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        初探Ste-20激酶在調(diào)控孢子絲菌雙相生長過程中的作用

        2018-11-03 02:30:20張振穎胡媛媛陳凱麗侯彬彬
        中國真菌學(xué)雜志 2018年5期
        關(guān)鍵詞:絲菌雙相激酶

        張振穎 胡媛媛 陳凱麗 侯彬彬

        (1.香港大學(xué)深圳醫(yī)院皮膚科,深圳 518053;2.遼寧大學(xué)生命科學(xué)院,沈陽 110031;3.大連醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院皮膚科,大連 116023)

        孢子絲菌病可引起皮膚、皮下組織以及附近淋巴管的慢性感染,導(dǎo)致化膿、潰爛及滲出,偶可累及肌肉、骨骼、中樞神經(jīng)系統(tǒng)等臟器[1]。在我國,孢子絲菌病發(fā)病率是僅次于念珠菌病和曲霉病的深部真菌病。孢子絲菌具有雙相性:室溫 (25℃)為菌絲相,無致病性;37℃為酵母相,酵母相可在感染者體內(nèi)增殖,具有致病性[2]。因此,孢子絲菌由菌絲相轉(zhuǎn)化為酵母相對其致病性的形成是必需的[3]。在孢子絲菌酵母相形成過程中,不僅菌株形態(tài)和細胞壁的組成成分發(fā)生改變,其酵母相特異表達的毒力基因也被誘導(dǎo)表達。目前,在雙相型病原真菌中鑒定出來的毒力基因主要有BAD1[4]、AGS1[5]、BYS1[6]和CBP1[7]等基因。與之比較,有關(guān)孢子絲菌酵母相形成過程的研究相對滯后,被鑒定出來的酵母相特異表達毒力基因數(shù)量很少,無法全面分析其雙相轉(zhuǎn)化的全過程。

        MAPK通路在多種真菌中具有重要調(diào)控功能,釀酒酵母中MAPK級聯(lián)反應(yīng)至少參與五種信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑:細胞壁的完整性通路、孢子壁的組裝通路、菌絲的生長通路、信息素的反應(yīng)通路、高滲透性甘油通路, 從而調(diào)控其生長、形態(tài)改變、繁殖和應(yīng)激反應(yīng)[7-8]。

        Ste-20激酶被鑒定為MAPK信號通路的上游調(diào)控激酶,目前其在真菌中的功能,主要集中在釀酒酵母 (Saccharomycescerevisiae)中進行研究[9]。Ste-20通過依次激活MAPKKK-MAPKK-MAPK的級聯(lián)反應(yīng)來調(diào)控MAPK信號通路。Ste-20可以調(diào)控釀酒酵母的細胞壁形成、接合過程、滲透壓調(diào)節(jié)和菌絲生長等功能[10]。Ste-20在病原真菌中的作用報道較少,有報道其可以調(diào)控植物致病真菌玉米黑粉菌 (Ustilagomaydis)的接合過程和致病性[11]。另一Ste-20同源激酶PakA激酶 (p21-Activated Kinase),被報道可以調(diào)控雙相型真菌馬爾尼非藍狀菌 (Penecillium,既往稱馬爾尼菲青霉Penecilliummarnefiii)的分生孢子萌發(fā)和酵母相細胞的形態(tài)[12-13]。

        本實驗擬采用實驗室前期建立的根癌農(nóng)桿菌介導(dǎo)的小分子雙鏈RNA干擾技術(shù)構(gòu)建Ste-20基因沉默[14],觀察、分析Ste-20基因?qū)︽咦咏z菌在雙相轉(zhuǎn)換過程的影響,從而進一步分析Ste-20激酶在孢子絲菌中調(diào)控雙相轉(zhuǎn)換過程中的作用。

        1 材料和方法

        1.1 觀察菌絲相形態(tài)

        觀察接種于沙氏固體培養(yǎng)基平板上的菌株在25℃下的形態(tài),研究Ste-20基因干擾后對株生長形態(tài)的影響。取標(biāo)準株ATCC10268和干擾株 (Ste-20i)于沙氏固體培養(yǎng)基平板上25℃培養(yǎng),待生長3~7 d后觀察菌落形態(tài)。

