許存賓
摘? ?要:植物在生長(zhǎng)過程中經(jīng)常遭受各種脅迫因子的影響,隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,植物適應(yīng)逆境的機(jī)制研究也從生理水平步入分子水平。對(duì)植物應(yīng)答逆境脅迫的轉(zhuǎn)錄組、蛋白組和調(diào)控分子機(jī)制3個(gè)方面的研究進(jìn)行了概述。
關(guān)鍵詞:植物;應(yīng)答逆境脅迫;分子機(jī)制;研究進(jìn)展
植物經(jīng)常遭受各種逆境脅迫,對(duì)生長(zhǎng)發(fā)育造成不利影響,甚至引起死亡。植物的逆境脅迫通常包括非生物脅迫和生物脅迫,前者主要由一定的物理或化學(xué)條件引發(fā),如高溫、干旱、冷害、高鹽、重金屬、機(jī)械損傷等,后者主要由各種生物因子引發(fā),如真菌、細(xì)菌、病毒、線蟲和菟絲子等引起的病蟲害[1]。植物為了適應(yīng)逆境環(huán)境,會(huì)在分子、細(xì)胞、器官、生理生化等水平上作出及時(shí)調(diào)節(jié)[2~3]。植物對(duì)逆境脅迫的響應(yīng)是一個(gè)非常復(fù)雜的生命過程,其分子機(jī)制至今尚未完全闡明。隨著全球環(huán)境的日益惡化,各種逆境脅迫對(duì)植物生長(zhǎng)發(fā)育帶來的影響也日漸嚴(yán)重,成為制約現(xiàn)代農(nóng)業(yè)發(fā)展的重要因素,各國(guó)學(xué)者對(duì)植物逆境應(yīng)答機(jī)制的研究也投入了越來越多的力量[4]。
早期科學(xué)家們對(duì)植物在不利環(huán)境中的形態(tài)變化和生理指標(biāo)變化研究較多,隨著分子生物學(xué)技術(shù)的不斷發(fā)展,對(duì)植物適應(yīng)逆境機(jī)制的研究從生理水平進(jìn)入分子水平,使得植物在逆境脅迫條件下的代謝機(jī)理研究取得了重要進(jìn)展。植物受到逆境刺激后,通過系列信號(hào)分子對(duì)相關(guān)抗逆基因和蛋白的表達(dá)進(jìn)行調(diào)節(jié),進(jìn)而改變自身形態(tài)和生理生化水平來適應(yīng)逆境[5]。此研究不僅能探索生命現(xiàn)象的本質(zhì),而且能更好地進(jìn)行分子育種和植物次生代謝產(chǎn)物合成研究。本文就植物應(yīng)答逆境脅迫的轉(zhuǎn)錄組學(xué)、蛋白組學(xué)和分子調(diào)控機(jī)制3個(gè)方面的研究進(jìn)展進(jìn)行了概述。
1? ?植物應(yīng)答逆境脅迫的轉(zhuǎn)錄組學(xué)研究進(jìn)展
轉(zhuǎn)錄組學(xué)(transcriptomics)是一門在RNA水平上研究生物體中基因轉(zhuǎn)錄的情況及轉(zhuǎn)錄調(diào)控規(guī)律的學(xué)科,即從RNA水平研究基因表達(dá)的情況。轉(zhuǎn)錄組學(xué)可定量分析生物體不同組織、不同發(fā)育階段和不同環(huán)境條件下的基因表達(dá)變化情況。在研究植物應(yīng)答逆境脅迫分子機(jī)制時(shí),轉(zhuǎn)錄組學(xué)可以對(duì)有無進(jìn)行逆境處理的植物基因表達(dá)情況進(jìn)行差異分析,篩選出與植物抗逆有關(guān)的基因,還可以對(duì)不同品種、突變體、發(fā)育期或組織在同一逆境下的基因表達(dá)情況進(jìn)行對(duì)比,篩選出與植物抗逆相關(guān)的新基因[6]。轉(zhuǎn)錄組研究的主要技術(shù)包括3種:①基于雜交的基因芯片技術(shù)(microarray),該技術(shù)只適用于檢測(cè)已知序列,卻無法捕獲新的mRNA,存在著遺失一些重要表達(dá)信息的風(fēng)險(xiǎn)。②基于Sanger測(cè)序法的SAGE (serial analysis of gene expression)和MPSS(massively parallel signature sequencing),首先提取試驗(yàn)樣品中的RNA并反轉(zhuǎn)錄成cDNA,用錨定酶消化后接上接頭再進(jìn)行測(cè)序,因此可以獲得較為完整的轉(zhuǎn)錄組學(xué)圖譜,并且可以發(fā)現(xiàn)新的基因。③第二代測(cè)序技術(shù)的成熟和第三代測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,對(duì)基因組學(xué)的研究產(chǎn)生了巨大的影響,并被廣泛運(yùn)用到了基因組測(cè)序工作中,RNA測(cè)序技術(shù)(RNA-Seq)已經(jīng)逐漸成為轉(zhuǎn)錄組研究的主要方法。