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        棉花施用脫葉劑對相鄰未著藥葉片生理活性的影響

        2019-01-31 06:11:22王曉婧李思嘉劉瑞顯張國偉楊長琴倪萬潮
        棉花學(xué)報 2019年1期
        關(guān)鍵詞:脫葉劑脫葉光化學(xué)

        王曉婧,李思嘉,劉瑞顯,2*,張國偉,楊長琴,2,倪萬潮,2

        (1.江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院經(jīng)濟作物研究所/農(nóng)業(yè)農(nóng)村部長江下游棉花與油菜重點實驗室,南京210014;2.江蘇省現(xiàn)代作物生產(chǎn)協(xié)同創(chuàng)新中心,南京210014)

        棉花是我國最重要的經(jīng)濟作物。近年來隨著各大棉區(qū)植棉勞動力結(jié)構(gòu)的改變和勞動力成本的大幅上升,傳統(tǒng)植棉的比較效益持續(xù)降低,植棉面積大幅減少[1]。因此,急需大力發(fā)展棉花生產(chǎn)機械化,解決生產(chǎn)過程中勞動力短缺的問題[2]。推廣機采棉已經(jīng)成為我國棉花產(chǎn)業(yè)健康發(fā)展的必然選擇[1]。

        化學(xué)脫葉是棉花實現(xiàn)機械采收的核心技術(shù),主要運用植物生長調(diào)節(jié)劑(主要是噻苯隆Thidiazuron,TDZ),干預(yù)棉花生理生化過程,加速植株衰老,實現(xiàn)脫葉[3]?;瘜W(xué)脫葉效果好壞成為棉花機采能否順利實施的關(guān)鍵。脫葉效果不理想、含雜率高往往造成棉花采收效率降低、清花成本增加和纖維品質(zhì)下降[4]。因此,近年來眾多研究者在棉花脫葉劑的劑型選擇、劑量配方以及噴施時期、噴施方法方面進行了深入的研究[5-7],篩選出了適應(yīng)不同棉區(qū)的脫葉劑及其使用方法。但是目前我國棉花脫葉催熟技術(shù)并不完善,突出問題之一是棉花脫葉不徹底導(dǎo)致機采棉含雜率較高。這主要是由于新疆棉花采用“矮、密、早”的栽培模式,在黃河與長江流域棉區(qū)為實現(xiàn)機采棉的集中成鈴?fù)滦?,亦大幅提高種植密度[8],棉田密度的提高常常導(dǎo)致噴霧機只能將脫葉劑噴施在中上部葉片上,而下部葉片因不能有效著藥而不脫落,導(dǎo)致整體脫葉效果差[9]。

        因此,隨著我國棉花收獲機械化進程的推進,迫切需要明確脫葉劑影響棉花葉片脫落發(fā)生的規(guī)律及生理機制[10]。前人認為對棉花進行化學(xué)脫葉,也是對其生長的脅迫[11]。高麗麗等[12]研究表明,噴施脫葉劑后棉花葉片發(fā)生光抑制,光系統(tǒng)II(Photosystem II,PSII)復(fù)合體受到損傷并伴隨光合電子傳遞受阻,光合功能受損,而丙二醛(Malondialdehyde,MDA)含量升高、內(nèi)源生長素(Auxin,IAA)含量下降,葉片膜系統(tǒng)受破壞嚴(yán)重[11]。但是,有關(guān)棉花噴施脫葉劑后,未著藥葉片的生理功能如何變化,目前未見報道。而明確棉花噴施脫葉劑后未著藥葉片的生理變化,將對完善機采棉脫葉催熟技術(shù)有重要的指導(dǎo)意義。

        本文深入研究棉花噴施脫葉劑噻苯隆后,其相鄰未著藥葉片的光能吸收、傳遞、轉(zhuǎn)換特性、內(nèi)源保護酶活性及內(nèi)源激素含量等生理指標(biāo)的變化,旨在為提高脫葉效果,完善脫葉催熟技術(shù),促進機采棉的迅速推廣提供依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗材料與設(shè)計

