雷慶子,王博,堵國(guó)成,方芳*
1(江南大學(xué) 生物工程學(xué)院,江蘇 無(wú)錫,214122)2(工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無(wú)錫,214122 ) 3(糖化學(xué)與生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無(wú)錫,214122 )
氨基甲酸乙酯(ethyl carbamate,EC)是一種存在于發(fā)酵食品中的2A類致癌物,具有遺傳毒性,可導(dǎo)致肺腫瘤、淋巴癌、肝癌和皮膚癌[1-2]。EC曾被用作抗腫瘤藥物,由于具有致癌性,現(xiàn)已停止臨床使用[3]。攝入體內(nèi)的EC經(jīng)細(xì)胞色素P450的羥基化作用和氧化作用生成可損傷DNA的8-羥基-脫氧鳥(niǎo)苷和乙烯基-氨基-甲酸酯環(huán)氧化物,通過(guò)破壞DNA結(jié)構(gòu)引發(fā)癌變[4-6]。
發(fā)酵食品中形成EC的主要前體包括氰化物、氨甲酰磷酸、尿素和瓜氨酸[7]。醬油生產(chǎn)過(guò)程中容易積累有害物氨基甲酸乙酯,這種現(xiàn)象在高鹽稀態(tài)法發(fā)酵生產(chǎn)醬油的過(guò)程中尤為顯著[8-9]。高鹽稀態(tài)醬油中,EC的主要前體是瓜氨酸,由乳酸菌通過(guò)精氨酸脫亞氨酶途徑(arginine deiminase pathway,簡(jiǎn)稱ADI途徑)代謝精氨酸生成[10-14]。ADI途徑包括3個(gè)關(guān)鍵酶:精氨酸脫亞氨酶(arginine deiminase, ADI)、鳥(niǎo)氨酸轉(zhuǎn)氨甲酰酶(omithine transcarbamylase, OTC)和氨基甲酰激酶(carbamate kinase, CK),分別由arcA、arcB、arcC基因編碼[15-16]。由于醬油發(fā)酵是一個(gè)混菌發(fā)酵的食品體系,生產(chǎn)上不允許使用基因工程菌或用基因工程手段改造生產(chǎn)用菌株。通過(guò)內(nèi)源微生物干預(yù)是實(shí)現(xiàn)控制和減少醬油中EC及其前體的有效措施。
尋找來(lái)源于醬醪微生物體系并可利用精氨酸且不積累瓜氨酸的菌株,通過(guò)在發(fā)酵過(guò)程中強(qiáng)化這一菌株來(lái)降低醬油中的EC前體瓜氨酸,可為建立消除食品混菌發(fā)酵體系中的有害微生物代謝物的方法提供研究基礎(chǔ)和理論支持。嗜鹽四聯(lián)球菌(Tetragenococcushalophilus)是存在于醬油、泰國(guó)魚(yú)醬、果汁等高鹽或高糖環(huán)境中的一類乳酸菌[17-19]。它具有提升食品風(fēng)味、改善食品品質(zhì)的功能[20-21]。已有研究表明,來(lái)源于醬醪的嗜鹽四聯(lián)球菌R23可利用醬醪中的精氨酸和瓜氨酸,從而減少EC前體,起到控制EC含量的作用[22]。然而,體系中葡萄糖和精氨酸含量對(duì)嗜鹽四聯(lián)球菌利用或積累瓜氨酸均有顯著影響:當(dāng)體系中葡萄糖和精氨酸含量增加時(shí),嗜鹽四聯(lián)球菌利用精氨酸和瓜氨酸能力顯著下降[22-23]。這說(shuō)明,嗜鹽四聯(lián)球菌用于醬油發(fā)酵時(shí),其精氨酸和瓜氨酸利用能力受環(huán)境因素制約。因此,通過(guò)誘變育種的方法增強(qiáng)嗜鹽四聯(lián)球菌利用精氨酸和瓜氨酸的能力,對(duì)于發(fā)展醬油產(chǎn)業(yè)、控制或降低醬油中EC含量、提高發(fā)酵食品的安全性具有重要意義。
嗜鹽四聯(lián)球菌(Tetragenococcushalophilus)R23,分離自高鹽稀態(tài)醬油的醬醪,保藏于中國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心(保藏編號(hào):CCTCCNo:M2013480)。
