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        胰島結(jié)合bFGF生物膠經(jīng)腎被膜下移植逆轉(zhuǎn)小鼠糖尿病

        2019-02-14 03:02:40朱群燕蔣煊鄭雅文黃志偉徐福遠(yuǎn)耿武軍傅紅興趙應(yīng)征
        肝膽胰外科雜志 2019年1期
        關(guān)鍵詞:氟烷微血管胰島

        朱群燕,蔣煊,鄭雅文,黃志偉,徐福遠(yuǎn),耿武軍,傅紅興,趙應(yīng)征

        (1.溫州醫(yī)科大學(xué) 藥學(xué)院,浙江 溫州 325035;2.溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院 麻醉科,浙江 溫州325035)

        胰島移植是目前臨床糖尿病治療領(lǐng)域中一種具有較大潛力的治療手段,盡管埃德蒙頓方案公布后,胰島移植取得了可觀的進(jìn)展,但胰島需要量大、移植后微血管重建慢、胰島功能低下等問(wèn)題仍然阻礙著胰島移植的大規(guī)模應(yīng)用[1-4]。堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(basic fi broblast growth factor,bFGF)具有刺激血管新生、創(chuàng)傷愈合和組織再生等功能[5]。本實(shí)驗(yàn)室前期已證明bFGF能夠促進(jìn)胰島內(nèi)部微血管重建,提高胰島體內(nèi)活性和功能[6],但bFGF在體內(nèi)半衰期短,單純bFGF培養(yǎng)液與胰島共移植的效果不理想。

        重組人膠原蛋白(recombinant human collagen,RHC)是利用基因工程改性所得的一種III型膠原,該膠原能增強(qiáng)血管強(qiáng)度,為細(xì)胞提供養(yǎng)分,從而促進(jìn)新血管的形成[7-8]。為提高胰島移植后療效、減少胰島用量,本研究基于實(shí)驗(yàn)室前期基礎(chǔ),選用bFGF結(jié)合不同濃度RHC與胰島共移植至同系糖尿病小鼠腎被膜下,并對(duì)術(shù)后胰島功能和組織學(xué)進(jìn)行評(píng)價(jià),為進(jìn)一步研究降低胰島移植用量和提高移植效果奠定基礎(chǔ)。

        1 材料和方法

        1.1 材料

        1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物:雄性Balb/C小鼠40只,6~8周齡,購(gòu)自上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司。

        1.1.2 實(shí)驗(yàn)試劑和器材:異氟烷(Baxter公司,美國(guó));鏈脲佐菌素(STZ)、膠原酶V(sigma,USA);Ficoll-1077、Ficoll-1119、CMRL-1066、Hanks液(溫州市怡康細(xì)胞移植技術(shù)開發(fā)有限公司);胎牛血清(Gibco,Thermo Fisher Scientific);重組人膠原蛋白(江蘇江山聚源生物技術(shù)有限公司);堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(浙江格魯特生物科技有限公司);血糖儀(博士醫(yī)生,北京);恒溫水槽(DKZ-450B,上海森信實(shí)驗(yàn)儀器有限公司);離心機(jī)(L500,上海利鑫堅(jiān)離心機(jī)有限公司);體式顯微鏡(SDT-TL2,上海光泉科儀器有限公司)。

        1.2 方法

        1.2.1 糖尿病模型的建立:Balb/C小鼠造模前禁食12 h,不禁水,測(cè)定空腹血糖值和體重,腹腔注射STZ(55 mg/kg)。造模后第1、3、7天測(cè)定血糖值,血糖值≥22.2 mmol/L 視為糖尿病造模成功,可用于移植實(shí)驗(yàn)。