        于2017年3-8月在江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院人工氣候室進行盆栽試驗。以中棉所50(CCRI 50)為材料,挑選飽滿均勻的種子,經(jīng)3.0%(體積分數(shù))的雙氧水消毒10 min后用去離子水沖洗5次;之后放置于25℃的恒溫箱中催芽24 h,再播種于裝有基質(zhì)的盆缽(直徑10 cm,高15 cm)中,每盆播種2粒,于人工氣候室內(nèi)培養(yǎng)。待棉花子葉平展后,每盆留生長一致的壯苗1株,待棉苗長至7片真葉時進行以下2種處理:一是噴清水(對照,CK);二是噴脫葉劑,將第4、5主莖葉表面用毛筆均勻涂抹0.1%的TDZ,使整張葉片正面均勻著藥但無藥滴滴下。每個處理種植50盆,共計100盆。人工氣候室光源為生物鈉燈,光照度(450±30)μmol·m-2·s-1,光照時間12 h,晝/夜溫度(30±2)℃/(25±2)℃。分別在處理當(dāng)天及處理后1 d、3 d、6 d、10 d測定第3主莖葉(未涂抹TDZ)的光合特性與葉綠素?zé)晒鈪?shù),之后將葉片用液氮速凍后取回進行內(nèi)源保護酶活性與內(nèi)源激素含量的測定。

        1.2 測定內(nèi)容與方法

        1.2.1脫葉率調(diào)查方法。分別在TDZ施用后1 d、3 d、6 d、10 d調(diào)查著藥葉片(第4、5主莖葉)與未著藥葉片(第3主莖葉)的脫葉率。

        脫葉率=(施藥前葉片數(shù)-施藥后葉片數(shù))/施藥前葉片數(shù)。

        1.2.2凈光合速率。分別在TDZ施用當(dāng)天及施用后1 d、3 d、6 d、10 d采用LI-6800便攜式光合熒光儀(美國LI-COR公司)測定第3主莖葉的凈光合速率(Pn)。儀器使用開放式氣路,內(nèi)置光源,光照度為1 300μmol·m-2·s-1。測定時每個處理重復(fù)5次。

        1.2.3葉綠素?zé)晒鈪?shù)。與光合速率測定同步,用LI-6800(美國LI-COR公司)便攜式光合熒光儀測定第3主莖葉的葉綠素?zé)晒鈪?shù),測定時每個處理重復(fù)5次。

        1.2.4內(nèi)源保護酶活性與丙二醛含量。待1.2.2與1.2.3項目測定完后,立即將葉片取回,用液氮速凍后存于-40℃冰箱中用于內(nèi)源保護酶活性與內(nèi)源激素含量的分析。用氮藍四唑(Nitro-blue tetrazolium,NBT)法測定超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase,SOD)活性[13],用愈創(chuàng)木酚法測定過氧化物酶(Peroxidase,POD)活性[13],用硫代巴比妥酸比色法測定丙二醛(Malondialdehyde,MDA)含量[13]。

        1.2.5內(nèi)源激素含量。按照Pan等[14]的方法進行樣品內(nèi)源激素的提取,之后采用高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[15]測定脫落酸(Abscisic acid,ABA)、生長素(Auxin,IAA)的含量。

        1.3 統(tǒng)計分析

        采用Microsoft Excel數(shù)據(jù)處理軟件分析數(shù)據(jù)和制作圖表,用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件進行方差分析,用最小顯著差數(shù)法檢驗處理間平均值差異顯著性。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 施用TDZ對不同部位葉片脫落率的影響

        由表1可見,棉花葉片涂抹TDZ后,其脫落率迅速上升,3 d后脫葉率為80%,6 d后TDZ涂抹的葉片全部脫落。而其相鄰未著藥葉片,在試驗期間無任何脫落。

        表1 施用脫葉劑(TDZ)對不同部位葉片脫落率的影響Table 1 Effect of defoliants application on the cotton leaf abscission

        2.2 施用TDZ對未著藥葉片凈光合速率的影響

        由圖1可見,TDZ處理的未著藥棉花葉片Pn迅速降低,處理后3 d時最低,6 d、10 d時逐漸回升。TDZ處理后1 d、3 d、6 d,未著藥棉花葉片Pn較CK分別降低了39.6%、63.1%、39.4%,而在處理后10 d,與CK已無差異。

        2.3 施用TDZ對未著藥葉片葉綠素?zé)晒鈪?shù)的影響

        2.3.1最大光化學(xué)效率。最大光化學(xué)效率(Maximum quantum yield of PSII,Fv/Fm)是暗適應(yīng)下PSII的最大光化學(xué)效率或PSII原初光能轉(zhuǎn)化效率[16],可以作為衡量PSII光抑制程度的指標(biāo)。由圖2-A可見,TDZ處理后未著藥棉花葉片F(xiàn)v/Fm迅速降低,處理后1 d、3 d分別較CK降低了7.9%、7.8%,而在處理后6 d、10 d,未著藥葉片與CK已無明顯差異。

        圖1 施用脫葉劑(TDZ)對未著藥葉片凈光合速率的影響Fig.1 Effect of defoliants application on the net photosynthetic rate of cotton leaf without defoliants