嗜鹽四聯(lián)球菌培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨10,MnSO40.05,乙酸鈉5,MgSO40.2,蔗糖10,牛肉膏5,檸檬酸三銨2,葡萄糖 10,吐溫80 1,酵母粉4,K2HPO42,NaCl 100,pH 7.2。
初篩培養(yǎng)基(g/L):酵母粉5,吐溫80 1 ,MgSO40.2 ,蛋白胨5 ,MnSO40.05 ,葡萄糖0.5,F(xiàn)eSO40.4,檸檬酸三胺2,牛肉膏5,CaCO30.1,NaCl 100 ,吡哆醛-5-磷酸0.05,K2HPO42,瓜氨酸0.5,精氨酸3~4,pH 5.5。
復(fù)篩培養(yǎng)基(g/L):酵母粉5,葡萄糖0.5,MgSO40.2,牛肉膏5,MnSO40.05, 蛋白胨5,F(xiàn)eSO40.4,檸檬酸三胺2,吐溫80 1,CaCO30.1,吡哆醛-5-磷酸0.05,K2HPO42,NaCl 180,瓜氨酸0.5,精氨酸3~5,pH 5.5。
氨基酸利用培養(yǎng)基(g/L):酵母膏5,NaCl 180,葡萄糖0.5,吐溫80 1,牛肉膏5,MgSO40.2,蛋白胨5,MnSO40.05,F(xiàn)eSO40.4,檸檬酸三胺 2,CaCO30.1,吡哆醛-5-磷酸0.05,K2HPO42,瓜氨酸 0.5,精氨酸5,pH 5.5。
色譜純甲醇、瓜氨酸、色譜純乙腈、分析純?nèi)纫宜?、鳥(niǎo)氨酸、氨基酸標(biāo)準(zhǔn)樣品、四氫呋喃、精氨酸購(gòu)自上海生工生物工程股份有限公司。用于二乙酰一肟-氨基硫脲比色法顯色反應(yīng)的試劑如文獻(xiàn)所述[24-25]。培養(yǎng)細(xì)胞/細(xì)菌總RNA提取試劑盒(DP430),反轉(zhuǎn)錄試劑盒(FastQuant RT Kit (With gDNase)(KR106))購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司。氨測(cè)定試劑盒(100M6204)購(gòu)自SIGMA公司。
將嗜鹽四聯(lián)球菌R23培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,離心收集菌體,用磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)洗滌3次后懸浮菌體,分別進(jìn)行紫外誘變和等離子誘變。
(1)紫外誘變
將菌液置于15 W紫外燈下30 cm處進(jìn)行紫外誘變,誘變時(shí)間分別為0、20、30、60、90、100、120 s。照射后菌液置于避光處?kù)o置培養(yǎng)30 min,避光稀釋涂平板,于30 ℃恒溫避光培養(yǎng)3 d。根據(jù)誘變致死率繪制誘變致死率曲線,選擇致死率在90%左右的誘變條件,確定為:距15 W紫外燈30 cm處、照射2 min。
(2)等離子誘變
取10 μL的菌懸液滴加在無(wú)菌載玻片上,用常壓室溫等離子體(ARTP)進(jìn)行等離子誘變,在功率100 W,通氣量為10 SLM條件下分別誘變0、1、3、5、7、10 s,然后轉(zhuǎn)移至含1 mL生理鹽水EP管中,將樣品梯度稀釋后涂布于嗜鹽四聯(lián)球菌培養(yǎng)基平板上,30 ℃培養(yǎng)3 d。根據(jù)存活率繪制誘變致死率曲線,選擇致死率在95%左右的誘變劑量,確定誘變條件為:在功率100 W、通氣量為10 SLM條件下照射3 s。
(1)高通量轉(zhuǎn)接培養(yǎng):挑取突變株單菌落,接種至分別含有1 mL,3、3.5、4 g/L精氨酸初篩培養(yǎng)基的96深孔板中,30 ℃培養(yǎng)5 d。
(2)初篩:利用二乙酰一肟-氨基硫脲比色法測(cè)定瓜氨酸含量[26],進(jìn)行誘變菌株初篩,利用酶標(biāo)儀測(cè)定溶液530 nm處吸光值(OD530),以未進(jìn)行誘變育種的嗜鹽四聯(lián)球菌R23的培養(yǎng)基比色測(cè)定吸光值作為對(duì)照組,選擇吸光值更小的突變株進(jìn)行復(fù)篩。