        1.2.2 小鼠胰島的分離:參考前期的實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)[6,9-10],簡(jiǎn)述如下:取Balb/C小鼠吸入過(guò)量異氟烷致死后,膽總管逆行灌注膠原酶V溶液2.5 mL(濃度為1 mg/mL),摘取胰腺至50 mL離心管中,(37±0.5)℃恒溫水消化至乳糜狀,冷Hanks液終止消化,并用Ficoll-1077和Ficoll-1119進(jìn)行非連續(xù)密度梯度純化,在體視顯微鏡下進(jìn)一步手工挑選。胰島用CMRL-1066培養(yǎng)基(含10% FBS和1%青霉素-鏈霉素)于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 h后進(jìn)行移植。

        1.2.3 胰島鑒定、活性測(cè)定和當(dāng)量計(jì)算:采用常規(guī)的DTZ染色方法鑒定胰島,并用FD/PI染色液染色測(cè)定胰島活性[6]。參照Lembert等[11]方法,在倒置顯微鏡下記錄每個(gè)胰島的直徑,按照胰島當(dāng)量表?yè)Q算成相應(yīng)直徑150 μm的胰島當(dāng)量。

        1.2.4 實(shí)驗(yàn)分組及體外培養(yǎng):將造模成功的小鼠隨機(jī)分成三組,分別為:(1)Free組(單純胰島移植組);(2)1 mg/mL RHC+60 ng/mL bFGF組(胰島移植液中含1 mg/mL RHC和60 ng/mL bFGF);(3)16 mg/mL RHC+60 ng/mL bFGF組(胰島移植液中含16 mg/mL RHC和60 ng/mL bFGF)。胰島基礎(chǔ)移植液與培養(yǎng)液一致,每只小鼠移植胰島當(dāng)量為(200±50)IEQ。以正常Balb/C組(NOR組)、糖尿病小鼠未移植胰島組(DM組)為對(duì)照組。

        1.2.5 小鼠腎被膜下移植:參照Z(yǔ)umda等[12]的研究。糖尿病小鼠持續(xù)吸入異氟烷麻醉后,剃去右側(cè)背部毛發(fā)并消毒,暴露腎臟。在體式顯微鏡下用注射器將含(200±50)IEQ胰島的混懸液推注至腎被膜下,棉簽壓迫止血,縫合傷口。皮下注射1 mL生理鹽水補(bǔ)液。每日早晚給予頭孢唑林鈉皮下注射50 μL(濃度50 mg/mL),持續(xù)1周。

        1.2.6 移植后胰島功能和療效評(píng)價(jià)

        (1)血糖和體重監(jiān)測(cè):每日觀察小鼠飲食、飲水和精神狀況,測(cè)量和記錄小鼠血糖和體重變化。連續(xù)兩次血糖超過(guò)16.7 mmol/L預(yù)示著小鼠重回高血糖狀態(tài)[13]。

        (2)口服糖耐量試驗(yàn)(OGTT):移植后第30天,將移植組、正常組(NOR組)和糖尿病未移植組(DM組)小鼠禁食過(guò)夜,不禁水。用超純水配制濃度為200 mg/mL的葡萄糖溶液,灌胃劑量為2 mg/g,測(cè)定各組小鼠灌胃前(0 min)和灌胃后20、40、60、90、120 min的血糖值。

        (3)移植部位胰島的組織學(xué)評(píng)價(jià):移植后第30天,取各移植組小鼠,持續(xù)異氟烷吸入麻醉,經(jīng)心臟灌注生理鹽水后,取移植部位腎臟組織并固定于4%多聚甲醛中,進(jìn)行HE、Insulin免疫組化染色和CD31免疫組化染色,觀察移植部位胰島的形態(tài)和新血管生成結(jié)果。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

        數(shù)據(jù)采用Graft pad 5統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行處理,所有數(shù)據(jù)用(±s)表示,并采用成對(duì)樣品t檢驗(yàn)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。P<0.05表示具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        2.1 小鼠胰島的分離和培養(yǎng)結(jié)果

        經(jīng)純化和手工挑選后的小鼠胰島純度為(96.4±2.6)%。培養(yǎng)6 h后,胰島外形完整、邊緣清晰,經(jīng)FD/PI染色顯示,平均活性(90.1±3.5)%。