        圖2 施用脫葉劑(TDZ)對未著藥葉片葉綠素?zé)晒鈪?shù)的影響Fig.2 Effect of defoliants application on chlorophyll fluorescence of cotton leaf without defoliants

        2.3.2量子產(chǎn)量與電子傳遞速率。PSII量子產(chǎn)量(Actual photochemical efficiency,ΦPSII)代表PSII非環(huán)式電子傳遞效率或光能捕獲的效率,電子傳遞速率(Electron transport rate,Ret)代表的是表觀光合量子傳遞速率[17]。由圖2-B可見,TDZ處理后,未著藥棉花葉片ΦPSII顯著低于CK,處理后1 d、3 d、6 d分 別 較CK降 低 了29.5%、39.3%、27.7%,但10 d后,處理間已無明顯差異。不同處理的Ret亦表現(xiàn)出相同的變化趨勢,TDZ處理后的1 d、3 d、6 d,未著藥棉花葉片較CK降低了25.7%、49.2%、42.3%(圖2-C)。

        2.3.3光化學(xué)猝滅系數(shù)與非光化學(xué)猝滅系數(shù)。光化學(xué)猝滅系數(shù)(Photochemical quenching,qP)反映PSII天線色素捕獲的光能用于光化學(xué)電子傳遞的份額,非光化學(xué)猝滅系數(shù)(Nonphotochemical quenching,qNP)則反映PSII天線色素吸收的光能不用于光化學(xué)電子傳遞而以熱的形式耗散掉的部分[17]。由圖2-D,E可見,TDZ處理顯著降低了未著藥棉花葉片的qP,而增大了NPQ。TDZ處理后1 d、3 d、6 d未著藥葉片qP分別較CK降低了22.1%、21.2%、18.7%,而其qNP較CK增大了42.4%、34.6%、32.8%。在處理后10 d,qP和qNP不同處理間差異較小。

        2.4 施用TDZ對未著藥葉片內(nèi)源保護酶活性的影響

        從圖3看出,TDZ處理后1 d,未著藥葉片的SOD活性與CK差異較??;處理后3 d、6 d、10 d,未著藥葉片SOD活性顯著高于CK。而POD活性變化較小,TDZ處理后1 d、3 d、6 d,未著藥葉片的POD活性與CK差異較??;處理后10 d,未著藥葉片的POD活性明顯高于CK。

        圖3 施用脫葉劑(TDZ)對未著藥葉片內(nèi)源保護酶活性的影響Fig.3 Effect of defoliants application on endogenous enzyme activity of cotton leaf without defoliants

        2.5 施用TDZ對未著藥葉片丙二醛含量的影響

        MDA作為活性氧毒害引發(fā)的細胞膜脂過氧化產(chǎn)物,其含量的變化可以表示細胞膜脂過氧化程度和植物對逆境脅迫反應(yīng)的強弱。由圖4看出,TDZ處理后1 d,未著藥葉片MDA含量與CK無差異;而隨處理時間(3 d、6 d、10 d)的延長,未著藥葉片MDA含量明顯低于CK。

        圖4 施用脫葉劑(TDZ)對未著藥葉片MDA含量的影響Fig.4 Effect of defoliants application on MDA contents of cotton leaf without defoliants

        2.6 施用TDZ對未著藥葉片內(nèi)源激素含量的影響

        由圖5可見,TDZ處理后1 d,未著藥葉片ABA含量與CK無差異;而在處理后的3 d、6 d,未著藥葉片ABA含量明顯低于CK;處理后10 d,2個處理間又無明顯差異。IAA含量變化與ABA不同,TDZ處理后1 d、3 d、6 d、10 d,2個處理之間并無明顯差異。

        3 討論

        自1976年德國Cshering公司成功合成出TDZ以來,TDZ一直作為棉花大田的主要脫葉劑。但是,目前TDZ在葉片脫落過程中的生理、分子生物學(xué)機制仍不完全清楚[10-12];而對有關(guān)棉花噴施脫葉劑后未著藥葉片的生理功能如何變化,更未見研究。

        3.1 施用TDZ對葉片光合特性的影響

        圖5 施用脫葉劑(TDZ)對未著藥葉片內(nèi)源激素含量的影響Fig.5 Effect of defoliants application on endogenous hormone contents of cotton leaf without defoliants

