相比,模型組大鼠肺濕/干質(zhì)量比例上升,和模型組相比,血必凈中、高劑量組比例下降,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        表1 各組大鼠肺組織肺濕/干質(zhì)量比較(±s)

        表1 各組大鼠肺組織肺濕/干質(zhì)量比較(±s)

        與正常組比較,*P<0.05;與模型組比較,△P<0.05。 下同

        組 別 n正常組 15模型組 15血必凈低劑量組 15肺濕/干質(zhì)量(g/g)3.28±0.10 4.89±0.12*4.85±0.09血必凈中劑量組 15 4.39±0.10△血必凈高劑量組 15 4.37±0.08△

        2.2 各組大鼠肺組織病理觀察

        見圖1。正常組大鼠肝小葉及肝組織結(jié)構(gòu)清晰,肝細(xì)胞飽滿,細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)無異常,沒有出血壞死、水腫及炎癥滲出等狀況;模型組大鼠肺泡內(nèi)皮細(xì)胞腫脹,毛細(xì)血管充血,肺泡腔內(nèi)滲出蛋白水腫液,有大量炎性細(xì)胞浸潤,血必凈低劑量組和模型組近似;血必凈中、高劑量組大鼠肺組織內(nèi)炎性細(xì)胞浸潤減輕,肝小葉和肝組織結(jié)構(gòu)清晰,細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)正常。

        圖1 各組大鼠肺組織病理比較(HE染色,100倍)

        2.3 各組大鼠血清氧化應(yīng)激指標(biāo)比較

        見表2。給藥后1、3 d,和正常組相比,模型組大鼠血清GSH-PX、SOD含量下降,MPO、MDA含量上升;和模型組相比,血必凈中、高劑量組大鼠血清GSHPX、SOD含量上升,MPO、MDA含量下降,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        表2 各組大鼠血清氧化應(yīng)激指標(biāo)比較(±s)

        表2 各組大鼠血清氧化應(yīng)激指標(biāo)比較(±s)

        GSH-PX(U/mL) MPO(U/mL) SOD(U/mL) MDA(nmol/L)106.05±5.92 30.15±4.19 310.64±15.19 3.02±0.29 105.68±5.34 30.31±4.22 312.54±14.36 3.05±0.30 35.21±5.30* 291.05±4.60*216.38±15.09* 5.03±0.35*(n=15) 給藥 3 d 41.17±5.23* 275.81±4.39*231.57±14.28* 4.71±0.34*血必凈低劑量組 給藥 1 d 38.91±5.23 283.35±4.80 220.47±15.31 5.04±0.36(n=15) 給藥 3 d 43.60±5.44 269.17±4.68 233.60±15.25 4.67±0.32血必凈中劑量組 給藥 1 d 76.94±5.11△ 221.49±4.13△ 281.67±15.22△ 4.10±0.32△(n=15) 給藥 3 d 88.52±5.19△ 204.35±4.29△ 291.36±15.64△ 3.98±0.31△血必凈高劑量組 給藥 1 d 79.05±5.32△ 218.65±4.36△ 185.93±15.67△ 4.05±0.30△(n=15) 給藥 3 d 89.67±5.17△ 202.61±4.15△ 293.14±14.90△ 3.95±0.28△組 別 時(shí)間正常組 給藥1 d(n=15) 給藥 3 d模型組 給藥1 d

        2.4 各組大鼠血清炎性因子含量比較

        見表3。給藥后1、3 d,和正常組相比,模型組大鼠血清IGF-1、TNF-α、IL-1β及IL-6含量上升;和模型組相比,血必凈中、高劑量組大鼠血清IGF-1、TNF-α、IL-1β及IL-6含量下降,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        2.5 各組大鼠肺組織內(nèi)Bcl-2、Bax蛋白表達(dá)比較

        見表4。和正常組相比,模型組大鼠肺組織內(nèi)Bax及Bcl-2蛋白表達(dá)上升;和模型組相比,血必凈中、高劑量組大鼠肺組織內(nèi)Bax蛋白表達(dá)下降,Bcl-2蛋白表達(dá)上升,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        表3 各組大鼠血清炎性因子含量比較(±s)

        表3 各組大鼠血清炎性因子含量比較(±s)

