秦令祥,周婧琦,崔勝文,高愿軍
(1.漯河中德雙成功能食品研究院有限公司,河南漯河462300;2.漯河食品職業(yè)學(xué)院,河南漯河462300)
香菇(Lentinus edodes)亦稱香蕈、花菇、冬菇,為擔(dān)子菌綱、傘菌目、側(cè)耳科、香菇屬的子實(shí)體,是世界上第二大食用菌種[1],其營(yíng)養(yǎng)豐富,味道鮮美,具有很高的藥用價(jià)值,是一種集營(yíng)養(yǎng)、保健和藥用功效于一體的藥食兩用真菌[2],廣泛分布我國(guó)各省區(qū),在我國(guó)有悠久的食用歷史,被譽(yù)為“菇中之王”,“菌中皇后”[3],是人類理想的健康食品。香菇多糖(lentinan,LNT)是從香菇的子實(shí)體中分離純化得到的高分子葡聚糖,主要成分為葡萄糖。香菇多糖是香菇中最重要的一種生物活性物質(zhì),是一種重要的生物反應(yīng)調(diào)節(jié)劑,具有調(diào)節(jié)免疫[4]、抗病毒[5]、抗腫瘤、降血糖等作用,目前,已廣泛應(yīng)用于人的臨床治療[6-10]。
目前,香菇多糖的提取方法多為傳統(tǒng)的熱水浸提法,該方法存在提取時(shí)間長(zhǎng)、提取率不高的缺點(diǎn)[11]。酶法和超聲波法有效避免了熱水浸提的缺陷,酶具有水解纖維素和糖蛋白的作用,促進(jìn)胞內(nèi)有效成分的溶出[12]。超聲波是利用其空化作用、機(jī)械效應(yīng)及機(jī)械剪切作用對(duì)原料進(jìn)行破碎,使胞內(nèi)的有效成分?jǐn)U散、溶出[13]。本試驗(yàn)采用超聲波協(xié)同復(fù)合酶法提取香菇多糖,達(dá)到提高多糖提取率的目的。
干香菇:丹尼斯超市;葡萄糖、苯酚、硫酸、檸檬酸、磷酸氫二鈉、正丁醇、三氯甲烷、無水乙醇(分析純):成都科龍化工試劑廠;纖維素酶(20 000 U/g)、果膠酶(20 000 U/g)、木瓜蛋白酶(100 000 U/g):南京奧多福尼生物科技有限公司。
JY92-ⅡDN超聲波細(xì)胞粉碎機(jī):寧波新芝生物科技股份有限公司;UV-2450島津紫外可見分光光度計(jì):島津企業(yè)管理(中國(guó))有限公司;TDL-50B臺(tái)式低速離心機(jī):上海安亭科學(xué)儀器廠;HH-M4數(shù)顯恒溫水浴鍋:上海赫田科學(xué)儀器有限公司;BSA124S電子分析天平:賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司;WN-20萬能粉碎機(jī):廣州旭朗機(jī)械設(shè)備有限公司;FRE-52A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:上海亞榮生化儀器廠;DZF-6090真空干燥箱:上海一恒科學(xué)儀器有限公司;PHS-3C酸度計(jì):成都世紀(jì)方舟科技有限公司;JJ-1精密增力電動(dòng)攪拌器:常州澳華儀器有限公司。
1.3.1 香菇粉的制備
將從超市中購得的干香菇在80℃烘箱中干燥至恒重,用萬能粉碎機(jī)粉碎,過60目的篩網(wǎng),得到符合條件的香菇粉,備用。
1.3.2 香菇多糖的超聲波協(xié)同復(fù)合酶法提取工藝及操作要點(diǎn)
1.3.2.1 提取工藝流程
香菇粉→超聲波提取→調(diào)節(jié)pH值→復(fù)合酶提取→滅酶→離心(5 000 r/min,10 min)→上清液減壓濃縮→加3倍體積95%乙醇溶液沉淀→4℃靜置24 h→離心(5 000 r/min,10 min)→真空干燥→即得香菇粗多糖
1.3.2.2 操作要點(diǎn)
稱取1.000 g香菇粉,按一定的料液比加入蒸餾水,進(jìn)行超聲波提??;超聲后加入緩沖液用酸度計(jì)調(diào)節(jié)pH值,按質(zhì)量比1∶1∶1加入纖維素酶、果膠酶和木瓜蛋白酶,水浴恒溫提取60 min后,90℃滅酶10 min;5 000 r/min下離心10 min,上清液經(jīng)旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器進(jìn)行濃縮,濃縮液加3倍體積分?jǐn)?shù)95%的乙醇溶液,在4℃條件下靜置24 h,5 000 r/min下離心10 min后收集沉淀,再經(jīng)真空干燥箱干燥即得香菇粗多糖。