        1.2 觀察酵母相和菌絲相的生長情況

        分別挑取標(biāo)準株和干擾株,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng),鏡檢觀察接種于兩種培養(yǎng)基中的菌株在25℃和37℃溫度下菌絲及孢子生長情況,研究Ste-20基因干擾對孢子絲菌菌絲相酵母相轉(zhuǎn)化的影響。

        1.3 菌絲相的處理

        將干擾株和標(biāo)準株接種于沙氏培養(yǎng)基的培養(yǎng)液中,25℃,150 r/min培養(yǎng),每隔24 h取出200 mL待測培養(yǎng)液倒入離心管中,進行離心并用雙蒸水洗滌3次,在105℃烘箱中烘干,分別稱量不同菌株菌絲的干重。每一處理設(shè)置4次重復(fù)。

        1.4 孢子生長情況的觀察

        ①將一定數(shù)量的野生標(biāo)準株和干擾株的孢子絲菌菌液于BHI液基上,37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)7 d。②分別取相同OD值的野生標(biāo)準株和干擾株菌液繼續(xù)于37℃ BHI液體培養(yǎng)基中培養(yǎng),每隔24 h測定37℃ BHI培養(yǎng)基中菌株孢子OD值,觀察OD值變化。

        1.5 透射電鏡觀察

        進行取材,固定,漂洗,脫水 (30%乙醇或丙酮—50%乙醇或丙酮—70%乙醇或丙酮—90%乙醇或丙酮—100%乙醇或丙酮2次,每次每級10~30 min),浸透,包埋,修塊,切片,染色,觀察。

        2 結(jié) 果

        2.1 Ste-20基因沉默后孢子絲菌的表型變化

        菌落形態(tài)觀察 將孢子絲菌標(biāo)準株、干擾株分別在沙氏固體培養(yǎng)基平板上25℃培養(yǎng)3 d和7 d后,標(biāo)準株和干擾株的菌落形態(tài)明顯變化,主要表現(xiàn)干擾株生長受到抑制,菌落直徑較標(biāo)準株變小,色素生產(chǎn)減少 (見圖1)。

        菌絲生長情況觀察 將相同OD值的標(biāo)準株和干擾株在沙氏液體培養(yǎng)及中25℃培養(yǎng)24 h后,按前述方法稱種,標(biāo)準株為0.299 7 g,干擾株為0.100 1 g;96 h后標(biāo)準株為2.854 7 g,干擾株為0.812 7 g。即96 h后標(biāo)準株增長了2.555 g,而干擾株只增長了0.712 6 g,提示干擾株菌絲生長緩慢 (見圖2)。

        孢子生長情況觀察 相同OD值的標(biāo)準株和干擾株菌懸液于37℃培養(yǎng)后,結(jié)果顯示在24 h后干擾株為0.17,標(biāo)準株為0.47;96 h后干擾株為0.29,標(biāo)準株為0.62;168 h (1周)后干擾株為0.52,標(biāo)準株為1.01。提示下調(diào)Ste-20基因的表達對孢子的生長有抑制作用,孢子萌發(fā)緩慢 (見圖3)。

        2.2 Ste-20基因干擾對孢子絲菌菌絲相酵母相轉(zhuǎn)化的影響

        圖1比較Ste-20i干擾株,ATCC標(biāo)準株在25℃生長時菌落的變化:A.Ste-20i干擾株25℃培養(yǎng)3 d;B.Ste-20i干擾株25℃培養(yǎng)7 d;C.ATCC標(biāo)準株25℃培養(yǎng)3 d;D.ATCC標(biāo)準株25℃培養(yǎng)7 d圖2不同時間下的申克孢子絲菌干重曲線圖

        Fig.1Compared the colonies of Ste-20i and ATCC growing at 25℃:A. The Ste-20i cultured at 25℃ for 3 d; B. The Ste-20i cultured at 25℃ for 7 d; C. ATCC cultured at 25℃ for 3 d; D. ATCC cultured at 25℃ for 7 dFig.2Curve ofSporothrixschenckiidry weight at different times

