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        不同干燥法對微生物溶藻劑溶解銅綠微囊藻能力的影響

        2018-08-16 03:02:12況世昌龍興權(quán)歐陽潮李筱雯
        中國資源綜合利用 2018年7期
        關(guān)鍵詞:藻液溶藻制粒

        況世昌,龍興權(quán),歐陽潮,吳 貝,李筱雯

        (湖北華大瑞爾科技有限公司,湖北 荊州 434000)

        近年來,我國人口增長、城市規(guī)模擴大等人類活動加劇,加快了有機物和氮磷等營養(yǎng)元素進(jìn)入河流和湖泊的速度,導(dǎo)致富營養(yǎng)化問題日益突出。富營養(yǎng)化導(dǎo)致水體藻類呈爆發(fā)性生長。在國內(nèi)外多種除藻方法中,生物防治方法被認(rèn)為是主要的藍(lán)藻防治方法。其中,微生物控藻技術(shù)又被認(rèn)為是最具前途且發(fā)展迅速的控藻方法之一,對藻類生物平衡的維持起到重要作用。朱葉飛等從蘆葦池中分離得到2株溶藻效果明顯的溶藻菌SS和CH-P,研究溶藻機理發(fā)現(xiàn),溶藻菌SS與藻細(xì)胞直接接觸溶藻,溶藻菌CH-P通過分泌物質(zhì)來間接溶藻[1]。然而,國內(nèi)外抑藻菌的應(yīng)用研究多處于實驗室研究階段,尚未制成產(chǎn)品應(yīng)用于河流和湖泊藍(lán)藻水華治理。

        本文以溶藻菌RIK為種子菌,發(fā)酵后采用離心噴霧干燥法和沸騰制粒干燥法制得2種微生物溶藻劑,研究不同干燥法對微生物溶藻劑溶解銅綠微囊藻的影響,為微生物溶藻劑實現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)提供試驗依據(jù)。

        1 材料和方法

        1.1 材料

        溶藻菌RIK由湖北華大瑞爾科技有限公司保藏提供;銅綠微囊藻(microcystis aeruginosa,F(xiàn)ACHB905)為實驗室培養(yǎng)純藻種,購自中科院水生生物研究所;BG11藻類改良培養(yǎng)基,方法可以參照晉利的相關(guān)研究[2]。

        1.2 微生物溶藻劑的制備

        以溶藻菌RIK為種子菌,接入發(fā)酵培養(yǎng)基中,溫度保持在35~37℃,培養(yǎng)36 h,結(jié)束發(fā)酵,發(fā)酵液分為2份。

        微生物溶藻劑A:1份發(fā)酵液采用離心噴霧干燥,活菌數(shù)含量為200億個/g,由湖北華大瑞爾科技有限公司生產(chǎn)提供;微生物溶藻劑B:另1份發(fā)酵液采用沸騰制粒干燥,活菌數(shù)含量為100億個/g,由湖北華大瑞爾科技有限公司生產(chǎn)提供。

        1.3 微生物溶藻劑去除銅綠微囊藻試驗方法

        將銅綠微囊藻接種于BG11改良培養(yǎng)基,培養(yǎng)至生長對數(shù)期。分別取0.030 g、0.003 g微生物溶藻劑A,0.060 g、0.006 g微生物溶藻劑B加入到100 mL上述藻液中,使溶藻菌含量分別達(dá)到6×106個/mL、6×105個/mL,每組設(shè)三個重復(fù)及空白對照組。以對照組為參照,試驗后觀察拍照記錄試驗結(jié)果,檢測藻細(xì)胞葉綠素a含量變化、超氧化物歧化酶(SOD)活性變化、丙二醛(MDA)含量變化。

        1.4 檢測分析方法

        藻細(xì)胞葉綠素a檢測,方法參考朱葉飛的相關(guān)研究[1];超氧化物歧化酶活性檢測,方法參考晉利的相關(guān)研究[2];丙二醛含量檢測,方法參考晉利的相關(guān)研究[2]。

        2 結(jié)果

        2.1 微生物溶藻劑溶解銅綠微囊藻的效果圖

        試驗9 d后,觀察拍照各瓶銅綠微囊藻的生長情況。對照組藻液呈綠色,與試驗前顏色變化不明顯。添加微生物溶藻劑A的兩試驗組藻液顏色均呈暗綠色,而添加微生物溶藻劑B的試驗組呈黃色,表明微生物溶藻劑B的溶藻抑藻能力強于微生物溶藻劑A。

        2.2 微生物溶藻劑對銅綠微囊藻葉綠素的影響

        如圖1所示,加入微生物溶藻劑A的兩試驗組,直至試驗后第9 d兩組的葉綠素含量與0 d相比無變化。藻液中加入微生物溶藻劑B,試驗后第9 d,兩組葉綠素含量較0 d分別下降94.95%、92.5%,藻液完全黃化。而對照組的藻液葉綠素含量呈上升趨勢。

