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        骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞旁分泌HGF體外調(diào)控肝星狀細(xì)胞

        2019-02-14 01:15:16李靜鄭雪丁新向輝陳衛(wèi)剛
        天津醫(yī)藥 2019年1期
        關(guān)鍵詞:星狀共培養(yǎng)充質(zhì)

        李靜,鄭雪,丁新,向輝,陳衛(wèi)剛

        肝臟疾病是我國常見病、多發(fā)病,肝硬化和肝癌是肝臟疾病重要的致死原因。肝纖維化是肝硬化和肝癌的中間環(huán)節(jié),而抑制肝星狀細(xì)胞的激活和增殖是緩解肝纖維化的策略之一。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)是骨髓中的非造血組織,因具有自我更新、多向分化、免疫抑制等功能而成為臨床研究熱點(diǎn)[1]?,F(xiàn)越來越多的動物實(shí)驗(yàn)及臨床試驗(yàn)表明BMSCs可治療骨或軟骨損傷、心臟疾病、中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷、脊髓損傷[2]。近年來,BMSCs在肝纖維化方面的治療也取得了一定的進(jìn)展[3],但其具體機(jī)制還不明確。本實(shí)驗(yàn)將骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞與肝星狀細(xì)胞(HSCs)建立間接共培養(yǎng)體系,初步探討骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞緩解肝纖維化的機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 材料 清潔級SD雄性大鼠,體質(zhì)量120~180 g,購自新疆維吾爾自治區(qū)疾病預(yù)防控制中心;大鼠肝星狀細(xì)胞(上海富衡生物科技有限公司);胎牛血清(美國BI公司)、L-DMEM培養(yǎng)基(美國Gibco公司),0.25%胰蛋白酶(美國Hyclone公司),CD29-FITC抗體、CD45-FITC抗體、CD90-PE抗體(eBioscience公司);MTT(Solarbio公司);肝細(xì)胞生長因子ELISA試劑盒(中國Elabscience公司);c-met抗體(MCE公司);兔抗α-肌動蛋白(α-SMA)單克隆抗體(ab32575,Abcam公司);熒光二抗(山羊抗兔IgG-FITC,北京中杉金橋生物科技有限公司);PI(美國Sigma公司);Transwell insert半透膜(0.4μm,美國Corning Costar公司);Annexin V-PE細(xì)胞凋亡試劑盒(中國聯(lián)科生物公司);流式細(xì)胞儀(美國BD公司);酶標(biāo)儀(美國BIO-RAD公司);激光共聚焦顯微鏡(德國ZEISS公司)。

        1.2 方法

        1.2.1 細(xì)胞的提取、培養(yǎng)和鑒定 利用全骨髓貼壁培養(yǎng)法提取大鼠雙下肢骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,收集第2代對數(shù)生長期細(xì)胞,流式鑒定表面分子CD29、CD90、CD45;復(fù)蘇新購的HSCs,取第3代生長活躍的細(xì)胞,倒置相差顯微鏡下觀察活體細(xì)胞形態(tài)學(xué)改變,采用熒光免疫法檢測α-SMA的表達(dá)。

        1.2.2 細(xì)胞共培養(yǎng)體系的建立及實(shí)驗(yàn)分組 6孔板半透膜(直徑0.4μm)上層每孔接種1×105個細(xì)胞,下層接種5×104個細(xì)胞/孔。實(shí)驗(yàn)分組:(1)H組,HSCs單獨(dú)培養(yǎng)(半透膜上層只有培養(yǎng)基)。(2)H-H組,HSCs和HSCs共培養(yǎng)。(3)M-H組,BMSCs與HSCs共培養(yǎng)。(4)M-H-C組,c-met抑制劑2 mmol/L預(yù)先封閉HSCs表面肝細(xì)胞生長因子(HGF)受體,4 h后BMSCs與HSCs共培養(yǎng);48 h后倒置相差顯微鏡下動態(tài)觀察活體細(xì)胞形態(tài)學(xué)改變。

