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        小鵝瘟卵黃抗體酸化水脫脂工藝優(yōu)化

        2018-12-21 03:48:34胡瑞鴻叢秋實(shí)李艷飛
        關(guān)鍵詞:影響

        胡瑞鴻,叢秋實(shí),李艷飛

        (1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)學(xué)院,哈爾濱 150030;2.哈藥集團(tuán)生物疫苗有限公司,哈爾濱 150069)

        卵黃免疫球蛋白(Immunoglobulin of yolk,IgY)是母雞受免疫刺激后將血清中相應(yīng)特異性IgG選擇性轉(zhuǎn)移至卵黃蓄積而成[1]。雞卵黃中含48%水、17.6%蛋白質(zhì)和30%脂肪[2],脂肪易與蛋白質(zhì)結(jié)合形成脂蛋白[3]。傳統(tǒng)粗制卵黃含有大量外源非水溶性蛋白及磷脂等大分子,提取卵黃抗體必須脫脂處理[4],抗體純度、效價(jià)是影響小鵝瘟抗體使用效果的關(guān)鍵因素[5]。

        國(guó)內(nèi)研究除脂方法主要有水稀釋法、聚乙二醇沉淀法、硫酸葡聚糖沉淀法、天然樹膠沉淀法、氯仿、苯酚、辛酸等有機(jī)溶劑抽提沉淀法以及超濾、超臨界萃取法與凍融等物理化學(xué)方法[6]。Kim與Hatta等利用非離子型表面活性劑原理,采用聚乙二醇6000和泊洛沙姆使卵黃液脫脂,破壞卵黃脂類水化膜,打破卵黃乳化狀態(tài),卵黃脂類互相凝結(jié)形成沉淀,實(shí)現(xiàn)脂水分離[7-8]。若兩種活性劑濃度過(guò)高,破壞抗體蛋白水化膜,形成沉淀,影響抗體效價(jià)[9-10]。但上述方法除脂工藝流程長(zhǎng)、步驟多、試劑消耗量大,須去除殘留化學(xué)物質(zhì)[11]。因此,研究無(wú)毒、無(wú)害、除脂效率高且除脂后對(duì)卵黃抗體影響最小的方法具有重要意義。

        本試驗(yàn)研究酸化水不同稀釋度、pH、存放時(shí)間及離心力對(duì)除脂率及卵黃免疫球蛋白提取的影響,篩選同條件下,脫脂率、瓊擴(kuò)效價(jià)及蛋白濃度最高的參數(shù)組合,旨在確定適用于小鵝瘟卵黃抗體脫脂工藝優(yōu)化條件,為小鵝瘟卵黃抗體規(guī)模化生產(chǎn)提供理論依據(jù)及試驗(yàn)基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        小鵝瘟卵黃抗體高免雞蛋:按照既定免疫程序,免疫合格產(chǎn)蛋雞,收集雞蛋[12]。

        0.12 mol·L-1(pH 5.0)醋酸鹽緩沖液、0.1 mol·L-1(pH 7.2)PBS、辛酸(CP)、硫酸銨(AR)。

        小鵝瘟陽(yáng)性血清:東北農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物免疫學(xué)實(shí)驗(yàn)室惠贈(zèng)。

        小鵝瘟瓊擴(kuò)抗原:哈藥集團(tuán)生物疫苗有限公司制備。

        1.2 方法

        1.2.1 IgY抗體測(cè)定

        1.2.1.1 操作方法

        將制備瓊脂板按模板用打孔器打孔,挑出孔中瓊脂。中心1孔,周圍6孔,孔徑3 mm,孔距4 mm(見圖1)。中央孔加入標(biāo)準(zhǔn)瓊擴(kuò)抗原,1孔加入標(biāo)準(zhǔn)陽(yáng)性血清,3、5孔加入倍比稀釋產(chǎn)品。各孔均加滿(25 μL)。將加樣后瓊脂板放入填有紗布濕盒內(nèi),置于37℃,24 h首次判定,72 h最終判定。

        圖1 瓊脂擴(kuò)散試驗(yàn)Fig.1 Agar diffusion test

        1.2.1.2 判定標(biāo)準(zhǔn)