        2.3 微生物溶藻劑對銅綠微囊藻抗氧化系統(tǒng)的影響

        試驗0 d,試驗各組的SOD活性與MDA含量均與對照組相當(dāng),如圖2、圖3所示。按照試驗方案,分別加入不同量的微生物溶藻劑A和B。試驗結(jié)束,微生物溶藻劑A對銅綠微囊藻SOD活性影響不顯著。而微生物溶藻劑B對SOD活性影響顯著,處理3 d后,分別增加257%、256%,處理9 d后,SOD活性顯著下降,但仍高于對照組(見圖2)。從圖3可見,隨著微生物溶藻劑B處理時間的延長,銅綠微囊藻MDA含量也不斷增加,處理9 d后,微生物溶藻劑B試驗組MDA含量分別增加383.01%、381.1%。而微生物溶藻劑A對MDA的影響不顯著。

        3 討論

        溶藻細(xì)菌的溶藻作用方式一般分為2類:直接溶藻和間接溶藻;直接溶藻是細(xì)菌與藻細(xì)胞直接接觸,破壞藻細(xì)胞結(jié)構(gòu);間接溶藻是通過分泌胞外溶藻物質(zhì)或與藻細(xì)胞競爭營養(yǎng)物質(zhì)等方式溶藻。牛丹丹等從池塘中分離一株溶藻細(xì)菌YZ,研究發(fā)現(xiàn),按10%的體積比向藻液中接入YZ無菌濾液溶藻效果最佳,溶藻機理研究表明YZ分泌親酯性溶藻活性物質(zhì),為間接性溶藻[3]。本試驗結(jié)果表明微生物溶藻劑B可以有效去除銅綠微囊藻,使用微生物溶藻劑B第9 d,可使銅綠微囊藻葉綠素含量較0 d分別下降94.95%、92.5%,藻液完全黃化;而觀察微生物溶藻劑A溶藻能力不足。動植物在生長代謝過程中受到生理性或非生理性損傷時細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生大量的氧自由基,造成極大的細(xì)胞毒害,SOD是第一參與氧自由基清除反應(yīng)的保護酶[4]。SOD的酶活高低反映出銅綠微囊藻的損失程度。MDA含量是生物細(xì)胞膜脂過氧化的重要指標(biāo),表明細(xì)胞膜被破壞程度[5]。

        圖1 微生物溶藻劑對銅綠微囊藻葉綠素的影響

        圖2 微生物溶藻劑對銅綠微囊藻SOD活性的影響

        圖3 微生物溶藻劑對銅綠微囊藻丙二醛的影響

        晉利等研究溶藻細(xì)菌J1對銅綠微囊藻抗氧化系統(tǒng)的影響,結(jié)果表明用J1菌株無菌濾液作用2 d后,相比對照組,SOD酶活顯著升高,試驗9 d后,SOD酶活迅速下降,僅為試驗第2 d酶活的15.53%;而試驗組MDA含量在試驗過程中逐步增加,9 d后MDA含量高對照組150%[2]。從本試驗結(jié)果可知,藻液中加入不同量微生物溶藻劑B,SOD酶活隨著試驗進(jìn)行在3 d達(dá)到最高,分別比對照組增加257%、256%,在試驗第9天下降;MDA含量在試驗中呈持續(xù)上升趨勢,9 d后比對照組增加383.01%、381.1%。而微生物溶藻劑A對銅綠微囊藻SOD酶活和MDA含量影響不顯著,結(jié)果表明,微生物溶藻劑B具有溶藻作用,而微生物溶藻劑A無溶藻活性。兩種微生物溶藻劑在溶藻作用上的巨大差異,可能與溶藻劑不同的干燥方法有關(guān)。

        離心噴霧干燥法是采用霧化器將料液分散為細(xì)小霧珠,在噴霧干燥器內(nèi)直接用熱干燥介質(zhì)(通常為熱空氣)將細(xì)小霧珠干燥,并使用旋風(fēng)分離器等將干燥介質(zhì)分離而獲得干燥產(chǎn)品的一種干燥方法,該法進(jìn)風(fēng)溫度為220~350℃,出風(fēng)溫度為80~90℃[6]。本試驗中,微生物溶藻劑A采用離心噴霧干燥法制得,進(jìn)風(fēng)溫度設(shè)置為230℃,出風(fēng)溫度為80℃。沸騰制粒干燥法的原理是把輔料裝入容器中,從床層下部通過篩板吹入適宜的氣流,使物料在流化狀態(tài)下混合均勻,然后開始均勻噴入霧化液體(作為黏合劑),物料開始聚結(jié)成粒[7]。唐雪梅等在研究以水為黏合劑制粒時,發(fā)現(xiàn)進(jìn)風(fēng)溫度113~116℃,出風(fēng)溫度56~58℃制得中藥顆粒性狀好且質(zhì)量穩(wěn)定[8]。本試驗中微生物溶藻劑B采用沸騰制粒干燥法干燥,進(jìn)風(fēng)溫度為85~110℃,出風(fēng)溫度50~60℃。本試驗中沸騰制粒干燥法的進(jìn)出風(fēng)溫度均低于離心噴霧干燥,微生物溶藻劑A的使用終溶度與微生物溶藻劑B相同,溶藻能力弱于微生物溶藻劑B,故而判斷溶藻菌RIK分泌溶藻物質(zhì)間接溶藻,同時溶藻物質(zhì)對溫度敏感。

        4 結(jié)論

        低溫沸騰制粒干燥制得的微生物溶藻劑B溶藻能力優(yōu)于高溫離心噴霧干燥制得的微生物溶藻劑A;溶藻菌RIK通過分泌溶藻物質(zhì)間接溶藻,同時溶藻物質(zhì)對溫度敏感。

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