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        油茶炭疽病病原菌的分離與鑒定

        2018-12-05 07:21:30劉小玉余鳳玉付登強楊偉波賈效成陳良秋
        中國果菜 2018年11期

        劉小玉,余鳳玉,付登強,楊偉波,賈效成,陳良秋

        (中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院椰子研究所/油茶研究中心,海南文昌571339)

        油茶為我國所特有,與油橄欖、油棕、椰子并稱為世界四大木本油料樹種,在我國已有2300多年的栽培歷史。它適應(yīng)性廣,主要生長在南方,以湖南、江西、廣西、海南等地為主。油茶炭疽病在我國油茶產(chǎn)區(qū)普遍發(fā)生,常引起嚴重落果、落蕾、落葉、枯枝,甚至整株衰亡[1]。病害落果率通常在20%~40%,嚴重時達60%以上。晚期病果雖可采收,但種子含油量僅為健康種子的一半,損失嚴重[2]。加強對油茶炭疽病的研究力度,提高油茶炭疽病的診斷和防治技術(shù),是油茶生產(chǎn)的當務(wù)之急。因此,本文通過組織分離法對油茶炭疽病的病原菌進行分離、培養(yǎng)及致病性檢測,并通過形態(tài)學(xué)和序列分析的方法進行鑒定,旨在明確其種類,為防治該病菌奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與培養(yǎng)基

        1.1.1 試驗材料

        采于中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院油茶研究中心油茶種質(zhì)資源圃的感染炭疽病的病油茶葉片。

        1.1.2 PDA培養(yǎng)基

        去皮馬鈴薯200 g、葡萄糖20 g、瓊脂20 g。

        1.2 方法

        1.2.1 病原菌的分離

        采用常規(guī)組織分離法分離病原菌[3]。切取病健交界處小塊病變組織(5 mm×5 mm),經(jīng)70%乙醇消毒30 s,再用0.1%升汞浸泡1 min,后用無菌水漂洗3次,晾干移至PDA平板培養(yǎng)基上,置于25℃恒溫培養(yǎng)箱中黑暗培養(yǎng)。待長出菌絲后挑取菌落邊緣菌絲接種至新PDA平板上進行純化,再轉(zhuǎn)接到試管斜面上培養(yǎng)4 d,放入4℃冰箱保存。

        1.2.2 致病性檢測

        按照柯赫氏法則進行致病性檢測。從分離病原菌的油茶植株上,選取健康嫩葉,用自來水沖洗干凈,2%次氯酸鈉表面消毒2 min,然后無菌水清洗3次,無菌濾紙吸干表面水分,放置于無菌高濕的培養(yǎng)皿中。將純化保存的病原菌活化,接種至PDA培養(yǎng)基上,25℃黑暗條件下培養(yǎng)3~5 d,用無菌打孔器在菌落邊緣切取5 mm的菌絲塊,放置于培養(yǎng)皿中的油茶葉片洞口處。設(shè)空白PDA培養(yǎng)基為對照,重復(fù)3次。蓋上蓋子,放置于25℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng),3 d后觀察發(fā)病情況。發(fā)病后從病斑上再分離病原菌,檢測是否與接種菌株相同。

        1.2.3 病原菌形態(tài)學(xué)觀察

        將純化后的病原菌接種到PDA培養(yǎng)基平板上,在25℃恒溫培養(yǎng)箱中黑暗培養(yǎng),定期觀察記錄菌落形態(tài)學(xué)特征,并對病原菌分生孢子和厚垣孢子進行顯微形態(tài)觀測。

        1.2.4 DNA提取、PCR擴增及序列測定

        將分離菌株在PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng)5~7 d后,收集新鮮的濕菌體0.1~0.3 g,用液氮在研缽中磨碎,裝入1.5 mL的離心管中,然后用基因組DNA快速提取試劑盒(真菌)提取DNA。

        PCR擴增所用引物為ITS區(qū)通用引物ITS1和ITS4。PCR反應(yīng)總體積為25 μL,包括10×PCR buffer(含Mg2+)2.5 μL,ITS1 和 ITS4 各 1 μL,dNTP Mix 0.5 μL,Taq DNA polymerase 0.5 μL,模板 DNA 2 μL,ddH2O 17.5 μL。PCR 反應(yīng)程序為:95℃預(yù)變性 3 min;95℃變性 30 s,55 ℃復(fù)性 30 s,72 ℃延伸 2 min,35個循環(huán);最后72℃延伸10 min。取5 μLPCR產(chǎn)物用1%的瓊脂糖凝膠進行電泳檢測,在紫外燈下觀察、并拍照保存。將PCR產(chǎn)物送至北京六合華大基因科技股份有限公司進行測序。將該序列通過Blast程序與GenBank中核酸數(shù)據(jù)進行比對分析,采用BioEdit、Mega5.0等軟件對菌株進行系統(tǒng)發(fā)育分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 油茶炭疽病癥狀