        當(dāng)標(biāo)準(zhǔn)陽(yáng)性血清孔與抗原孔之間形成清晰沉淀線時(shí),被檢產(chǎn)品與抗原孔之間出現(xiàn)沉淀線,被檢血清判為陽(yáng)性;當(dāng)標(biāo)準(zhǔn)陽(yáng)性血清孔與抗原孔之間形成清晰沉淀線,被檢產(chǎn)品孔與抗原孔之間無(wú)沉淀線出現(xiàn)時(shí),被檢血清判為陰性;當(dāng)被檢產(chǎn)品最高稀釋度孔與抗原孔之間形成清晰沉淀線時(shí),即判為被檢產(chǎn)品的瓊擴(kuò)效價(jià),小鵝瘟瓊擴(kuò)效價(jià)應(yīng)不低于1:16。

        1.2.2 脂肪含量測(cè)定

        用香草醛顯色法測(cè)定[13]。

        1.2.3 蛋白含量測(cè)定

        考馬斯亮藍(lán)染色法測(cè)定[14]。

        1.2.4 電泳分析

        SDS-PAGE電泳檢查[15]、分離膠濃度12%、濃縮膠濃度5%、電壓120 V、考馬斯亮藍(lán)R-250染色。

        1.2.5 IgY提取

        以酸化水、辛酸-硫酸銨法提取IgY。卵黃經(jīng)酸化水稀釋除脂后,加入1.5%辛酸,攪拌混合,1 900 g離心30 min后,加入33%硫酸銨,攪拌混合,經(jīng)1 900 g離心20 min后,加入pH 7.2 PBS溶解沉淀,置4℃冰箱內(nèi)保存。

        1.2.6 除脂主要影響因素

        1.2.6.1 酸化水稀釋度對(duì)除脂率的影響

        每組取10個(gè)雞蛋卵黃液,分別用0.12 mol·L-1醋酸鹽緩沖液作1:4~1:9共6組稀釋,調(diào)pH至5.0,4℃冰箱過(guò)夜,測(cè)定上清液中脂肪含量,計(jì)算除脂率。

        1.2.6.2 酸化水pH對(duì)除脂率的影響

        每組取10個(gè)雞蛋卵黃液,分別用0.12 mol·L-1醋酸鹽緩沖液作1:8稀釋,調(diào)pH至4.8、5.0、5.2、5.4共4組,4℃冰箱過(guò)夜,測(cè)定上清液中脂肪含量,計(jì)算除脂率。

        1.2.6.3 酸化水作用時(shí)間對(duì)除脂率的影響

        每組取10個(gè)雞蛋的卵黃液,分別用0.12 mol·L-1醋酸鹽緩沖液作1:8稀釋,調(diào)pH至5.2,置于4℃冰箱內(nèi)5、8、12、15 h,測(cè)定上清液中脂肪含量,計(jì)算除脂率。

        1.2.6.4 離心條件對(duì)除脂率的影響

        每組取10個(gè)雞蛋卵黃液,分別用0.12 mol·L-1醋酸鹽緩沖液作1:8稀釋,調(diào)pH至5.2,置于4℃冰箱內(nèi)15 h(過(guò)夜),1 900 g離心20、30 min;7 598 g離心20、30 min;空白作對(duì)照;測(cè)定上清液中脂肪含量,計(jì)算除脂率。

        1.2.7 除脂條件對(duì)IgY提取的影響

        將上述除脂主要影響因素,在相同條件下經(jīng)辛酸和硫酸銨作用,提取IgY,測(cè)定其效價(jià)、蛋白濃度及蛋白質(zhì)純度等,觀察不同除脂條件對(duì)IgY提取的影響。

        1.2.8 脫脂條件優(yōu)化參數(shù)組合試驗(yàn)

        取600枚高免雞蛋,分6個(gè)批次,按上述試驗(yàn)確定最優(yōu)參數(shù)組合作脫脂工藝試驗(yàn),提取上清液,測(cè)定脂肪含量,計(jì)算除脂率、瓊擴(kuò)效價(jià)、蛋白濃度。