        2.2 移植術(shù)后小鼠血糖和體重變化

        16 mg/mL RHC+60 ng/mL bFGF組的小鼠胰島移植后血糖下降最快,與1 mg/mL RHC+60 ng/mL bFGF組均能維持正常血糖超過(guò)30 d;Free組胰島移植后血糖未能降至正常水平(見圖1A)。胰島移植治療結(jié)束后,F(xiàn)ree組體重明顯降低[降低(-2.10±2.60)g],1 mg/mL RHC+60 ng/mL bFGF組[增加(3.36±0.78)g,P<0.05]和16 mg/mL RHC+60 ng/mL bFGF組[增加(3.04±1.01)g,P<0.05]小鼠體重則增加明顯(見圖1B)。

        圖1 胰島移植后各組小鼠血糖(A)和體重(B)的變化結(jié)果

        2.3 口服糖耐量試驗(yàn)(OGTT)

        如圖2所示,16 mg/mL RHC+60 ng/mL bFGF組小鼠的糖耐量曲線和NOR組相似,且120 min時(shí)血糖均恢復(fù)到基線水平;Free組和1 mg/mL RHC+60 ng/mL bFGF組小鼠在120 min時(shí)血糖均未能恢復(fù)到基線水平。

        圖2 小鼠胰島移植后第30天糖耐量結(jié)果

        2.4 移植后腎被膜下胰島的組織學(xué)評(píng)價(jià)

        取胰島移植30 d后的小鼠腎組織進(jìn)行HE、insulin素和CD31免疫組化染色,結(jié)果如圖3所示。

        由移植部位含胰島組織的HE和insulin免疫熒光染色結(jié)果可見,各移植組腎被膜下的胰島組織形態(tài)完整,且能分泌胰島素(圖3A)。由移植部位胰島組織的CD31染色結(jié)果顯示,1 mg/mL RHC+60 ng/mL bFGF組和16 mg/mL RHC+60 ng/mL bFGF組CD31蛋白表達(dá)較多,說(shuō)明新血管生成較多,而Free組CD31陽(yáng)性表達(dá)較少,說(shuō)明新生血管較少(圖3B)。

        3 討論

        目前,可供胰島移植用胰腺供體不足和胰島分離純化過(guò)程中造成的胰島內(nèi)部微血管系統(tǒng)的破壞均制約著臨床胰島移植在糖尿病治療中的應(yīng)用[6,14]。為了解決這些問(wèn)題,國(guó)內(nèi)外研究者進(jìn)行了大量的探索,如構(gòu)建三維多孔支架為胰島提供生存的空間[14]、添加生長(zhǎng)因子類藥物促進(jìn)受損微血管重建[6]、應(yīng)用產(chǎn)氧微粒減少胰島中心壞死[15]等。本課題小組初步研究表明,全量胰島移植(400 IEQ)能有效控制糖尿病小鼠的血糖水平。本研究采用胰島聯(lián)合RHC和bFGF共移植,血糖監(jiān)測(cè)結(jié)果顯示(200±50) IEQ的胰島亦能顯著降低血糖至正常水平,且與單純同當(dāng)量胰島移植的小鼠降低水平的能力有明顯差異(P<0.01)。本研究亦發(fā)現(xiàn),RHC-bFGF和胰島共移植組的新生血管數(shù)量明顯增加。

        圖3 移植部位腎臟組織HE染色、Insulin免疫熒光染色和CD31免疫組化染色

        本研究通過(guò)聯(lián)合應(yīng)用RHC和bFGF,為胰島提供一個(gè)富含bFGF的類細(xì)胞外基質(zhì)的微環(huán)境,能夠促進(jìn)移植后胰島的微血管重建和提高胰島功能、降低維持正常血糖所需的胰島移植量,有助于緩解胰島移植中供體不足的難題。

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