趙靜 唐懷志
【摘 要】本文以食源性致病微生物作為目標(biāo)菌,利用PCR技術(shù),建立一種快速高效檢測(cè)凍肉中致病微生物的PCR反應(yīng)體系。并對(duì)反應(yīng)體系的靈敏度和特異性進(jìn)行檢測(cè)分析,得到最適合的快速檢測(cè)食物中致病微生物的方法。
【關(guān)鍵詞】食源性致病微生物;PCR;靈敏度;特異性
1 前言
伴隨著國(guó)民經(jīng)濟(jì)的發(fā)展,食品工業(yè)規(guī)模在不斷擴(kuò)大。但是近年來(lái)食源性致病菌是引起食源性疾病的屢見(jiàn)不鮮[1],以微生物性暴發(fā)事件數(shù)和發(fā)病人數(shù)最多,分別為總食源性疾病數(shù)的40.93%和56.39%[2]。我國(guó)是肉制品生產(chǎn)和消費(fèi)大國(guó),肉制品易受各種微生物的污染,滋生多種致病菌[3]。大腸桿菌是肉類中較為常見(jiàn)的食源性致病菌,可污染各種肉制品。長(zhǎng)期以來(lái),這種病原菌的實(shí)驗(yàn)室診斷主要依靠傳統(tǒng)的細(xì)菌學(xué)檢測(cè)方法,步驟繁瑣且需要數(shù)日才能得出結(jié)論[4]。免疫學(xué)檢測(cè)方法是一種能夠?qū)⒏叨葘R恍缘目乖?抗體反應(yīng)與高度敏感性的酶催化作用結(jié)合,但免疫學(xué)檢測(cè)方法一般需要合適數(shù)量的純化細(xì)菌,或者對(duì)樣品進(jìn)行濃縮用來(lái)提高菌液的濃度,所以一般需要進(jìn)行較長(zhǎng)時(shí)間的前期增菌[5]。近年來(lái),聚合酶鏈反應(yīng)是應(yīng)用最廣泛的分子生物學(xué)技術(shù),以其高度保守的核酸序列設(shè)計(jì)特異性引物進(jìn)行擴(kuò)增,用凝膠電泳和紫外核酸檢測(cè)儀觀察結(jié)果[6]。
本研究旨在基于PCR技術(shù),用于檢測(cè)市場(chǎng)中凍肉食品內(nèi)含有的大腸桿菌的含量,建立一套對(duì)凍肉食品中的大腸桿菌進(jìn)行快速、高效、精準(zhǔn)的檢測(cè)方法,為食源性致病微生物快速檢測(cè)提供參考。主要內(nèi)容包括三部分:大腸桿菌的PCR反應(yīng)體系建立;對(duì)大腸桿菌PCR退火溫度的反應(yīng)條件的優(yōu)化;實(shí)例樣品檢測(cè),確定PCR方法的靈敏度及PCR的特異性分析。
2 材料與方法
2.1 材料及設(shè)備
大腸桿菌(由吉林農(nóng)業(yè)科技學(xué)院微生物實(shí)驗(yàn)室分離菌株);Taq酶、DNA Marker DL5000均購(gòu)自百泰克生物技術(shù)有限公司;凍肉;SW-079PCR分析儀(寶生物工程大連有限公司)、JY600t電泳儀(北京君意東方電泳設(shè)備有限公司)、 LAS 500生物分子成像儀(北京綠綿科技有限公司 )、FA1004A電子天平(上海精天電子儀器有限公司)、SW-073雙人單面凈化工作臺(tái)(蘇州凈化設(shè)備有限公司)、HH-8數(shù)顯恒溫水浴鍋(金壇市科析儀器有限公司)、HZQ-X10CA恒溫振蕩培養(yǎng)箱(上海一恒科技有限公司)、 FMB20制冰機(jī)(上海比朗有限公司)、5424R(冷凍)艾本德臺(tái)式高速離心機(jī)(上海昆士蘭生物科技發(fā)展有限公司)、PHB-10塞里多斯酸度計(jì)(上海旦鼎國(guó)際貿(mào)易有限公司)等;其它化學(xué)試劑均為化學(xué)純。
2.2 方法
2.2.1 引物設(shè)計(jì) 選擇大腸桿菌的編碼溶血素基因(hlyA)作為目的基因。用Primer 5.0分析軟件分別設(shè)計(jì)引物,上游引物為F 5`-GCATCATCAAGCGTACGTTCC-3`,下游引物為R 5`-AATGAGCCAAGCTGGTTAAGC-3`。引物由金斯瑞生物科技有限公司合成。