        1.3 統(tǒng)計(jì)與分析

        使用Excel 2007、SPSS 16.0軟件作多重比較,平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(Mean±SD)表示。結(jié)果數(shù)據(jù)列表中,同列肩標(biāo)大寫字母不同表示差異極顯著(P<0.01);小寫字母不同表示差異顯著(P<0.05);字母相同表示差異不顯著(P>0.05)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 除脂主要影響因素

        2.1.1 酸化水稀釋度對(duì)除脂率的影響

        比較6組不同酸化水稀釋度,根據(jù)顏色、澄清度、沉淀狀態(tài)及除脂率評(píng)價(jià)條件,隨稀釋倍數(shù)增加,上清液澄清,卵黃沉淀逐漸結(jié)實(shí),稀釋度為1:8時(shí),除脂率達(dá)96%以上,均一、穩(wěn)定,除脂率最高。結(jié)果如表1、圖2所示。

        表1 酸化水稀釋度對(duì)除脂率的影響Table 1 Effect of acidified water dilution on lipids removal rate

        2.1.2 酸化水pH對(duì)除脂率的影響

        比較4組不同酸化水pH,根據(jù)顏色、澄清度、沉淀狀態(tài)及除脂率評(píng)價(jià)條件,pH為4.8時(shí),幾乎無(wú)沉淀且渾濁,隨pH增大,上清液澄清,沉淀逐漸結(jié)實(shí),呈膠質(zhì)狀,當(dāng)pH至5.2時(shí),除脂率達(dá)96%以上。結(jié)果見表2。

        圖2 酸化水稀釋度對(duì)除脂率的影響Fig.2 Effect of acidified water dilution on degreasing rate

        表2 酸化水pH對(duì)除脂率的影響Table 2 Effect of acified water pH on degreasing rate

        2.1.3 酸化水作用時(shí)間對(duì)除脂率的影響

        4℃作用5、8、12、15 h,除脂率無(wú)明顯差異,均達(dá)96%以上,但卵黃沉淀隨著作用時(shí)間增加,沉淀密度增加且無(wú)流動(dòng)性,傾倒未隨上清液流出,結(jié)合規(guī)模化生產(chǎn)15 h為最優(yōu)時(shí)間。結(jié)果如表3所示。

        表3 酸化水作用時(shí)間對(duì)除脂率的影響Table 3 Effect of action time of acidified water on degreasing rate

        2.1.4 離心條件對(duì)除脂率的影響

        比較上清液未離心、離心力1 900 g、7 598 g,在不同離心時(shí)間下除脂率,無(wú)明顯差異,其中以離心力1 900 g,20 min除脂率最高,達(dá)96.91%,結(jié)果如表4所示。

        2.2 除脂條件對(duì)IgY提取的影響

        2.2.1 酸化水稀釋度對(duì)IgY提取的影響

        不同稀釋度水脫脂后,經(jīng)辛酸和硫酸銨作用,提取IgY作瓊脂擴(kuò)散試驗(yàn),測(cè)定AGP,效價(jià)值為64、128倍。蛋白質(zhì)含量和純度存在差異,稀釋度1:5和1:8組蛋白質(zhì)含量與其他組存在差異,提取IgY含量高,但1:5稀釋度AGP效價(jià)比1:8低,稀釋度1:8時(shí)為最優(yōu)稀釋度。結(jié)果見表5、圖3。

        2.2.2 酸化水pH對(duì)IgY提取的影響

        卵黃液經(jīng)不同pH脫脂后,測(cè)定提取IgY瓊擴(kuò)效價(jià),達(dá)到64、128倍。隨pH升高蛋白質(zhì)純度增高,但差異不顯著,pH 5.2時(shí)蛋白濃度略高,為最優(yōu)pH,結(jié)果見表6、圖4。

        2.2.3 酸化水作用時(shí)間對(duì)IgY提取的影響

        四種時(shí)間作用脫脂后,測(cè)定提取IgY瓊擴(kuò)效價(jià),達(dá)到64、128倍,蛋白質(zhì)含量5 h為19.79 mg·mL-1、8 h為20.90 mg· mL-1、12 h為20.10 mg· mL-1、15 h為20.16 mg·mL-1,差異不顯著,結(jié)果見表7。