        油茶葉片感染膠孢炭疽病菌后,病斑多從葉緣或葉尖處發(fā)生,呈半圓形或不規(guī)則形,黑褐色,具水漬狀輪紋,邊緣紫紅色。老病斑中心灰白色,內(nèi)有輪生小黑點,使病斑呈波紋狀,如圖1所示。

        圖1 油茶炭疽病病癥Fig.1 Anthracnose disease of Camellia oleifera

        2.2 致病性測定結(jié)果

        致病性檢測發(fā)現(xiàn)菌株7-2能引起健康油茶葉片發(fā)病,對照組未見發(fā)病。第4 d起已出現(xiàn)褐色病斑,隨后病斑上產(chǎn)生白色菌絲。隨著時間推移,病斑逐漸擴大,乃至蔓延到整個葉片。從這些病斑上再次分離病原菌,發(fā)現(xiàn)所獲得的分離物與接種菌一致,表明所分離的菌株為引起油茶炭疽病的病原菌。

        2.3 病原菌的分離結(jié)果與形態(tài)特征

        采用常規(guī)組織塊法分離得到菌株,編號為7-2,保存于中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院油茶研究中心。菌株7-2在PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng)后,菌落為圓形并呈等徑輻射生長,無褶皺,邊緣整齊,菌絲初期為白色,后逐漸變?yōu)榛液谏?,氣生菌絲生長旺盛,由白色變成灰白色,再漸變?yōu)樯罨疑鯛睿ㄒ妶D2)。分生孢子單孢,無色,圓柱形或圓筒形,兩頭鈍圓,中間略凹,兩端不對稱,大小為(5.18~8.29)μm×(9.47~19.37)μm。這些形態(tài)特征與膠孢炭疽菌形態(tài)特征相符[4,5]。因此,初步確認菌株7-2為膠孢炭疽菌(Colletotrichum gloeosporioides)。

        圖2 膠孢炭疽菌病原菌菌落Fig.2 Pathogenic bacteriacolony of Colletotrichum gloeosporioides

        2.4 病原菌基因序列分析

        經(jīng)rDNA ITS1和ITS4引物對菌株7-2進行PCR擴增,獲得一條長度為577 bp大小的片段。將該序列與GenBank中核酸數(shù)據(jù)庫(http://ncbi.nlm.nih.gov/blast)進行同源性比較,發(fā)現(xiàn)菌株7-2序列與GenBank(序列登錄號:MH265979.1、MF800896.1)庫中登錄的膠孢炭疽菌的序列完全一致,同源性為100%,因此可以確定菌株7-2為膠孢炭疽菌。

        3 結(jié)論

        本研究通過形態(tài)學(xué)、分子生物學(xué)及致病性檢測,證明了引起油茶炭疽病的病原菌為膠孢炭疽菌。膠孢炭疽病菌是世界上最重要的致病菌之一,至少能夠侵染1000多種植物,主要危害寄主植物的葉片和果實,也可危害枝梢,引起葉斑、落葉、果實腐爛和枝梢枯死[6]。油茶果實被害初期在果皮上出現(xiàn)褐色小斑,逐漸擴大為黑色圓形病斑,有時數(shù)個病斑連接成不規(guī)則形,無明顯邊緣,后期病斑上出現(xiàn)輪生的小黑點。嫩葉受害時,病斑多從葉緣或葉尖處發(fā)生,呈半圓形或不規(guī)則形,黑褐色,具水漬狀輪紋,邊緣紫紅色。老病斑中心灰白色,內(nèi)有輪生小黑點,使病斑呈波紋狀。枝梢受害,多發(fā)生在新梢基部,少數(shù)在梢中部,橢圓形或梭形,初為黑褐色,后變成黑色?;ㄑ亢腿~芽受害變黑色或黃褐色,無明顯邊緣,后期呈灰白色,上生小黑點,嚴重時芽枯蕾落。另外,由于膠孢炭疽病菌寄主范圍非常廣泛,對大量的經(jīng)濟作物如芒果[7]、建蘭[8-10]、橡膠[11]、梨、草莓和柑橘等易造成嚴重危害??梢姕蚀_鑒定膠孢炭疽病菌并有效防止該病害的發(fā)生、蔓延和危害,對促進我國種植業(yè)的安全生產(chǎn),維護種植者利益,具有十分重要的現(xiàn)實意義。

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