2.2.2 菌種的培養(yǎng) 將保存的菌種取出,37℃水浴快速解凍,取100 μl再接種到100 ml LB液體培養(yǎng)基。37℃,搖床培養(yǎng)過(guò)夜。取培養(yǎng)液劃線接種于LB固體培養(yǎng)基上,培養(yǎng),分離出單菌落。挑取平板上的單菌落接種于LB液體培養(yǎng)基培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
2.2.3 基因組DNA的提取 采用郭新梅,康冀川[7]等人的改良CTAB法。提取1 mL對(duì)數(shù)期菌液,12000 r/min離心5 min,向細(xì)菌沉淀中依次加入10 % SDS 30 μL,CTAB提取緩沖液(Tris- HCl 50 mmol/L,pH值8.0,EDTA 10 mmol/L;NaCl 0.7 mol/L;CTAB 1.5%)150 μL,加蛋白酶K 5 μL, CTAB/NaCl 80 μL,于60℃條件下水浴 40 min;加等體積的酚∶氯仿∶異戊醇(25∶24∶1),輕輕混勻,在4℃條件下以轉(zhuǎn)速12000 r/min離心5 min;取上清液,加入400 μL異丙醇混勻,在4℃條件下用轉(zhuǎn)速12000 r/min離心5 min;棄上清液,加入70%的乙醇洗滌沉淀,自然晾干,用100 μL含RNA酶A(20 mg/mL)的TE溶解DNA,于-20℃條件下冷凍保存?zhèn)溆谩?/p>
2.2.4 食品樣品前處理和模板DNA的提取 (1)樣品處理:無(wú)菌條件下取25 g或25 mL食品樣品,放入225 mL滅菌生理鹽水中均質(zhì),制成10倍梯度稀釋液。(2)增菌培養(yǎng):將菌液接入7.5% NaCl肉湯或胰蛋白胨肉湯中,37℃振蕩培養(yǎng)半小時(shí)。(3)取菌液4℃條件下4000 r/min離心10 min,取上清液加入另一滅菌離心管中以10000 rpm離心20 min,沉淀依據(jù)細(xì)菌基因組DNA提取步驟進(jìn)行提取,利用已經(jīng)建立的PCR反應(yīng)程序進(jìn)行檢測(cè)。取PCR產(chǎn)物在瓊脂糖凝膠上進(jìn)行電泳,利用凝膠成像系統(tǒng)觀察結(jié)果。
2.2.5 靈敏度及特異性分析 將致病微生物培養(yǎng)增菌后接種于食品樣品中,培養(yǎng)后計(jì)數(shù),將已測(cè)濃度的菌液用生理鹽水稀釋,得到稀釋10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7倍的稀釋液,取2 mL提取DNA,以各自提取DNA為模板進(jìn)行PCR檢測(cè)。
3 結(jié)果與分析
3.1 PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化
PCR退火溫度優(yōu)化結(jié)果,為了選擇最佳的退火溫度,參照查閱的文獻(xiàn),分別選擇47.3 ℃、48.4℃、50.0℃、51.7 ℃、53.3℃、54℃進(jìn)行多重PCR擴(kuò)增,結(jié)果如圖1所示。隨著退火溫度的升高,條帶有明顯變亮的趨勢(shì),但到53.3℃時(shí)已變化不大,因此確定53.3 ℃為多重PCR的最佳的退火溫度。
3.2 人工污染樣品的檢測(cè)
按照2.2.4的方法將食品進(jìn)行處理,并提取檢測(cè)樣品的DNA,將提取的凍肉中的DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增。觀察結(jié)果如圖2所示,圖中出現(xiàn)所需菌種的擴(kuò)增的特異性條帶,并且條帶清晰明亮,表明食品中存在大腸桿菌存在,并能成功擴(kuò)增出結(jié)果。
3.3 樣品PCR靈敏度檢測(cè)
將大腸桿菌人工感染凍肉處理液,經(jīng)培養(yǎng)直接提取DNA,以DNA為模板,進(jìn)行10倍梯度稀釋然后進(jìn)行PCR檢測(cè),從圖3可以看出大腸桿菌的最低檢測(cè)限為2×10-4 ng/μL。
4 結(jié)論與討論