(3)復(fù)篩:將初篩得到的菌株接種至有1 mL復(fù)篩培養(yǎng)基的深96孔板中,30 ℃靜置培養(yǎng)5 d,離心,利用二乙酰一肟-氨基硫脲比色法分別測(cè)得在530 nm處吸光值(OD530),以嗜鹽四聯(lián)球菌R23的培養(yǎng)基比色測(cè)定吸光值作為對(duì)照,選擇吸光值較其更小的突變株作為復(fù)篩菌株,并利用高效液相色譜法(HPLC)測(cè)定復(fù)篩菌株培養(yǎng)體系中氨基酸含量,得到優(yōu)勢(shì)突變株。
利用HPLC測(cè)定體系中游離氨基酸的含量[26]。測(cè)定時(shí)取 1 mL菌液,10 000 r/min離心5 min,取上清液。用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%的三氯乙酸將其稀釋5倍,用濾膜(0.22 μm)過(guò)濾稀釋液至液相瓶中,用HPLC測(cè)定濾液中瓜氨酸、鳥(niǎo)氨酸和精氨酸含量。測(cè)定條件為:色譜柱 ODS-2 HYPERSIL(250 mm×4.6 mm,5 μm),流速:1 mL/min。檢測(cè)器為 VWD 紫外檢測(cè)器,柱溫 40 ℃,檢測(cè)波長(zhǎng)為 338 nm,分離時(shí)間 38 min[10]。流動(dòng)相 A (1 L):無(wú)水乙酸鈉 5 g,超純水 1 L,三乙胺 200 μL,四氫呋喃5 mL, pH 7.2。流動(dòng)相 B (1 L):無(wú)水乙酸鈉 5 g,超純水200 mL,甲醇 400 mL,乙腈 400 mL, pH 7.2。
將突變株和野生菌株R23接種至嗜鹽四聯(lián)球菌培養(yǎng)基,30 ℃靜置培養(yǎng)3 d,離心收集菌體并用磷酸鹽緩沖液(pH7.0)洗滌??疾炱咸烟菨舛取囟纫约搬u油乙醇發(fā)酵時(shí)期環(huán)境因素對(duì)突變株利用精氨酸和瓜氨酸能力的影響時(shí),菌體再用相應(yīng)氨基酸利用培養(yǎng)基垂懸,在30 ℃(考察溫度影響在設(shè)定溫度下培養(yǎng))靜置培養(yǎng)5 d,測(cè)定精氨酸和瓜氨酸的消耗量。
粗酶液的制備:取30 mL對(duì)數(shù)生長(zhǎng)后期嗜鹽四聯(lián)球菌菌液離心收集菌體,用磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)洗滌后加入等體積的氨基酸利用培養(yǎng)基,30 ℃培養(yǎng)5 h,4 500 r/min離心 5 min 收集菌體。用磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)洗滌并垂懸菌體,破壁取上清即得粗酶液。
(1)精氨酸脫亞胺酶(ADI)酶活的測(cè)定
在5 mL的EP管中加入150 μL的50 mmol/L精氨酸、2.3 mL的50 mmol/L磷酸鹽緩沖液(pH7.0)和50 μL粗酶液,37 ℃水浴30 min后用5%的三氯乙酸終止反應(yīng),對(duì)照用50 mmol/L磷酸鹽緩沖液(pH7.0)代替粗酶液。用高效液相色譜法測(cè)定反應(yīng)液中瓜氨酸含量,計(jì)算ADI酶活(ADI 酶活為稀釋倍數(shù)乘以單位時(shí)間內(nèi)轉(zhuǎn)化生成的瓜氨酸含量)。
(2)鳥(niǎo)氨酸轉(zhuǎn)氨酶(OTC)酶活的測(cè)定
在5 mL的EP管中加入160 μL的 50 mmol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)、40 μL的25 mmol/L鳥(niǎo)氨酸溶液、150 μL的133 mmol/L 氨甲酰磷酸溶液、240 μL的粗酶液和600 μL的超純水,37 ℃水浴15 min后用5%的三氯乙酸終止反應(yīng),對(duì)照用50 mmol/L磷酸鹽緩沖液(pH7.0)代替粗酶液。用高效液相色譜法測(cè)定反應(yīng)液中瓜氨酸含量,計(jì)算 OTC 酶活(OTC 酶活為稀釋倍數(shù)乘以單位時(shí)間內(nèi)轉(zhuǎn)化生成的瓜氨酸含量)。