此外,cDNA- AFLP(amplified fragment length polymorphism,擴(kuò)增片段長(zhǎng)度多態(tài)性)、SSH (suppression-subtractive hybridization,抑制消減雜交法)、Northern blot、Q-RT-PCR (quantitative reverse-transcription PCR,定量逆轉(zhuǎn)錄PCR)、實(shí)時(shí)熒光定量PCR (Quantitative Real-time PCR)等試驗(yàn)技術(shù)在轉(zhuǎn)錄組研究中起到了十分重要的作用[7,8]。
目前,在擬南芥、水稻等模式植物中已大規(guī)模地進(jìn)行了干旱、高鹽和低溫等脅迫響應(yīng)相關(guān)的基因表達(dá)譜的分析[9,10],篩選出了數(shù)千種關(guān)于脅迫應(yīng)答的基因,它們可以作逆境脅迫下基因的表達(dá)模式信息,供其他物種參考。這些脅迫誘導(dǎo)基因產(chǎn)物大致可以分為兩類:①直接應(yīng)答脅迫的功能蛋白質(zhì),例如,胚胎發(fā)育晚期富集蛋白(LEA);②細(xì)胞內(nèi)信號(hào)肽和脅迫誘導(dǎo)基因表達(dá)的調(diào)控因子,如MAP激酶、磷酸酶類、磷脂代謝酶類和各類轉(zhuǎn)錄因子[11]。
2? ?植物應(yīng)答逆境脅迫的蛋白組學(xué)研究進(jìn)展
蛋白質(zhì)組(Proteome)的概念最先由Marc Wilkins在1994年提出,指由一個(gè)基因組(genome),或一個(gè)細(xì)胞、組織表達(dá)的所有蛋白質(zhì)(Protein)[12]。蛋白組學(xué)是揭示物質(zhì)生命現(xiàn)象的重要手段,目前對(duì)部分植物的不同發(fā)育階段、不同組織及器官、不同的細(xì)胞器以及膜的蛋白質(zhì)組已經(jīng)有了較為系統(tǒng)的研究。植物在遭受逆境脅迫時(shí),可以通過信號(hào)分子的轉(zhuǎn)導(dǎo)來調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)及細(xì)胞間與抗逆相關(guān)的基因發(fā)生表達(dá),并產(chǎn)生相關(guān)的酶及蛋白質(zhì),從而達(dá)到調(diào)整自身內(nèi)部生理狀態(tài)或外部形態(tài)來適應(yīng)不利的環(huán)境。因此,尋找與抗逆相關(guān)的蛋白(或基因),對(duì)了解植物抗逆機(jī)制以及提高植物抗逆性能有著十分重要的意義。蛋白質(zhì)組學(xué)研究主要包括蛋白質(zhì)的分離、鑒定、分析、驗(yàn)證等內(nèi)容,涉及雙向電泳、新型質(zhì)譜、酵母雙雜交、免疫共沉淀和生物信息學(xué)分析等技術(shù)手段,目前同位素標(biāo)記相對(duì)和絕對(duì)定量(isobaric Tags for Relative and Absolute Quantitation,iTRAQ)技術(shù)已經(jīng)成為定量蛋白質(zhì)組學(xué)常用的高通量篩選技術(shù)。在利用蛋白質(zhì)組學(xué)分析植物抗逆機(jī)制時(shí),根據(jù)脅迫因子的不同,可分為非生物脅迫的植物蛋白質(zhì)組學(xué)研究和生物脅迫的植物蛋白質(zhì)組學(xué)[13]。
3? ?植物應(yīng)答逆境脅迫的分子調(diào)控機(jī)制研究進(jìn)展
3.1? ?植物應(yīng)答逆境脅迫的啟動(dòng)子研究進(jìn)展
啟動(dòng)子(promoter) 是位于結(jié)構(gòu)基因5′端上游的DNA序列,能與RNA聚合酶結(jié)合并起始mRNA合成,主要由核心啟動(dòng)子區(qū)及其上游調(diào)控區(qū)組成。啟動(dòng)子就像“開關(guān)”,決定基因的活動(dòng)。根據(jù)作用方式及功能可將啟動(dòng)子分為3 類,即組成型啟動(dòng)子(constitutive promoter)、誘導(dǎo)型啟動(dòng)子(inducible promoter)和組織特異型啟動(dòng)子(tissue-specific promoter)。組成型啟動(dòng)子在生物體的任何細(xì)胞中都進(jìn)行表達(dá),且表達(dá)水平較為恒定,如花椰菜花葉病毒Ca MV 35S啟動(dòng)子。