1.3.3 香菇多糖含量的測(cè)定
采用苯酚-硫酸比色法[14]測(cè)定香菇多糖含量。
1.3.4 多糖提取率的計(jì)算
多糖提取率根據(jù)下列公式計(jì)算。
式中:c為由標(biāo)準(zhǔn)曲線算得的多糖質(zhì)量濃度,mg/mL;V為定容體積,mL;N為稀釋倍數(shù);m為香菇干粉質(zhì)量,g。
1.3.5 試驗(yàn)設(shè)計(jì)
1.3.5.1 超聲波提取工藝條件的優(yōu)化
準(zhǔn)確稱取一定質(zhì)量的香菇粉5份,在超聲波400W,料液比分別為 1 ∶10、1 ∶15、1 ∶20、1 ∶25、1 ∶30(g/mL),超聲溫度分別為 50、60、70、80、90 ℃,超聲時(shí)間分別為4、8、12、16、20 min 的條件下提取香菇多糖,以多糖提取率為指標(biāo),考察不同料液比、超聲溫度及超聲時(shí)間對(duì)多糖提取率的影響。每組進(jìn)行3次平行測(cè)定,所得結(jié)果為3次測(cè)定的平均值。
1.3.5.2 超聲波協(xié)同復(fù)合酶提取工藝條件的優(yōu)化
準(zhǔn)確稱取一定質(zhì)量的香菇粉5份,經(jīng)超聲波提取后,利用磷酸氫二鈉和檸檬酸緩沖溶液調(diào)節(jié)pH值分別為 4、4.5、5、5.5、6,加入復(fù)合酶(木瓜蛋白酶:纖維素酶:果膠酶質(zhì)量比為1∶1∶1)分別為 1%、1.5%、2%、2.5%、3%,在酶解溫度分別為 40、50、60、70、80℃的條件下分別酶解 20、30、40、50、60 min,提取香菇多糖,以多糖提取率為指標(biāo),考察酶解pH值、復(fù)合酶添加量、酶解溫度及酶解時(shí)間對(duì)多糖提取率的影響。
2.1.1 料液比對(duì)香菇多糖提取率的影響
料液比對(duì)香菇多糖提取率的影響見圖1。
由圖1可知,隨著料液比的減小,多糖提取率先升高再降低,當(dāng)料液比1∶15(g/mL)時(shí),香菇多糖提取率達(dá)到最高。料液比較低時(shí),溶液濃度和黏稠度過大,香菇細(xì)胞得不到充分的超聲波的空化作用,多糖提取不完全;而料液比過大時(shí),超聲波的能量大部分被溶劑吸收,香菇細(xì)胞內(nèi)的多糖成分溶出較少,提取率降低。因此,本研究的最佳料液比為1∶15(g/mL)。
2.1.2 超聲溫度對(duì)香菇多糖提取率的影響
超聲溫度對(duì)香菇多糖提取率的影響見圖2。
圖1 料液比對(duì)提取率的影響Fig.1 Effect of solid-liquid ration on the extraction rate
圖2 超聲溫度對(duì)提取率的影響Fig.2 Effect of ultrasonic temperature on the extraction rate
由圖2可知,隨著超聲溫度的不斷升高,多糖提取率也不斷升高,當(dāng)超聲溫度達(dá)到80℃,香菇多糖提取率達(dá)到最高,再進(jìn)一步升高超聲溫度,多糖提取率也不再升高,反而有所降低。分析其原因可能為超聲溫度升高,多糖的溶解度也升高,當(dāng)超聲溫度升高到一定程度后,部分多糖發(fā)生水解,造成提取率略有降低。因此,本研究的最佳超聲溫度為80℃。
2.1.3 超聲時(shí)間對(duì)香菇多糖提取率的影響
超聲時(shí)間對(duì)香菇多糖提取率的影響見圖3。
由圖3可知,隨著超聲時(shí)間的不斷增加,多糖提取率呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì),當(dāng)超聲時(shí)間為12 min時(shí),香菇多糖提取率達(dá)到最高,當(dāng)超聲時(shí)間再繼續(xù)增加,多糖會(huì)在超聲波的空化、機(jī)械剪切和熱作用下發(fā)生破壞和分解,促使多糖提取率降低。因此,本研究選擇最佳的超聲時(shí)間為12 min。