(3)氨基甲酸酯激酶(CK)酶活的測(cè)定
在1.5 mL的EP管中加入160 μL 的50 mmol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)、200 μL的73 mmol/L的MgCl2溶液以及200 μL的50 mmol/L ADP,混勻后放置 10 min,加入200 μL的133 mmol/L氨甲酰磷酸溶液,混勻后繼續(xù)放置 10 min,向混合液中加入100 μL粗酶液,37 ℃水浴15 min后用5%的三氯乙酸終止反應(yīng),對(duì)照用50 mmol/L磷酸鹽緩沖液(pH7.0)代替粗酶液。將反應(yīng)液稀釋一定倍數(shù)后,按照氨測(cè)定試劑盒(SIGMA公司)中的測(cè)定方法測(cè)定CK酶活(CK酶活為稀釋倍數(shù)乘以單位時(shí)間內(nèi)轉(zhuǎn)化生成的NH3含量)。
將嗜鹽四聯(lián)球菌培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,離心收集菌體,用磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)洗滌3遍后分別垂懸于含4 g/L和5 g/L精氨酸的氨基酸利用培養(yǎng)基中,30 ℃培養(yǎng)4 h。低速離心獲得菌體,與2 mL RNA 穩(wěn)定劑混合,-80 ℃保藏。采用液氮研磨的方式對(duì)上述獲得的菌體進(jìn)行破壁。用培養(yǎng)細(xì)胞/細(xì)菌總RNA提取試劑盒(天根生化科技(北京)有限公司)提取RNA并用反轉(zhuǎn)錄試劑盒(FastQuant RT Kit (With gDNase) (天根生化科技(北京)有限公司)制備cDNA。qRT-PCR使用的引物如表1所示,選擇16S rRNA作為內(nèi)參基因。使用2-ΔΔCt的方法進(jìn)行轉(zhuǎn)錄水平分析[27]。
表1 用于實(shí)時(shí)定量PCR的引物Table 1 Primers for qRT-PCR
嗜鹽四聯(lián)球菌R23在精氨酸質(zhì)量濃度低于3 g/L時(shí)可利用醬醪中的精氨酸且不積累EC前體瓜氨酸,但是當(dāng)精氨酸含量高于3 g/L時(shí),體系中瓜氨酸開(kāi)始積累[22]。為獲得精氨酸和瓜氨酸利用能力提高的菌株,通過(guò)誘變嗜鹽四聯(lián)球菌R23,共得到紫外誘變突變株386株,等離子誘變突變株237株。采用二乙酰-肟-氨基硫脲比色法確定瓜氨酸相對(duì)含量的篩選方法,用于突變株的初篩(圖1)[25]。
圖1 嗜鹽四聯(lián)球菌誘變及突變株篩選Fig.1 Mutagenesis of Tetragenococcus halophilus and screening of mutants
通過(guò)初篩和復(fù)篩,獲得了4株在精氨酸質(zhì)量濃度高于3 g/L時(shí),瓜氨酸積累少于出發(fā)菌株R23的突變株,分別命名為1-A2,1-A10,5-H1和3-H9(圖2)。
圖2 嗜鹽四聯(lián)球菌利用精氨酸和積累瓜氨酸能力分析Fig.2 Conversion of citrulline from arginine by T. halophilus 1-A2,1-A10,5-H1 and 3-H9,mutants of T. halophilus R23
為進(jìn)一步確定突變株利用精氨酸和瓜氨酸的能力,以及尋找具有有效降低醬油中EC含量潛力的菌株,分別對(duì)4株嗜鹽四聯(lián)球菌突變株利用精氨酸和瓜氨酸的能力進(jìn)行了分析和比較(圖3)。
圖3 嗜鹽四聯(lián)球菌利用精氨酸和瓜氨酸的能力比較Fig.3 Utilization of arginine and citrulline by T. halophilus 1-A2,1-A10,5-H1 and 3-H9,mutants of T. halophilus R23
