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        永勝縣仔豬病毒性腹瀉感染調(diào)查

        2019-03-07 06:30:14唐俊瑜楊潤煥王曉春曾彩虹夏桂林楊貴樹王麗屏
        貴州農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年2期
        關(guān)鍵詞:永勝縣感染率陽性率

        唐俊瑜, 楊潤煥, 王曉春, 曾彩虹, 夏桂林, 藍(lán) 睿, 楊貴樹, 王麗屏*

        (1.云南農(nóng)業(yè)大學(xué),云南 昆明 650201; 2.云南省永勝縣動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心, 云南 永勝 674200)

        仔豬腹瀉是仔豬生長發(fā)育過程中的一種常見疾病,常由于秋冬和初春季節(jié)氣溫驟變,導(dǎo)致仔豬抵抗力下降,誘發(fā)病原體感染,該病發(fā)病率和死亡率均較高。如2010—2011年中國南方10個(gè)省的豬因腹瀉而死亡的數(shù)量超過100萬頭,給養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失[1]。近年來,隨養(yǎng)豬業(yè)的迅速發(fā)展,仔豬發(fā)病率逐漸升高,哺乳仔豬腹瀉發(fā)病率達(dá)54.83%,死亡率為16.27%[2-3]。引起仔豬病毒性腹瀉的3種常見病原是豬傳染性胃腸炎病毒(transmissible gastroenteritis virus,TGEV)、豬流行性腹瀉病毒(porcine epidemic diarrhea virus,PEDV)和豬輪狀病毒(porcine rotavirus,PRoV)[4]。

        生豬健康養(yǎng)殖對畜牧業(yè)的良性發(fā)展有著極其重要的作用,2018年進(jìn)入秋冬季節(jié),永勝縣多個(gè)生豬養(yǎng)殖場和散養(yǎng)戶多次出現(xiàn)仔豬腹瀉病例,且一直得不到有效控制,嚴(yán)重影響仔豬的生長發(fā)育。因此,非常迫切需要查明引起腹瀉的各種可能因素,從而為其有效防治提供理論依據(jù)。因此,筆者通過PCR和RT-PCR方法檢測有腹瀉癥狀豬的糞便,從病毒性病原的角度對哺乳仔豬腹瀉綜合征的病因進(jìn)行篩查,為了解當(dāng)?shù)刎i場發(fā)生該病的病因和臨床治療提供參考。

        1材料與方法

        1.1材料

        1.1.1哺乳仔豬腹瀉樣品用肛門拭子采自云南省麗江市永勝縣3個(gè)規(guī)?;B(yǎng)殖場和部分散養(yǎng)戶。其中,養(yǎng)殖場A 32份,養(yǎng)殖場B 24份,養(yǎng)殖場C 10份及散養(yǎng)戶22份,一共88份。樣品置于-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.1.2主要試劑RNA提取試劑RNAiso Plus Total RNA(TAKARA);反轉(zhuǎn)錄試劑RI Enzyme Mix、2×ES Reaction Mix(全式金)、2×Trans Taq HiFi PCR Super Mix(全式金)、異丙醇、75%乙醇、氯仿、瓊脂粉、TBE緩沖液、雙蒸水等。

        1.1.3主要儀器高速冷凍離心機(jī)、PCR儀器、電泳儀、凝膠成像系統(tǒng)、恒溫水浴鍋、高壓蒸汽滅菌鍋、超凈工作臺(tái)等。

        表1 擴(kuò)增PEDV、TGEV和PRoV的特異性引物信息

        1.2方法

        1.2.1引物合成用于擴(kuò)增PEDV、TGEV、PRoV的特異性引物由昆明碩擎生物科技有限公司合成,具體信息見表1。

        1.2.2樣品處理將采集的肛門拭子浸于生理鹽水(0.9%)中,用力搖晃,使糞便溶于生理鹽水,4℃浸毒過夜,將液體轉(zhuǎn)移到新的無RNAase離心管,4℃、3 000 r/min離心10 min,去除糞便殘?jiān)?,將上清液吸到新的無RNAase離心管中,4℃、10 000 r/min離心10 min后將上清液吸出,用于提取核酸。