        IGF-1(mg/L) TNF-α(ng/L) IL-1β(ng/L) IL-6(pg/mL)15.04±4.13 31.25±4.71 10.34±3.80 21.86±4.28 15.34±4.07 31.86±4.69 10.14±3.65 22.23±4.17 55.67±4.38* 148.50±4.92* 63.15±3.50* 201.53±4.27*(n=15) 給藥 3 d 46.92±4.18* 122.58±4.31* 49.02±3.81* 160.58±4.82*血必凈低劑量組 給藥1 d 53.92±4.50 145.33±4.60 60.34±3.25 198.52±4.60(n=15) 給藥 3 d 45.25±4.33 120.47±4.26 47.52±3.77 156.29±4.43血必凈中劑量組 給藥 1 d 31.61±4.85△ 100.36±4.80△ 45.28±3.39△ 145.28±4.73△(n=15) 給藥 3 d 22.17±4.50△ 89.54±4.42△ 37.91±3.25△ 125.84±4.69△血必凈高劑量組 給藥 1 d 28.51±4.23△ 96.31±4.29△ 42.10±3.82△ 141.92±4.51△(n=15) 給藥 3 d 21.94±4.28△ 86.53±4.69△ 35.64±3.42△ 123.41±4.70△組 別 時(shí)間正常組 給藥1 d(n=15) 給藥 3 d模型組 給藥1 d

        表4 各組大鼠肺組織內(nèi)Bcl-2、Bax蛋白表達(dá)比較(±s)

        表4 各組大鼠肺組織內(nèi)Bcl-2、Bax蛋白表達(dá)比較(±s)

        組 別 n正常組 15模型組 15 Bax蛋白 Bcl-2蛋白0.58±0.22 0.52±0.18 5.42±0.26* 3.67±0.20*血必凈低劑量組 15 5.31±0.24 3.70±0.21血必凈中劑量組 15 3.18±0.27△ 5.06±0.26△血必凈高劑量組 15 3.14±0.25△ 5.10±0.24△

        2.6 各組大鼠肺組織內(nèi)NF-κB及IκB mRNA相對表達(dá)量及p38 MAPK蛋白表達(dá)比較

        見表5,圖2~圖3。和正常組相比,模型組大鼠NF-κB mRNA、p38 MAPK 蛋白表達(dá)上升,IκB mRNA 表達(dá)下降;和模型組相比,血必凈中、高劑量組大鼠NF-κB mRNA、p38 MAPK 蛋白表達(dá)下降,IκB mRNA 表達(dá)上升,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        表5 各組大鼠肺組織內(nèi)NF-κB及IκB mRNA相對表達(dá)量及p38 MAPK 蛋白表達(dá)比較(±s)

        表5 各組大鼠肺組織內(nèi)NF-κB及IκB mRNA相對表達(dá)量及p38 MAPK 蛋白表達(dá)比較(±s)

        組 別 n正常組 15模型組 15 NF-κB mRNA 0.24±0.03 0.42±0.04*血必凈低劑量組 15 0.39±0.04血必凈中劑量組 15 0.29±0.03△血必凈高劑量組 15 0.28±0.03△IκB mRNA p38 MAPK 蛋白1.18±0.09 0.38±0.06 0.65±0.06* 0.97±0.09*0.67±0.07 0.93±0.08 0.94±0.08△ 0.50±0.07△0.96±0.08△ 0.49±0.06△

        圖2 Real time-PCR檢測各組大鼠肺組織內(nèi)NF-κB及IκB mRNA相對表達(dá)量

        圖3 Western blotting檢測各組大鼠肺組織p38 MAPK蛋白表達(dá)

        3 討 論

        目前關(guān)于PQ中毒相關(guān)機(jī)制研究還未全部明確,但對機(jī)體肺損傷多數(shù)研究認(rèn)為和氧化應(yīng)激反應(yīng)及氧自由基等有聯(lián)系。PQ進(jìn)入到肺組織以后,被還原型輔酶Ⅱ內(nèi)單電子還原成自由基,氧分子和其結(jié)合后產(chǎn)生許多超氧陰離子,并在SOD影響下產(chǎn)生過氧化氫,進(jìn)而產(chǎn)生羥自由基,其毒性更高會導(dǎo)致出現(xiàn)脂質(zhì)過氧化反應(yīng),自由基數(shù)量增大,對細(xì)胞的功能與結(jié)構(gòu)造成損壞[5-6]。GSH-PX和SOD則為機(jī)體內(nèi)主要自由基清除劑,MDA則為氧自由基代謝內(nèi)所形成脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物,對機(jī)體內(nèi)GSH-PX、MDA、MPO及SOD檢測可反映其脂質(zhì)過氧化損傷和自由基清除功能。