        Fig.3Curve of the OD value ofSporothrixschenckiiat different times

        菌絲及孢子萌發(fā)的鏡檢觀察 相同數(shù)量的標(biāo)準株和干擾株的孢子分別放在25℃和37℃的SDA和BHI液體培養(yǎng)基中培養(yǎng),結(jié)果顯示在25℃培養(yǎng)24 h后,干擾株菌絲生長延緩;37℃培養(yǎng)24 h后,標(biāo)準株可見出芽產(chǎn)孢,干擾株的孢子萌發(fā)緩慢,菌絲變短,未見出芽產(chǎn)孢 (見圖4)。

        2.3 Ste-20基因?qū)︽咦咏z菌超微結(jié)構(gòu)的影響

        標(biāo)準株和干擾株分別在SDA液體培養(yǎng)基上培養(yǎng)25℃,7 d,使用透射電鏡觀察,由圖可見與標(biāo)準株相比,干擾株細胞壁欠完整致密,變疏松,細胞質(zhì)也變得疏松、雜亂,菌絲較標(biāo)準株變短,孢子也較標(biāo)準株欠圓整 (見圖5)。

        3 討 論

        本課題組前期利用比較蛋白組學(xué)的方法,鑒定出Ste-20激酶為孢子絲菌酵母相特異表達蛋白[15]。隨后我們利用RACE方法從孢子絲菌中克隆了該基因,通過Real time RT-PCR方法進一步檢測,發(fā)現(xiàn)Ste-20的mRNA表達水平在酵母相是菌絲相15倍[16]。盡管已經(jīng)鑒定出很多Ste-20的功能,但對其在病原真菌,特別是雙相型病原真菌中的功能和調(diào)控機制知之甚少。根據(jù)細胞內(nèi)信號通路的網(wǎng)絡(luò)化作用方式,Ste-20激酶作為MAPK信號通路的上游調(diào)控蛋白,很可能與多種膜受體等多種上游信號關(guān)聯(lián)從而調(diào)控MAPK信號通路。結(jié)合文獻和我們的前期數(shù)據(jù),推測Ste-20在孢子絲菌的雙相轉(zhuǎn)換和致病性形成中可能具有重要作用。其機制可能為Ste-20參與雙組份信號系統(tǒng)反應(yīng)調(diào)控蛋白SSK1激活MAPK通路的過程或者其存在Ste-20獨立的調(diào)控機制。我們采用實驗室前期建立的根癌農(nóng)桿菌介導(dǎo)的小分子雙鏈RNA干擾技術(shù)構(gòu)建Ste-20基因沉默菌株,觀察、分析Ste-20基因下調(diào)對孢子絲菌在雙相轉(zhuǎn)換過程等方面的影響,初步確定了Ste-20激酶可能在調(diào)控孢子絲菌雙相轉(zhuǎn)換該過程中的作用,后期我們還將在致病性等方面繼續(xù)展開研究,這或許進一步闡明孢子絲菌病的發(fā)病機制,并發(fā)現(xiàn)潛在的治療靶點,提供新的治療策略。

        圖4觀察分析Ste-20基因沉默對孢子絲菌孢子生成數(shù)量、孢子顯微形態(tài)等方面的影響:A.ATCC 25℃培養(yǎng)菌絲相;B.ATCC 37℃培養(yǎng)酵母相;C:Ste-20i 25℃培養(yǎng);D.Ste-20i 37℃培養(yǎng)圖5標(biāo)準株與干擾株25℃培養(yǎng)透射電鏡結(jié):A.標(biāo)準株 (ATCC10268)25℃培養(yǎng)下的孢子;B.標(biāo)準株 (ATCC10268)25℃培養(yǎng)下的菌絲;C.干擾株Ste-20i 25℃培養(yǎng)下的孢子;D.干擾株Ste-20i 25℃培養(yǎng)下的菌絲

        Fig.4Observe and analyze the effects of Ste-20 gene silencing on sporulation quantity and spore morphology of sporidium spore: A. ATCC mycelium cultured at 25℃; B. ATCC yeast phase cultured at 37℃; C. Ste-20i culture at 25℃; D. Ste-20i cultured at 37℃Fig.5Transmission electron microscope result of standard strain and interferred strain at 25℃: A. Standard strain (ATCC10268) spores cultured at 25℃; B. Standard strain (ATCC10268) mycelium cultured at 25℃; C. Linterferred strain Ste-20i spores cultured at 25℃; D. Linterferred strain Ste-20i mycelium cultured at 25℃

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