2.1.4 超聲波提取香菇多糖最佳工藝參數(shù)的確定
在上述單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選取料液比、超聲溫度、超聲時(shí)間為試驗(yàn)因素,選取L9(33)進(jìn)行正交試驗(yàn),探討超聲波提取香菇多糖工藝的最佳工藝參數(shù)。試驗(yàn)水平設(shè)計(jì)見表1,正交試驗(yàn)結(jié)果及分析見表2,方差分析見表3。
表1 正交試驗(yàn)因素水平表Table 1 Factor levels table of orthogonal experimental design
表2 正交試驗(yàn)結(jié)果Table 2 The result of orthogonal experimental design
表3 方差分析結(jié)果Table 3 The variance analysis results
由表2正交試驗(yàn)分析可知,各因素對(duì)香菇多糖提取率的影響大小順序?yàn)椋篈>B>C,即料液比>超聲溫度>超聲時(shí)間,最優(yōu)組合為A2B1C2。
由表3的方差分析可知,在顯著水平P=0.05時(shí),料液比、超聲溫度和超聲時(shí)間這3個(gè)因素影響均不顯著,經(jīng)對(duì)R值的分析,超聲波法提取香菇多糖的最佳工藝條件組合為 A2B1C2,即料液比為 1 ∶15(g/mL),超聲溫度70℃,超聲時(shí)間12 min,在此最優(yōu)條件下進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),3次平行試驗(yàn)的香菇多糖提取率平均值為8.97%。
在超聲波提取香菇多糖的最優(yōu)提取條件下,進(jìn)一步協(xié)同復(fù)合酶法提取香菇多糖,以期提高多糖的提取率。
2.2.1 酶解pH值對(duì)香菇多糖提取率的影響
酶解pH值對(duì)香菇多糖提取率的影響見圖4。
圖4 酶解pH值對(duì)提取率的影響Fig.4 Effect of enzymolysis pH value on the extraction rate
由圖4可知,隨著酶解pH值的升高,多糖提取率呈現(xiàn)先升高再降低的趨勢(shì),當(dāng)酶解pH值為5.5時(shí),香菇多糖提取率達(dá)到最高,繼續(xù)升高pH值,多糖提取率反而降低。分析可能的原因是pH值是影響酶活性的一個(gè)重要因素,在高于最適pH值范圍時(shí),酶的活性降低,導(dǎo)致提取率降低。因此,本研究選擇最佳的酶解pH值為5.5。
2.2.2 酶解溫度對(duì)香菇多糖提取率的影響
酶解溫度對(duì)香菇多糖提取率的影響見圖5。
圖5 酶解溫度對(duì)提取率的影響Fig.5 Effect of enzymolysis temperature on the extraction rate
由圖5可知,多糖提取率隨著酶解溫度的升高,呈現(xiàn)先升高再降低的趨勢(shì),當(dāng)酶解溫度為60℃時(shí),香菇多糖提取率達(dá)到最高,之后繼續(xù)升高酶解溫度,多糖提取率反而降低。分析可能的原因是酶解溫度的升高,促使酶活性加強(qiáng),有利于多糖的溶出;當(dāng)酶解溫度高于一定范圍時(shí),導(dǎo)致部分酶活性降低,提取率降低。因此,本研究選擇最佳的酶解溫度為60℃。
2.2.3 復(fù)合酶添加量對(duì)香菇多糖提取率的影響
復(fù)合酶添加量對(duì)香菇多糖提取率的影響見圖6。
圖6 復(fù)合酶添加量對(duì)提取率的影響Fig.6 Effect of compound enzyme addition on the extraction rate