        1.2.3RNA提取在2 mL離心管中加入處理好的糞便樣品上清液300 μL、RNAiso Plus(TRIZOL)800 μL,上下反復(fù)顛倒使RNAiso Plus(TRIZOL)與樣品混勻,4℃靜置10 min,再加入氯仿溶液160 μL,上下反復(fù)顛倒15 s使兩相徹底混勻,使RNA在水飽和酚的酸性條件下存在有機(jī)相中,4℃靜置10 min,12 000 r/min離心15 min;吸上層無色溶液約500 μL于新的1.5 mL無RNAase的離心管中,加入等量異丙醇,4℃靜置10 min,12 000 r/min離心10 min,使RNA沉淀于離心管底部;倒去上清液,向離心管內(nèi)加75%乙醇1 mL清洗,7 500 r/min離心5 min;倒去上清液,輕甩,用吸水紙吸干離心管壁的液體,每管加入DEPC水20 mL溶解RNA,瞬時(shí)離心,取RNA 5 μL加樣到1%瓊脂糖凝膠(含0.2%EB)孔中,150 V 電泳15 min,在凝膠成像系統(tǒng)上觀察提取RNA的完整性,并通過核酸定量儀測定其濃度和純度。

        1.2.4RNA反轉(zhuǎn)錄反轉(zhuǎn)錄體系10 μL:2×ES Reaction Mix(含10×RT Buffer,dNTPs)5 μL,EasyscriptTM RT/RI Emzyme Mix(反轉(zhuǎn)錄酶,含Rnase Inhibitor) 0.5 μL,下游引物 1 μL,模板RNA 3.5 μL。反轉(zhuǎn)錄程序:42℃、30 min;85℃、5 min。

        1.2.5PEDV、TGEV、PRoV的檢測分別以反轉(zhuǎn)錄好的cDNA為模板,用PEDV、TGEV、PRoV的特異性引物進(jìn)行擴(kuò)增。PCR反應(yīng)體系25 μL:2×TransHiFiII 12.5 μL,ddH2O 10.5 μL,上游引物 0.5 μL,下游引物 0.5 μL,cDNA 1.0 μL。PEDV、TGEV擴(kuò)增程序:94℃、5 min;94℃、30 s,53℃、30 s,72℃、30 s,循環(huán)35次;72℃、5 min;4℃保存。PRoV擴(kuò)增程序:94℃、5 min;94℃、30 s,58℃、30 s,72℃、30 s,循環(huán)34次;72℃、5 min;4℃保存。取PCR擴(kuò)增產(chǎn)物10 μL配制成體系后加樣到1.5%瓊脂糖凝膠(含0.2%EB)孔中,120 V電泳30 min,在凝膠成像系統(tǒng)上觀察結(jié)果,并拍照。

        2結(jié)果與分析

        2.1PCR檢測

        利用特異性引物及對應(yīng)的PCR檢測方法檢測88份糞便樣品,并通過瓊脂糖凝膠電泳對PCR產(chǎn)物進(jìn)行鑒定。從圖1看出,PEDV的擴(kuò)增片段為199 bp,與預(yù)期目的片段大小相符,表明部分糞便樣品中PEDV檢測呈陽性。TGEV的擴(kuò)增片段為439 bp,與預(yù)期目的片段大小相符,表明部分糞便樣品中TGEV檢測呈陽性。PRoV的擴(kuò)增片段為362 bp,與預(yù)期目的片段大小相符,表明部分糞便樣品中PRoV檢測呈陽性。

        圖1PEDV、TGEV 和ProV的RT-PCR擴(kuò)增圖譜

        2.2病原陽性率

        從表2看出,在檢測的88份樣品中有8份為PEDV陽性,陽性率為9.09%;4份樣品為TGEV陽性,陽性率為4.54%;24份樣品為PRoV陽性,陽性率為27.27%。其中,養(yǎng)殖場A的PEDV陽性3份,陽性率為9.38%;TGEV陽性2份,陽性率為6.25%;PRoV陽性6份,陽性率為18.75%。養(yǎng)殖場B無PEDV陽性;TGEV陽性1份,陽性率為4.17%;PRoV陽性10份,陽性率為41.67%。養(yǎng)殖場C的PEDV陽性1份,陽性率為10.00%;TGEV陽性2份,陽性率為20.00%;PRoV陽性1份,陽性率為10.00%。散養(yǎng)戶無PEDV陽性;TGEV陽性3份,陽性率為13.63%;PRoV陽性7份,陽性率為31.82%。