根據(jù)本試驗(yàn)的結(jié)果表明,選擇大腸桿菌的編碼溶血素基因(hlyA)作為目的基因設(shè)計(jì)的特異性引物,引物的特異性較強(qiáng)且互不干擾,可以用于PCR檢測(cè)大腸桿菌。在PCR反應(yīng)體系的退火溫度的條件優(yōu)化中確立了53.3℃是最優(yōu)的退火溫度。在凍肉的檢測(cè)樣品中大腸桿菌的最低檢測(cè)含量為2×10-4ng/μL。本研究在凍肉中檢出大腸桿菌具有較強(qiáng)特異性。
本研究中特異性引物的設(shè)計(jì)存在些問(wèn)題,在PCR的大腸桿菌的陰性對(duì)照中,存在一條不是預(yù)估的條帶,但是并不影響大腸桿菌的鑒定。所以特異性目的基因的選擇顯得尤為重要,本試驗(yàn)對(duì)大腸桿菌的靈敏度最低檢測(cè)限較低,通過(guò)討論分析:影響因素大致分為兩個(gè),一是檢測(cè)樣品的基因組DNA濃度與含量較低,二是凍肉中脂肪和蛋白質(zhì)的含量較多,介質(zhì)成分干擾PCR結(jié)果。但大多數(shù)的肉制品的致病菌的感染劑量均大于103CFU/ml[8]。所以本試驗(yàn)的靈敏度檢測(cè)結(jié)果對(duì)實(shí)際的應(yīng)用具有參考意義。
本試驗(yàn)建立了凍肉中大腸
桿菌的PCR檢測(cè)方法,大大縮短了檢驗(yàn)時(shí)間與檢驗(yàn)成本。檢測(cè)出凍肉中的兩種致病菌具有很高的特異性、較高的靈敏度、成本低的特點(diǎn),與實(shí)驗(yàn)室中傳統(tǒng)的食品中致病菌的檢測(cè)相比,極大的節(jié)省時(shí)間,在食品安全檢測(cè)中具有一定實(shí)際應(yīng)用價(jià)值。
參考文獻(xiàn):
[1] 劉秀英,胡怡秀. 全球食源性疾病現(xiàn)狀[J].國(guó)外醫(yī)學(xué): 衛(wèi)生
學(xué)分冊(cè),2003, 30(4): 199-205.
[2] 徐君飛,張居作. 2001—2010年中國(guó)食源性疾病暴發(fā)情況
分析[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào), 2012, 28(27): 313-316.
[3] LI M Y, ?ZHOU G H, XU X L, et al. Changes of bacterial di
versity and main flora in chilled pork during storage using
PCR-DGGE[J]. Food Microbiology, 2006, 23(7): 607-611.
DOI:10.1016/j.fm.2006.01.004.
[4] 王文娟,孟凡東. 食源性致病菌快速檢測(cè)試劑盒的研制
[G]. 中國(guó)畜牧獸醫(yī)學(xué)會(huì)動(dòng)物傳染病學(xué)分會(huì)第四次豬病防
控學(xué)術(shù)研討會(huì)論文集,2010.
[5] 孫鴻燕. 四種食源性致病菌多重PCR檢測(cè)方法的建立[D].
吉林,吉林大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,2011.
[6] 程曉燕. 幾種食源性致病菌快速檢測(cè)技術(shù)的建立[D]. 青
島,中國(guó)海洋大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,2012.
[7] 郭新梅,康冀川,張杰. CTAB法在金黃色葡萄球菌DNA提
取中的應(yīng)用[J]. 山地農(nóng)業(yè)生物學(xué)報(bào),2005, 24(6): 558-560.
[8] KONG R Y C,LEE S K Y,LAW T W F,et al. Rapid detected
of six types of bacterial pathogens in marine waters by multi
pex PCR[J]. Water Research, 2002, 36(11): 2802-2812.