組織特異性啟動(dòng)子不同于前者,它可以調(diào)控基因只在生物體某些特定的部位或器官中進(jìn)行表達(dá),是多細(xì)胞生物形態(tài)建成和發(fā)育的基礎(chǔ),如煙草花粉絨氈層細(xì)胞中能進(jìn)行特異表達(dá)基因的啟動(dòng)子TA29。誘導(dǎo)特異性啟動(dòng)子能在某些特定的物理、化學(xué)或生物信號(hào)的刺激下,大幅度地提高或抑制相關(guān)基因的表達(dá)水平。植物體內(nèi)多種基因可以通過逆境脅迫而誘導(dǎo)表達(dá),因此,抗逆基因的表達(dá)大多受誘導(dǎo)型啟動(dòng)子的調(diào)控,如抗旱基因啟動(dòng)子、耐鹽基因啟動(dòng)子、高溫耐受性啟動(dòng)子、抗凍基因啟動(dòng)子、耐損傷基因啟動(dòng)子、抗病基因啟動(dòng)子和抗蟲基因啟動(dòng)子[14]。
啟動(dòng)子控制的基因表達(dá)主要通過啟動(dòng)子順式作用元件及其相對(duì)應(yīng)的反式作用因子相互作用進(jìn)行調(diào)控。例如,在干旱脅迫下,細(xì)胞能感知、轉(zhuǎn)導(dǎo)和水分脅迫相關(guān)的信號(hào),進(jìn)而誘導(dǎo)水分脅迫相關(guān)的基因表達(dá),Yamaguchi等(1992)首次從擬南芥(Arabidopsis thaliana)中分離克隆了逆境誘導(dǎo)型啟動(dòng)子rd29[15],在脫水情況下,rd29A和rd29B基因的啟動(dòng)子活性明顯增強(qiáng)[16]。另外,柑橘(Citrus unshiu) Cu-Lea5基因啟動(dòng)子、水稻(Oryza sativa)LEA蛋白基因Os LEA3-1啟動(dòng)子、水稻抗旱相關(guān)基因Os GRAS1的啟動(dòng)子都可能調(diào)控抗旱基因表達(dá)。與鹽脅迫相關(guān)的啟動(dòng)子有棉花(Gossypium hirsutum)液泡型Na+/H+逆向轉(zhuǎn)運(yùn)基因Gh NHX1啟動(dòng)子、菊花(Chrysanthemum dichrum) DREB轉(zhuǎn)錄因子的啟動(dòng)子Cd DREBa、SCa M-4啟動(dòng)子。高溫耐受性啟動(dòng)子包括含熱激元件HSE的熱激蛋白基因啟動(dòng)子、小麥(Triticum aestivum) Hvhsp17基因啟動(dòng)子。
3.2? ?植物應(yīng)答逆境脅迫的轉(zhuǎn)錄因子研究進(jìn)展
轉(zhuǎn)錄因子(transcription factor)是真核生物中能與基因5'端上游特定序列——轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)(transcription factor binding site,TfBS)特異性結(jié)合的蛋白質(zhì)因子,它與順式元件相互作用,通過抑制或增強(qiáng)的方式,保證目的基因以特定的強(qiáng)度在準(zhǔn)確的時(shí)間和空間表達(dá)。因此,當(dāng)植物遭遇逆境刺激時(shí),轉(zhuǎn)錄因子在植物啟動(dòng)逆境應(yīng)答機(jī)制中起著中心調(diào)節(jié)的作用,轉(zhuǎn)錄因子也逐漸成為植物抗逆機(jī)理研究的核心內(nèi)容。
目前,通過轉(zhuǎn)基因證實(shí)NAC(NAM,ATAF1/2 and CUC2)、MYB(v-myb a-vian myeloblastosis viral oncogene homolog)、Bzio(basic leucine-Zipper)和WRKY(N-端含有WRKYGQK高度保守氨基酸序列)等多個(gè)轉(zhuǎn)錄因子家族與植物抗逆性有重要關(guān)系[17]。
4? ?展望
植物對(duì)逆境脅迫的響應(yīng)是一個(gè)非常復(fù)雜的生命過程,隨著分子生物學(xué)與生物信息學(xué)的發(fā)展,各種新技術(shù)將應(yīng)用于植物的抗逆研究,逐步解決假陽性和低豐度表達(dá)基因的分離。植物作為一個(gè)系統(tǒng)的生物體,其從逆境信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、轉(zhuǎn)錄調(diào)控、基因表達(dá)和產(chǎn)生生理、形態(tài)變化是一個(gè)整體過程,逆境應(yīng)答機(jī)制應(yīng)從單一的組學(xué)研究向系統(tǒng)生物學(xué)研究發(fā)展。
參考文獻(xiàn):
[ 1 ] 宋純鵬,王學(xué)路. 植物生理學(xué)[M]. 北京:科學(xué)出版社,2009.