        1.2.3 MTT法檢測HSCs增殖抑制率 各組細(xì)胞共培養(yǎng)48 h后,抽取上清液保留備用,0.25%胰酶消化貼壁細(xì)胞,用各組共培養(yǎng)上清液分別重懸各組細(xì)胞,以3 000個細(xì)胞/孔均勻接種在96孔板上,孵育4 h,向各孔加10μL MTT液,4 h后棄上清,各孔加100μL二甲基亞砜(DMSO),在酶標(biāo)儀上測定各孔在450 nm處的光密度(OD)值;細(xì)胞生長抑制率=(H組平均OD值-各處理組平均OD值)/H組平均OD值×100%。

        1.2.4 共聚焦顯微鏡檢測HSCs中α-SMA的表達(dá) 各組細(xì)胞共培養(yǎng)48 h后,棄上清,4%多聚甲醛固定細(xì)胞15 min,0.2%Triton-X-100透膜3 min,5%BSA封閉,孵α-SMA抗體,4℃過夜,次日暗室加熒光二抗,37℃孵育1~2 h,PI染核1 min,PBS洗4次,抗熒光淬滅劑封片,即刻采用激光共聚焦顯微鏡觀察。

        1.2.5 流式細(xì)胞儀檢測HSCs凋亡率 各組細(xì)胞共培養(yǎng)48 h后,用不含EDTA的胰酶消化細(xì)胞,收集各組HSCs并計數(shù),按照Annexin V-PE/7-ADD細(xì)胞凋亡試劑盒說明書操作,流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡率。

        1.2.6 ELISA檢測共培養(yǎng)上清液HGF濃度 各孔中加入不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)品或上下兩層共培養(yǎng)上清液,按照肝細(xì)胞生長因子ELISA試劑盒說明書嚴(yán)格操作,用酶標(biāo)儀在450 nm波長處測量各孔OD值。以濃度為橫坐標(biāo),OD值為縱坐標(biāo),在雙對數(shù)坐標(biāo)紙上繪制四參數(shù)邏輯函數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算各組細(xì)胞上清液中HGF濃度。

        1.3 統(tǒng)計學(xué)方法 應(yīng)用SPSS 22.0軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計分析,所有計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),組間多重比較采用LSD-t法,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 細(xì)胞形態(tài)特征及鑒定情況 原代BMSCs以集落為中心呈放射狀向周圍生長,培養(yǎng)至5~7 d時,細(xì)胞呈現(xiàn)明顯的旋渦狀。BMSCs流式鑒定結(jié)果顯示,99.3%的細(xì)胞表達(dá)CD29,98.9%的細(xì)胞表達(dá)CD90,0.8%的細(xì)胞表達(dá)CD45,表明提取的原代細(xì)胞為純化的BMSCs。HSCs在倒置顯微鏡下呈星形或多邊形伸展?fàn)顟B(tài),共聚焦結(jié)果顯示活化后的HSCs胞膜及胞漿表達(dá)α-SMA,符合實(shí)驗(yàn)要求,見圖1。

        2.2 BMSCs抑制肝星狀細(xì)胞的增殖 各組細(xì)胞共培養(yǎng)48 h后顯示,BMSCs對HSCs的增殖抑制率最大,HSCs對HSCs的增殖抑制率次之,M-H-C組幾乎無抑制,M-H組與H-H組、M-H-C組相比均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),見表1。

        Tab.1 Effects of BMSCs on HSCs after 48-hour co-culture表1 共培養(yǎng)48 h后BMSCs對HSCs的影響 (±s)

        Tab.1 Effects of BMSCs on HSCs after 48-hour co-culture表1 共培養(yǎng)48 h后BMSCs對HSCs的影響 (±s)