        2.2.4 離心條件對(duì)IgY提取的影響

        取雞卵黃,用醋酸鹽緩沖液1:8稀釋后,調(diào)pH5.2,置4℃過(guò)夜,取200mL卵黃液經(jīng)不同離心條件脫脂后,提取IgY,結(jié)果顯示離心力為1900g,離心20 min時(shí),提取數(shù)量最多,且蛋白濃度最高,瓊擴(kuò)效價(jià)無(wú)差異。結(jié)果見表8。

        表4 離心條件對(duì)除脂率的影響Table 4 Effects of centrifugal conditions on degreasing rate

        表5 酸化水稀釋度對(duì)IgY提取的影響Table 5 Effect of acidified water dilution on IgY extraction

        圖3 酸化水稀釋度對(duì)提取IgY影響電泳Fig.3 Electrophoresis image of the effect of acidified water dilution on the extraction of IgY

        2.3 脫脂條件優(yōu)化參數(shù)組合試驗(yàn)驗(yàn)證

        取600枚高免雞蛋,分為6個(gè)批次,按上述試驗(yàn)確定最優(yōu)參數(shù)組合,酸化水1:8稀釋、pH 5.2、4℃存放15 h,1 900 g離心20 min作脫脂試驗(yàn),結(jié)果顯示瓊擴(kuò)效價(jià)均達(dá)1:64以上,蛋白濃度達(dá)19 mg·mL-1以上,除脂率超過(guò)96%。結(jié)果見表9。

        表6 酸化水pH對(duì)IgY提取的影響Table 6 Effect of acified water pH on IgY extraction

        圖4 酸化水pH對(duì)IgY提取的影響電泳Fig.4 Electrophoresis image of the effect of pH of acified water on IgY extraction

        表7 酸化水作用時(shí)間對(duì)IgY提取的影響Table 7 Effect of storage time of acidified water on IgY extraction

        表8 離心條件對(duì)IgY提取的影響Table 8 Effect of centrifugal conditions on IgY extractionn

        表9 脫脂條件優(yōu)化參數(shù)組合試驗(yàn)Table 9 Combination test of skim condition optimization parameters

        3 討論與結(jié)論

        3.1 除脂主要影響因素

        卵黃脫脂研究國(guó)外起步較早、相對(duì)成熟,如PEG法及其改進(jìn)方法(1980和1985)、氯仿-PEG法(1984)、硫酸葡聚糖法(1981)和水稀釋法等[16]。國(guó)內(nèi)研究中,柴家前提出甲醛脫脂法,添加0.3%~1.2%甲醛溶液[17];常維山提出苯酚脫脂法,采用2%~3%純苯酚溶液[18];王輝龍等研究聚乙二醇一步沉淀提取法[19];楊嚴(yán)俊等利用高分子膠結(jié)合超濾技術(shù)[20]。以上方法普遍存在成本高、產(chǎn)量低、抗體純度低、效價(jià)低等缺點(diǎn),小鵝瘟抗體使用效果較差。本試驗(yàn)運(yùn)用相似相溶原理,探討稀釋度、酸堿度、存放時(shí)間和離心條件4個(gè)因素對(duì)卵黃除脂的影響。將卵黃混勻于水中,使脂蛋白聚集沉淀或離心分離,獲得含IgY上清液。醋酸鹽緩沖液作1:4~1:9稀釋卵黃,共6個(gè)稀釋度,調(diào)pH 5.2,置于4℃冰箱內(nèi)15 h。上清液顏色由黃逐漸轉(zhuǎn)變?yōu)槿榘咨蓾嶙兦?,上清液增多,沉淀部分密?shí)。1:7以上的3個(gè)稀釋度除脂率可達(dá)96%以上,本研究增加1:4、1:9兩組試驗(yàn),差異顯著,說(shuō)明醋酸鹽緩沖液稀釋倍數(shù)對(duì)除脂率影響顯著,其中1:8稀釋度除脂效果最佳,且IgY含量與瓊擴(kuò)效價(jià)最理想,因此作為酸化水除脂的稀釋度。