由圖6可知,隨著復(fù)合酶添加量的增加,多糖提取率逐步升高,當(dāng)復(fù)合酶添加量超過2.5%時(shí),香菇多糖提取率并沒有顯著升高。這可能是由于復(fù)合酶添加量低于最佳值時(shí),酶解不徹底,多糖溶出的少;而復(fù)合酶添加量大于最佳值時(shí),溶液已飽和,多糖基本溶出完全,提取率不再升高。因此,本研究選擇最佳的復(fù)合酶添加量為2.5%。
2.2.4 酶解時(shí)間對(duì)香菇多糖提取率的影響
酶解時(shí)間對(duì)香菇多糖提取率的影響見圖7。
圖7 酶解時(shí)間對(duì)提取率的影響Fig.7 Effect of enzymolysis time on the extraction rate
由圖7可知,隨著酶解時(shí)間的增加,多糖提取率逐步升高,當(dāng)酶解時(shí)間達(dá)到50 min時(shí),香菇多糖提取率達(dá)到最大,再進(jìn)一步增加酶解時(shí)間,提取率也不會(huì)升高反而有所降低。這可能是由于酶解時(shí)間過短,酶解不充分,多糖溶出不徹底;而酶解時(shí)間過長(zhǎng)時(shí),導(dǎo)致多糖發(fā)生水解,造成提取率降低。因此,本研究選擇最佳的酶解時(shí)間為50 min。
2.2.5 超聲波協(xié)同復(fù)合酶法提取香菇多糖最佳工藝參數(shù)的確定
在超聲波提取香菇多糖正交試驗(yàn)優(yōu)化的基礎(chǔ)上,選取酶解溫度、酶解時(shí)間、復(fù)合酶添加量、酶解pH值這4個(gè)因素,選取L9(34)進(jìn)行正交試驗(yàn),以多糖提取率為評(píng)價(jià)指標(biāo),探討超聲波協(xié)同復(fù)合酶法提取香菇多糖工藝的最佳工藝參數(shù)。試驗(yàn)水平設(shè)計(jì)見表4,正交試驗(yàn)結(jié)果及分析見表5,方差分析見表6。
表4 正交試驗(yàn)因素水平表Table 4 Factor levels table of orthogonal experimental design
表5 正交試驗(yàn)結(jié)果Table 5 The result of orthogonal experimental design
表6 方差分析結(jié)果Table 6 The variance analysis results
由表5正交試驗(yàn)分析可知,各因素對(duì)香菇多糖提取率的影響大小順序?yàn)椋築>D>A>C,最優(yōu)組合為B2D3A2C2。
由表6可以看出,在顯著水平P=0.05時(shí),酶解時(shí)間和復(fù)合酶添加量對(duì)香菇多糖的提取率影響較大,達(dá)到了顯著水平,其他因素的影響不顯著,經(jīng)對(duì)R值的分析,超聲波協(xié)同復(fù)合酶法提取香菇多糖的最佳工藝條件組合為B2D3A2C2,即酶解時(shí)間50 min,復(fù)合酶添加量3%,酶解溫度60℃,酶解pH值5.5。
2.2.6 驗(yàn)證試驗(yàn)
對(duì)通過正交試驗(yàn)得出的最佳工藝條件進(jìn)行最優(yōu)化驗(yàn)證試驗(yàn),3次平行試驗(yàn)的超聲波協(xié)同復(fù)合酶法提取香菇多糖的提取率平均值為12.46%,顯著高于其他條件下的香菇多糖提取率。
本試驗(yàn)采用超聲波協(xié)同復(fù)合酶法提取香菇多糖,可顯著提高香菇多糖提取率,此方法具有快速、高效、操作簡(jiǎn)便、節(jié)能等特點(diǎn)。我們通過在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,經(jīng)正交試驗(yàn),得到超聲波協(xié)同復(fù)合酶法提取香菇多糖的最佳工藝條件為:料液比為1∶15(g/mL),超聲溫度70℃條件下超聲提取12 min后進(jìn)行復(fù)合酶法提取,酶解時(shí)間50 min,復(fù)合酶添加量3%,酶解溫度60℃,酶解pH值5.5,該條件下香菇多糖提取率為12.46%。因此,本研究得到的工藝可為香菇多糖的工廠化生產(chǎn)以及多糖化合物的綜合利用提供一種新的途徑。