        表2PEDV、TGEV和ProV 3種病原陽性率檢出結(jié)果

        2.3混合感染情況

        從表3看出,在88份糞便樣品中檢測出36份樣品呈陽性,其中,有3份樣品同時(shí)檢測出TGEV和PRoV病毒,混合感染率為8.33%;有1份樣品同時(shí)檢測出PEDV與PRoV病毒,混合感染率為2.78%;36份樣品中未發(fā)現(xiàn)3種病毒同時(shí)混合感染。養(yǎng)殖場A存在1份TGEV與PRoV混合感染,混合感染率為9.09%;1份PEDV與PRoV混合感染,混合感染率為9.09%,2份混合感染率為18.18%。養(yǎng)殖場B有1份TGEV與PRoV混合感染,混合感染率為9.09%。養(yǎng)殖場C無混合感染。散養(yǎng)戶有1份TGEV與PRoV混合感染,混合感染率為10.00%。

        表3陽性病例中的混合感染病例

        3結(jié)論與討論

        2010年以來,豬腹瀉疾病給全球養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失,根據(jù)流行病學(xué)調(diào)查發(fā)現(xiàn),PEDV是引起腹瀉的主要致病病原之一[5]。2011年,陳建飛等[6]對我國11個(gè)省市28個(gè)規(guī)?;i場的139份病料進(jìn)行檢測發(fā)現(xiàn),TGEV檢出率達(dá)38.1%,PEDV陽性率為54.7%,二者混合感染率為25.9%。2012年,劉孝珍等[7]對全國12個(gè)省(直轄市)共55個(gè)發(fā)生嚴(yán)重腹瀉的豬場病料檢測發(fā)現(xiàn),PEDV陽性率達(dá)33.33%,同時(shí)與TGEV、PRoV的混合感染率為27.85%,有69.09%的豬場存在PEDV感染。薛瑞雪等[8]于2013年10月至2014年10月對山東省226份豬腹瀉樣品進(jìn)行檢測發(fā)現(xiàn),PEDV陽性率為34.69%,TGEV為2.21%,PRoV為28.51%。曹恭貌等[9]于2014年9月至2015年3月對四川省130份豬腹瀉樣品進(jìn)行檢測發(fā)現(xiàn),PEDV陽性率為41.54%,TGEV為11.54%,PRoV為7.69%。龍飛翔等[10]采用多重RT-PCR對2015—2016年廣西190份豬腹瀉樣品進(jìn)行檢測發(fā)現(xiàn),PEDV陽性率為22.11%,TGEV為30.53%,PRoV為17.89%。永勝縣豬腹瀉病原PEDV陽性率為4.54%,TGEV陽性率為9.09%,PRoV陽性率為27.27%。表明,PEDV、TGEV與PRoV是引起我國豬腹瀉的3種主要病原,且出現(xiàn)混合感染的情況。

        仔豬感染PRoV是影響仔豬成活率的主要因素之一,其單獨(dú)發(fā)生或與其他病原混合感染均可致病。近年來,導(dǎo)致仔豬病毒性腹瀉的流行性病毒陽性率在26.5%~75.6%[11]。在永勝縣36份陽性樣品中存在TGEV與PRoV、PEDV與PRoV的混合感染,其中,有3份樣品存在TGEV與PRoV病毒,混合感染率為8.33%;1份樣品存在PEDV與PRoV病毒,混合感染率為2.78%;未發(fā)現(xiàn)PEDV、TGEV與PRoV病毒同時(shí)感染的情況。病毒混合感染加劇了豬群的危害,增加其他病原的感染機(jī)會(huì),嚴(yán)重影響豬群的正常發(fā)育,同時(shí)增加了防控難度。檢測結(jié)果表明,永勝縣腹瀉仔豬存在多種病毒性疾病的情況,可能還有細(xì)菌性疾病的存在,盡管病毒檢測陽性率相對較低,在當(dāng)前豬病防控的嚴(yán)峻形勢下,有必要加強(qiáng)對豬群的疫病檢測和疫苗免疫。

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