        用水稀釋卵黃后,稀釋液pH顯著影響除脂和IgY提取效果。pH 4.8時(shí),上清液渾濁,沉淀松散,隨pH升高,上清液逐漸澄清,沉淀密實(shí),呈膠體狀,除脂率升高。當(dāng)pH升至5.2時(shí),除脂率達(dá)96%以上。Akita等研究表明,酸度影響卵黃漿液中脂類含量,pH 4.6~5.2時(shí),水溶液中幾乎無(wú)脂類物質(zhì),pH繼續(xù)增加,水溶性脂類含量增加,可能是酸度升高影響脂肪去除[21]。為此,將卵黃液pH調(diào)至5.2,除脂率和IgY提取效果較好。

        卵黃液1:8稀釋后,pH 5.2,不同時(shí)間除脂效果基本相同,存放5 h除脂率較大,在工廠化前提下,考慮大量提取的實(shí)際情況,選用存放15 h(過(guò)夜),沉淀較密實(shí)且呈膠體狀,保證除脂效果。

        以酸化水除脂時(shí),卵黃作1:8稀釋,pH 5.2,經(jīng)15 h作用后,上清液較為澄清,脂蛋白沉淀密實(shí)。比較離心力1 900 g、7 598 g與未離心處理,未離心上清液量較少,除脂率略低。為此,在保證除脂效果及IgY提取量、純度情況下,采用1 900 g離心20 min方法,但工業(yè)化生產(chǎn)中對(duì)離心設(shè)備容量、安全性、電力及人工成本要求較高,未來(lái)將進(jìn)一步考慮調(diào)整工藝參數(shù),達(dá)到工業(yè)化標(biāo)準(zhǔn)。酸化水具有操作簡(jiǎn)便、成本低廉、除脂效果好等優(yōu)點(diǎn),但提取液中仍有脂類與蛋白結(jié)合,存在微量非目的蛋白,提高提取IgY純度尚待深入研究。

        3.2 除脂條件對(duì)IgY提取質(zhì)量的影響因素分析

        氯仿、苯酚、辛酸等有機(jī)溶劑抽提沉淀法及Kim與Hatta等利用非離子型表面活性劑原理[7-8],使卵黃脂類互相凝結(jié),發(fā)生沉淀,實(shí)現(xiàn)脂水分離。但濃度過(guò)高時(shí),破壞抗體蛋白水化膜使之發(fā)生沉淀,影響抗體效價(jià)[9-10]。本試驗(yàn)中稀釋度、酸堿度、存放時(shí)間和離心條件4個(gè)因素是制約去除IgY中脂類重要因素。在稀釋度試驗(yàn)中,瓊擴(kuò)效價(jià)及蛋白濃度呈先升后降趨勢(shì),雖然1:6、1:7、1:8稀釋度蛋白含量較高,結(jié)合除脂率影響故選擇1:8稀釋倍數(shù),但酸化水稀釋度對(duì)提取IgY影響的電泳圖中可見其他條帶,說(shuō)明存在雜蛋白,應(yīng)考慮進(jìn)一步去除。

        在酸化水pH對(duì)IgY提取的影響試驗(yàn)中,pH 5.2可得到較高蛋白含量,但電泳圖上可觀察雞免疫球蛋白分子質(zhì)量67 ku左右重鏈、分子質(zhì)量為22 ku左右輕鏈和分子質(zhì)量為45 ku、35 ku電泳條帶,為雜蛋白條帶。蛋白含量高可由雜蛋白引起,需進(jìn)一步提純分析。酸化水作用時(shí)間對(duì)IgY提取試驗(yàn)中各組瓊脂擴(kuò)散效價(jià)及蛋白濃度并無(wú)顯著差異,結(jié)合除脂率及工業(yè)化生產(chǎn)需要,選擇人力、電力較為經(jīng)濟(jì)的15 h(過(guò)夜)工藝方法,方便生產(chǎn)轉(zhuǎn)化。酸化水離心條件對(duì)IgY提取試驗(yàn)中,未離心試驗(yàn)組獲得目的蛋白含量較低,可能是無(wú)外力作用下目的蛋白較少,但此方法對(duì)設(shè)備、人力要求不高,瓊脂擴(kuò)散效價(jià)無(wú)差異,但獲得IgY純度略低。因此,考慮除脂工藝時(shí)應(yīng)結(jié)合除脂率綜合評(píng)定蛋白含量及瓊脂擴(kuò)散效價(jià)。

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