        *P<0.05,**P<0.01;a與H組比較,b與H-H組比較,c與M-H組比較,P<0.05

        組別H組H-H組M-H組M-H-C組F增殖抑制率(%,n=3)-13.46±5.75 25.41±0.89b 0.62±0.82bc 40.085**α-SMA熒光強(qiáng)度(n=5)117.50±6.25 108.98±7.22 11.83±1.72ab 124.29±6.75c 401.170**凋亡率(%,n=3)6.30±3.72 6.30±0.70 14.07±3.85ab 6.57±0.71c 5.963*HGF濃度(ng/L,n=3)14.22±0.78 16.59±3.61 42.88±4.53ab 15.58±0.80c 65.006**

        2.3 BMSCs抑制HSCs的活性 與M-H組比較,其余3組HSCs胞膜和胞漿α-SMA表達(dá)量均增高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.005),而其余3組間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義,見表1、圖1。

        Fig.1 α-SMA expression of hepatic stellate cells in each group(×200)圖1 各組肝星狀細(xì)胞α-SMA表達(dá)量(×200)

        2.4 BMSCs促進(jìn)肝星狀細(xì)胞的凋亡 流式結(jié)果顯示,H組、H-H組、M-H-C組HSCs凋亡率較低,且3組差異無統(tǒng)計學(xué)意義,M-H組HSCs凋亡率明顯高于H組、H-H組、M-H-C組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見圖2、表1。

        2.5 共培養(yǎng)上清液中HGF的濃度 ELISA結(jié)果顯示,繪制的標(biāo)準(zhǔn)曲線與標(biāo)準(zhǔn)相符(R2=0.99),共培養(yǎng)48 h后,M-H組上清液HGF濃度明顯高于H組、HH組、M-H-C組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見表1。

        Fig.2 The image of apoptosis in hepatic stellate cells圖2 肝星狀細(xì)胞凋亡圖

        3 討論

        目前肝硬化患者尚缺乏有效的治療方法,干細(xì)胞因具有免疫原性低、易體外擴(kuò)增、多向分化潛能,給肝硬化患者帶來了新的希望。越來越多的研究表明干細(xì)胞移植治療可以逆轉(zhuǎn)肝纖維化和肝硬化,但具體機(jī)制尚不明確[4-5]。體內(nèi)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),BMSCs經(jīng)尾靜脈注射入四氯化碳(CCl4)誘導(dǎo)的肝纖維化大鼠體內(nèi),肝纖維化程度降低,HSCs的數(shù)量較對照組明顯減少,凋亡率明顯增高,這為BMSCs治療肝纖維化的機(jī)制提供了新的思路[6]。HSCs經(jīng)體外傳代可被激活,活化HSCs細(xì)胞外基質(zhì)的合成和降解失衡,導(dǎo)致細(xì)胞外基質(zhì)增多,從而形成纖維化。

        以往研究發(fā)現(xiàn),間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)通過定向遷移到肝纖維化組織[7],分化為肝樣細(xì)胞[8],并通過抗肝細(xì)胞凋亡改善肝功能[9-10],α-SMA是HSCs活化的標(biāo)志,MSCs可以抑制成纖維細(xì)胞的增殖和α-SMA的表達(dá),并促進(jìn)基質(zhì)金屬蛋白酶的分泌[11]。Parekkadan等[12]在 BMSCs與HSCs共培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn),BMSCs來源的白細(xì)胞介素(IL)-10和腫瘤壞死因子(TNF)-α可抑制HSCs的增殖和膠原合成。本研究發(fā)現(xiàn)BMSCs與HSCs共培養(yǎng)48 h,BMSCs會明顯抑制活化態(tài)HSCs的增殖并促進(jìn)其凋亡,且作用和上清液中HGF的濃度有關(guān),在HGF濃度最高的M-H組中,HSCs的增殖率最低,而凋亡率最高;當(dāng)封閉HGF受體(c-met)后,增殖率升高同時凋亡率下降,說明BMSCs可能通過分泌的HGF抑制HSCs的增殖并促進(jìn)其凋亡。韋柳萍等[13]檢測了BMSCs與HSCs共培養(yǎng)24、48、72 h后HSCs的凋亡率,發(fā)現(xiàn)隨著培養(yǎng)時間的延長,HSCs的凋亡率逐漸增加,且在72 h時達(dá)到最高。然而,本研究在前期預(yù)實(shí)驗(yàn)過程中發(fā)現(xiàn),H組在培養(yǎng)72 h后,HSCs的凋亡率也明顯增高,說明此時HSCs的高凋亡率并不是由BMSCs引起的,可能是培養(yǎng)體系中未更換新的培養(yǎng)基而無法滿足HSCs的生長要求,亦或是HSCs分泌的因子引起的。Wang等[14]將BMSCs與LX2在transwell小室共培養(yǎng)后發(fā)現(xiàn),LX2中α-SMA的表達(dá)量明顯降低,當(dāng)敲低c-met后,BMSCs不能改變活化LX2中α-SMA的表達(dá)量。本研究結(jié)果同樣也顯示,在BMSCs與HSCs共培養(yǎng)48 h后,BMSCs使活化態(tài)的HSCs活性降低,當(dāng)封閉HGF/c-met信號通路后,效應(yīng)消失,說明BMSCs可通過分泌的HGF抑制HSCs的活化。