        本研究發(fā)現(xiàn),涂抹TDZ的棉花葉片脫落率在3 d后即超過了80%,而其相鄰未著藥葉片在整個試驗過程中未見脫落。前人[12]研究表明,噴施脫葉劑后棉花葉片發(fā)生光抑制,PSII復(fù)合體受到損傷并伴隨光合電子傳遞受阻,光合功能受損。本研究表明,施用TDZ后,相鄰未著藥棉花葉片凈光合速率(Pn)迅速降低,但是Pn的降低并無持續(xù)性,在施藥后10 d恢復(fù)到對照水平。進一步分析葉綠素?zé)晒馓匦园l(fā)現(xiàn),與Pn表現(xiàn)趨勢一致:施用TDZ后,相鄰未著藥棉花葉片F(xiàn)v/Fm、ΦPSII、Ret以及qP迅速降低,而qNP迅速升高;但隨后各葉綠素?zé)晒鈪?shù)恢復(fù)到對照水平。這說明在涂抹TDZ后,相鄰未著藥棉花葉片的光合性能與光反應(yīng)中心部分失活,電子傳遞過程受阻,抑制光合色素將捕獲的光能轉(zhuǎn)化成化學(xué)能;但是,隨著施藥葉片的脫落,未著藥葉片光合功能可以迅速恢復(fù)。

        3.2 施用TDZ對葉片內(nèi)源保護酶活性的影響

        在外界脅迫下,作物體內(nèi)SOD、過氧化氫酶(Catalase,CAT)、POD等內(nèi)源保護酶協(xié)調(diào)作用可以有效地清除活性氧自由基,改善其抗逆性[18]。前人研究表明,棉花脫葉劑處理后初期葉片的SOD、POD和CAT活性上升較快,清除活性氧和保護細胞膜的能力有所增強,但在處理后期,SOD、POD和CAT活性下降,MDA含量上升,棉花葉片衰老加快[11]。而本研究表明,施用TDZ后,未著藥棉花葉片的SOD活性顯著升高,POD活性變化較小,MDA含量卻顯著低于CK。這可能是由于在TDZ處理初期(3 d內(nèi)),施藥葉片受脅迫較重,未著藥葉片亦發(fā)生了脅迫反應(yīng),啟動了抗氧化脅迫的應(yīng)激反應(yīng),SOD活性升高;在而在處理后期施藥葉片脫落,由于TDZ在棉株體內(nèi)的傳導(dǎo)性較差[21],未著藥葉片脅迫反應(yīng)解除,但SOD活性仍較高,因此MDA含量低于CK。

        3.3 施用TDZ對葉片內(nèi)源激素含量的影響

        化學(xué)脫葉主要是通過對植物體內(nèi)內(nèi)源激素的合成、運輸、代謝、與受體的結(jié)合以及此后的信號傳導(dǎo)過程進行干預(yù),使原有的生長激素平衡遭到破壞,從而達到預(yù)定的脫葉催熟目的[3]。已有的研究表明,棉花噴施TDZ可顯著促進葉片ABA的生成[19]。高麗麗等[11]研究亦發(fā)現(xiàn),棉花噴施TDZ后葉片中ABA含量顯著升高,而IAA含量逐漸降低。本研究發(fā)現(xiàn),TDZ處理后,未著藥葉片ABA含量并沒有顯著升高,IAA含量與對照相比亦無明顯差異。這表明,未著藥葉片的內(nèi)源激素平衡受TDZ的影響較小,這可能也是未著藥葉片并未脫落的主要原因之一。

        進行化學(xué)脫葉是棉花機械化采收必不可少的重要技術(shù)措施。棉花脫葉效果的好壞直接影響最終機采效果,而目前生產(chǎn)中普遍存在棉花脫葉劑施藥不均勻等問題[20]。本研究發(fā)現(xiàn),棉花施用TDZ后著藥葉片可以快速脫落,但是未著藥葉片卻不脫落。已有研究認為,脫葉催熟劑有很好的滲透作用,但大多沒有傳導(dǎo)作用[3]。因此,在生產(chǎn)中,必須從配方優(yōu)化、噴施方法、器具選擇等方面進行創(chuàng)新研究,保證脫葉劑藥液與葉片充分接觸,以提高脫葉效率。

        另外,有關(guān)脫葉劑調(diào)節(jié)棉花葉片的生理與分子基礎(chǔ)研究目前仍很薄弱,棉花葉片中TDZ的吸收與轉(zhuǎn)運機理仍不清楚,棉鈴不同發(fā)育階段纖維品質(zhì)形成對TDZ的反應(yīng)機制也未見報道。因此,應(yīng)進一步深入研究棉花脫落以及纖維發(fā)育等生理過程對化學(xué)脫葉劑的響應(yīng)機理,并不斷完善棉花脫葉催熟技術(shù)。

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