由圖3可以看出,當(dāng)體系中含有0.5 g/L瓜氨酸和3、4、5 g/L精氨酸時(shí),突變株3-H9利用精氨酸能力最高,比R23提高了0.6~2.49倍。突變株3-H9利用瓜氨酸能力也比R23提高了0.74~56倍。突變株5-H1精氨酸利用能力下降,瓜氨酸利用能力沒(méi)有顯著提高。突變株1-H10和1-A2利用精氨酸的能力比R23略有提高,但對(duì)瓜氨酸的利用能力遠(yuǎn)低于突變株3-H9。因此,選擇突變株3-H9進(jìn)行后續(xù)研究。
ADI途徑是細(xì)菌獲得能量的一條輔助代謝途徑。當(dāng)培養(yǎng)體系中還原糖充足時(shí)菌株優(yōu)先利用還原糖供能,因此ADI途徑代謝通量會(huì)受到還原糖的抑制[10]。由于乙醇和游離脂肪酸的協(xié)同作用,細(xì)菌通過(guò)ADI途徑代謝精氨酸時(shí),會(huì)積累瓜氨酸,對(duì)EC前體含量的有效控制時(shí)期為醬油發(fā)酵前期,即乳酸發(fā)酵時(shí)期[28]。在醬油發(fā)酵前期(1~7 d),醬醪中葡萄糖的質(zhì)量濃度為0~7 g/L[29]。通過(guò)考察葡萄糖濃度對(duì)突變株利用精氨酸、瓜氨酸能力的影響發(fā)現(xiàn),葡萄糖質(zhì)量濃度大于2 g/L時(shí)野生菌株R23已不能消耗精氨酸,而突變株3-H9在葡萄糖質(zhì)量濃度為7 g/L時(shí)仍能利用精氨酸。突變株3-H9利用精氨酸的能力在葡萄糖質(zhì)量濃度為2、3、5、7 g/L時(shí),分別比R23提高 5.05、5.62、3.41、1.22 g/L(表2)。這說(shuō)明,突變株3-H9精氨酸代謝受葡萄糖抑制作用被減弱,具有進(jìn)一步減控醬油中EC前體的潛力。
表2 葡萄糖對(duì)嗜鹽四聯(lián)球菌利用精氨酸和瓜氨酸能力的影響Table 2 Effects of glucose concentration on arginine and citrulline utilization of T. halophilus mutants
注: ΔArg為精氨酸消耗量;ΔCit為瓜氨酸消耗量; ΔOrn為鳥(niǎo)氨酸生成量。
高鹽稀態(tài)醬油發(fā)酵過(guò)程前期溫度較低,為了研究溫度對(duì)嗜鹽四聯(lián)球菌突變株利用精氨酸能力的影響,考察了突變株3-H9在20、25、30 ℃條件下利用精氨酸能力。由表3可知,溫度低于30 ℃時(shí),突變株3-H9和野生菌株R23利用瓜氨酸和生成鳥(niǎo)氨酸的能力均有所減弱。較低溫培養(yǎng)條件下,突變株3-H9利用精氨酸的能力高于野生菌株R23。在20、25 ℃培養(yǎng)時(shí),3-H9利用精氨酸能力分別比R23提高57.7%和47.8%(圖4)。
表3 溫度對(duì)突變株利用瓜氨酸能力的影響Table 3 Effects of temperature on the use of citrulline in mutant strains
注:ΔCit為瓜氨酸消耗量(g/L); ΔOrn為鳥(niǎo)氨酸生成量(g/L)。
圖4 溫度對(duì)嗜鹽四聯(lián)球菌利用精氨酸的影響Fig.4 Effect of temperature on arginine utilization of T. halophilus
醬油發(fā)酵過(guò)程中,瓜氨酸的積累有2個(gè)時(shí)期:一是乳酸發(fā)酵時(shí)期,占主導(dǎo)地位的微生物是乳酸菌(主要為魏斯氏菌屬和足球菌屬的菌株),二是乙醇發(fā)酵時(shí)期,葡萄球菌屬、微球菌屬和芽孢桿菌屬是優(yōu)勢(shì)菌群[28,30-31]。乙醇發(fā)酵時(shí)期醬醪中含有的乙醇和游離脂肪酸是導(dǎo)致細(xì)菌利用精氨酸積累瓜氨酸的主要因素。因此,我們考察了突變株3-H9在含有2%的乙醇與0.25%游離脂肪酸(模擬醬油乙醇發(fā)酵時(shí)期)的培養(yǎng)體系中利用精氨酸的情況。由表4可知,在此條件下,野生菌株R23不利用精氨酸,而突變株3-H9仍可利用精氨酸。由于突變株3-H9在這一培養(yǎng)條件下利用精氨酸積累了瓜氨酸,因此它更適用于在醬油乳酸發(fā)酵時(shí)期發(fā)揮作用。