        MSCs可以旁分泌多種細(xì)胞因子,如HGF、IL-10、胰島素樣生長因子-1、神經(jīng)生長因子、血管內(nèi)皮生長因子、腫瘤壞死因子等。HGF是一種多效生長因子,在細(xì)胞的分裂、存活、遷移、形態(tài)發(fā)生等方面發(fā)揮著重要的作用。本研究在M-H組上清液中檢測到高濃度的HGF,說明BMSCs可分泌HGF。而HSCs活化后可表達(dá) HGF 受體 c-met[15],c-met受體屬于酪氨酸激酶家族,HSCs通過分泌TNF-α、IL-6等因子刺激MSCs分泌HGF、IL-10等,HGF與HSCs表面的c-met受體結(jié)合后激活c-met位點(diǎn),通過HGF/c-met信號通路對HSCs產(chǎn)生影響。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),在HGF濃度最高的M-H組中,HSCs的凋亡率最高,HSCs的增殖和活化最低,當(dāng)封閉HGF/c-met信號通路后,效應(yīng)消失,表明BMSCs對HSCs的影響可能是BMSCs分泌HGF通過HGF/c-met信號通路起作用的。然而,HGF/c-met下游有Akt/PKB、PI3K、JNK、ERK/MAPK、PIP3等通路,具體是哪條通路起主要作用還有待進(jìn)一步研究。

        此外,MSCs還可通過免疫調(diào)節(jié)和炎癥抑制的作用,抑制T、B淋巴細(xì)胞的增殖,促進(jìn)抑制性細(xì)胞因子分泌,減少炎癥性細(xì)胞因子產(chǎn)生,從而減輕肝臟炎癥反應(yīng)和肝細(xì)胞的破壞[16-17]。隨著外泌體的提出,越來越多的學(xué)者認(rèn)為MSCs改善肝纖維化與外泌體有關(guān)[18-19]。Schorey等[20]認(rèn)為外泌體為 MSCs與 HSCs間傳遞通訊的載體。Li等[21]認(rèn)為來源于人臍帶MSCs的外泌體通過抑制肝細(xì)胞的上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化、顯著恢復(fù)血清天冬氨酸轉(zhuǎn)氨酶活性,并通過降低Ⅰ/Ⅲ型膠原、轉(zhuǎn)化生長因子-β1(TGF-β1)以及Smad2的磷酸化,使TGF-β1/Smad信號通路失活,從而改善肝纖維化。

        綜上所述,BMSCs可使HSCs的增殖、活化受到抑制,凋亡增加,其機(jī)制可能是BMSCs旁分泌HGF通過HGF/c-met信號通路起作用的,這也可能是BMSCs移植治療肝纖維化的機(jī)制之一。

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