[ 2 ] Rodziewicz P,Swarcewicz B,Chmielewska K,et al. Influence ofabiotic stresses on plant proteome and metabolome changes[J].Acta Physiologiae Plantarum,2014,36(01):1-19.
[ 3 ] Bari R,Jones J D. Role of plant hormones in plant defence res-ponses[J]. Plant Mol. Biol.,2009,69(04):473-488.
[ 4 ] 李潔.植物應(yīng)答非生物逆境的蛋白質(zhì)組學(xué)研究進(jìn)展[J].青海農(nóng)林科技,2015(03):55-58.
[ 5 ] Ausubel FM. Are innate immune signaling pathways in plantsand animals conserved[J]. Nat. Immunol.,2005,06(10):973-979.
[ 6 ] Anderson J T,Mitchell-Olds T. Ecological genetics and genomicsof plant defenses:Evidence and approaches[J]. Functional E-cology,2011,25(02):312-324.
[ 7 ] Velculescu V E,Zhang L,Vogelstein B,et al. Serial analysisof gene expression[J]. Science,1995,270(5 235):484-487.
[ 8 ] 賈琪,吳名耀,梁康逕,等. 基因組學(xué)在作物抗逆性研究中的新進(jìn)展[J]. 中國(guó)生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2014,22(04):375-385.
[ 9 ] Seki M,Narusaka M,Ishida J,et al. Monitoring the ex-pressionprofi les of 7 000 Arabidopsis genes under drought, cold andhigh-salinity stresses using a full-length cDNA microarray[J].Plant J,2002,31 (03):279-292.
[ 10 ] Winter D,Vinegar B,Nahal H,et al. An electronic fluorescent?pictograph browser for exploring and analyzing large-scale bi-?ological data sets[J]. PLo S One,2007,02 (08):e718.
[ 11 ] Shinozaki K,Yamaguchi-Shinozaki K,Seki M. Regulatory net-?work of gene expression in the drought and cold stress responses[J].?Curr Opin Plant Biol,2003,06 (05):410-417.
[ 12 ] Heazlewood J L. Towards an analysis of the rice mitochondrial?proteome[J]. Plant Physiology,2003,132(05):230-242.
[ 13 ] 范海延,崔娜,邵美妮,等. 植物應(yīng)答逆境脅迫的蛋白質(zhì)組學(xué)?研究進(jìn)展[J]. 生物技術(shù)通報(bào),2009(10):15-19,25.
[ 14 ] 張晶紅,那杰. 植物逆境脅迫耐受性啟動(dòng)子的研究進(jìn)展[J].?植物生理學(xué)報(bào),2014,50(06):707-710.
[ 15 ] Yamaguchi SK,Koisumi M,Urao S,et al. Molecular cloning?and characterization of 9 cDNAs genes that are responsive to?desiccation in Arabidopsis thaliana: sequence analysis of one?cDNA clone that encodes a putative transmembrane channel?protein[J]. Plant Cell Physiol,1992(33):217-224.
[ 16 ] Bihmidine S,Lin J,Stone JM,et al. Activity of Arabidopsis?RD29A and RD29B promoter elements in soybean under water?stress[J]. Planta,2013,237 (01):55-64.
[ 17 ] 馬進(jìn),鄭鋼,裴翠明,等. 南方型紫花苜蓿根系鹽脅迫應(yīng)答轉(zhuǎn)錄因子鑒定與分析[J]. 浙江農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(bào),2016,33 (02):201-208.