        機(jī)體肺受損時(shí),肺巨噬細(xì)胞來源細(xì)胞因子包含TNF-α、IL-1β等,它們不但可使炎癥細(xì)胞發(fā)生浸潤,還可加速釋放炎癥遞質(zhì),從而使機(jī)體產(chǎn)生復(fù)雜細(xì)胞因子網(wǎng)絡(luò),加速肺受損。其中IL-1β和TNF-α的生物學(xué)活性比較相近,對中性粒細(xì)胞和巨噬細(xì)胞可起到黏附與趨化影響,使血管通透性加強(qiáng)[7-8]。相關(guān)研究顯示,肺內(nèi)IGF-1在肺纖維化產(chǎn)生中其含量會升高,肺纖維化產(chǎn)生與進(jìn)展和IGF-1聯(lián)系緊密[9]。本研究顯示,和模型組相比,血必凈中、高劑量組大鼠血清IGF-1、TNF-α、IL-1β及IL-6含量下降,說明血必凈注射液可有效降低PQ中毒大鼠血清內(nèi)炎性因子含量,減輕肺受損程度。

        PQ中毒造成急性肺損傷中一個(gè)重要過程為細(xì)胞凋亡,PQ可將Bcl-2家族內(nèi)細(xì)胞色素C釋放激活從而出現(xiàn)細(xì)胞凋亡,其中Bax是促凋亡蛋白,而Bcl-2是抗凋亡調(diào)節(jié)蛋白,兩者共同構(gòu)成了機(jī)體凋亡調(diào)控系統(tǒng)[10-15]。本文研究顯示,和模型組相比,血必凈中、高劑量組大鼠肺組織內(nèi)Bax蛋白表達(dá)下降,Bcl-2蛋白表達(dá)上升,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,說明血必凈經(jīng)過降低促凋亡蛋白表達(dá),上調(diào)抗凋亡蛋白表達(dá)來對肺組織起到保護(hù)作用。

        p38 MAPK對機(jī)體炎癥反應(yīng)和正常免疫有重要影響,參加中性粒細(xì)胞及巨噬細(xì)胞等功能性反應(yīng),包含顆粒胞外凋亡、黏附、分泌、趨化現(xiàn)象,同時(shí)可對生成的微量干擾素進(jìn)行調(diào)節(jié)以調(diào)控T細(xì)胞分化、凋亡。PQ中毒后肺組織內(nèi)p38 MAPK被激活,參加炎癥反應(yīng)與細(xì)胞應(yīng)激、凋亡等,多種細(xì)胞因子的轉(zhuǎn)錄都受p38 MAPK調(diào)控。NF-κB為調(diào)控炎癥關(guān)鍵環(huán)節(jié),有啟動(dòng)炎癥反應(yīng),表達(dá)黏附分子、介導(dǎo)單核細(xì)胞形成細(xì)胞因子等多種生物效應(yīng)。NF-κB可加速釋放IL-1、細(xì)胞間的黏附分子-1、纖溶酶原激活物抑制物-1等炎癥介質(zhì),激活單核細(xì)胞,從而促進(jìn)TNF-α等釋放來使炎癥反應(yīng)加劇。本文研究顯示,和模型組相比,血必凈中、高劑量組大鼠NF-κB mRNA、p38 MAPK 蛋白表達(dá)下降,IκB mRNA表達(dá)上升,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,說明血必凈注射液經(jīng)過調(diào)控p38 MAPK/NF-κB通路來降低機(jī)體炎癥反應(yīng)程度,從而對受損肺組織起到保護(hù)作用。

        綜上所述,血必凈注射液通過調(diào)控p38 MAPK/NF-κB通路,降低PQ中毒大鼠炎癥反應(yīng)程度,對受損肺組織起到保護(hù)作用。

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