表4 乙醇和游離脂肪酸對(duì)嗜鹽四聯(lián)球菌利用精氨酸和瓜氨酸能力的影響Table 4 Effect of ethanol and fatty acids on arginine and citrulline utilization of T. halophilus
注: ΔArg為精氨酸消耗量;ΔCit為瓜氨酸消耗量; ΔOrn為鳥(niǎo)氨酸生成量。
細(xì)菌對(duì)精氨酸的利用以及瓜氨酸的生成和消耗與ADI途徑中3種關(guān)鍵酶:精氨酸脫亞胺酶(ADI)、鳥(niǎo)氨酸轉(zhuǎn)氨酶(OTC)和鳥(niǎo)氨酸氨基甲酸激酶(CK)密切相關(guān)。由表5結(jié)果可知,突變株3-H9較R23相比,ADI酶、OTC酶和CK酶活性分別提高了27%、38%和0.4%,說(shuō)明突變株3-H9利用精氨酸和瓜氨酸的能力都比出發(fā)菌株高。
表5 突變株及野生菌株中 ADI、OTC、CK酶酶活分析Table 5 Activity of ADI,OTC,CK in mutant and wild strains
ADI酶、OTC酶和CK酶是分別由arcA、arcB和arcC基因編碼。為了探明突變株3-H9利用精氨酸和瓜氨酸能力及調(diào)控水平變化的原因,對(duì)突變株3-H9和野生菌株R23arc基因簇轉(zhuǎn)錄水平進(jìn)行了比較分析。由圖5可知,突變株3-H9中arcA、arcB和arcC轉(zhuǎn)錄水平分別比R23提高了7.9倍、9.5倍和7.8倍。在ADI途徑中,arcA編碼的ADI酶催化精氨酸向瓜氨酸轉(zhuǎn)化,arcB基因編碼的OTC酶催化瓜氨酸向鳥(niǎo)氨酸轉(zhuǎn)化。通過(guò)比較arcA與arcB基因表達(dá)水平可以得知該條件下ADI途徑產(chǎn)物是終產(chǎn)物鳥(niǎo)氨酸,還是含有中間產(chǎn)物瓜氨酸。此途徑中,若arcA/arcB大于1,表現(xiàn)為瓜氨酸積累,arcA/arcB小于1則表現(xiàn)為瓜氨酸利用。通過(guò)對(duì)突變株3-H9和野生菌株R23的arcA/arcB轉(zhuǎn)錄水平之比分析發(fā)現(xiàn):在4 g/L精氨酸濃度下,兩株菌arcA/arcB比值均小于1,均表現(xiàn)為利用瓜氨酸;當(dāng)精氨酸濃度為5 g/L時(shí),野生菌arcA/arcB>1,表現(xiàn)為積累瓜氨酸,而突變株3-H9arcA/arcB<1,表現(xiàn)為利用瓜氨酸(表6)。
圖5 ADI途徑相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄水平分析Fig.5 Transcriptional analysis of arc genes in T. halophilus
菌株精氨酸/(g·L-1)arcA/arcBR23450.756 71.099 63-H9450.564 80.906 8
本研究以對(duì)醬油風(fēng)味有強(qiáng)化作用的內(nèi)源微生物嗜鹽四聯(lián)球菌為出發(fā)菌株,通過(guò)等離子和紫外誘變的方法獲得了1株利用精氨酸和瓜氨酸能力顯著提高的嗜鹽四聯(lián)球菌突變株3-H9。該突變株具有減少醬油中氨基甲酸乙酯前體瓜氨酸的應(yīng)用潛力。研究結(jié)果提供了一種通過(guò)改造發(fā)酵食品體系中某一有益菌的氮源代謝方式來(lái)減少發(fā)酵食品中有害物的策略,可為控制或降低醬油中氨基甲酸乙酯及其前體提供理論依據(jù),對(duì)于提高嗜鹽四聯(lián)球菌的工業(yè)應(yīng)用性能以及發(fā)展醬油產(chǎn)業(yè),提高食品的安全性具有有利意義。