楊 麗,燕傳明,賀 卓,盛下放,何琳燕
(農(nóng)業(yè)部農(nóng)業(yè)環(huán)境微生物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,南京 210095)
我國(guó)人均耕地少,土壤重金屬污染嚴(yán)重影響蔬菜安全生產(chǎn),給人類健康造成威脅[1-2]。近年來(lái),珠三角和長(zhǎng)三角等地區(qū)均有菜地土壤重金屬污染超標(biāo)的報(bào)道,以Cd、Pb污染為主,葉菜類、根莖類和瓜果類蔬菜中Cd、Pb顯著超標(biāo)[3-4]。當(dāng)前,國(guó)內(nèi)外都在積極尋找有效治理土壤重金屬污染的方法,穩(wěn)定與提取成為重金屬污染土壤治理的主要思路。針對(duì)大面積中輕度重金屬污染的農(nóng)田土壤,起固定重金屬作用的有機(jī)、無(wú)機(jī)修復(fù)劑受到廣泛關(guān)注[5-7]。這些修復(fù)劑主要包括硅鈣物質(zhì)、含磷材料、有機(jī)物料、黏土礦物、金屬及金屬氧化物等,但過(guò)多施用化學(xué)修復(fù)劑對(duì)土壤破壞大,可直接影響土壤的理化性質(zhì)和微量營(yíng)養(yǎng)元素的吸收[8-9]。
植物根際促生細(xì)菌(Plant growth-promoting rhizobacteria,PGPR)是自由生活在土壤或附生于植物根系的、一類可促進(jìn)植物生長(zhǎng)和礦質(zhì)營(yíng)養(yǎng)吸收利用的有益菌類[10]。植物根際促生細(xì)菌可以產(chǎn)生吲哚乙酸(Indole acetic acid,IAA)和鐵載體等促生物質(zhì)促進(jìn)植物生長(zhǎng)、提高植物對(duì)重金屬的耐受性,而植物能夠?yàn)楦缴奈⑸锾峁┥L(zhǎng)所需的空間、空氣和養(yǎng)分,有效增強(qiáng)根系微生物的活性[10-11]。一些植物根際促生細(xì)菌細(xì)胞壁含有-COOH、-NH2、-OH等官能團(tuán),能與重金屬離子配位絡(luò)合,同時(shí)細(xì)胞表面帶有大量的負(fù)電荷,能夠吸附土壤中的重金屬陽(yáng)離子,降低重金屬的遷移和轉(zhuǎn)化[12]。Park等[13]發(fā)現(xiàn)溶磷細(xì)菌Pantoea sp.CS2-B1和Enterobacter sp.SM1-B1在溶解磷礦粉的同時(shí)能固定土壤鉛元素。Wang等[14]發(fā)現(xiàn)菌株Q2-8降低蔬菜可食用部分的As含量(22%~50%),菌株Q2-13和Q3-11能夠降低蔬菜可食用部分Cd含量(21%~53%),主要原因是菌株能夠減少土壤中DTPA提取態(tài)Cd含量。Chen等[15]發(fā)現(xiàn)Neorhizobium huautlense T1-17菌株在重金屬重度污染土壤中能夠顯著促進(jìn)辣椒生長(zhǎng)、果實(shí)產(chǎn)量增加、顯著降低果實(shí)中Pb、Cd含量,但果實(shí)中Cd和Pb含量仍然遠(yuǎn)高于食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)。目前,關(guān)于植物促生細(xì)菌在阻控作物吸收重金屬方面的穩(wěn)定修復(fù)研究報(bào)道甚少,仍需進(jìn)一步研究。
辣椒富含維生素和礦物質(zhì),廣受大眾喜愛(ài),在世界各國(guó)普遍種植。農(nóng)田土壤重金屬污染的加劇,嚴(yán)重威脅了辣椒等蔬菜的質(zhì)量安全[16-17]。本研究從南京某礦區(qū)周邊污染農(nóng)田中篩選耐受Cd和Pb的植物促生細(xì)菌,探究植物促生細(xì)菌對(duì)辣椒生長(zhǎng)以及吸收重金屬Cd和Pb的影響,從而為利用PGPR來(lái)阻控蔬菜吸收重金屬的科學(xué)設(shè)想提供理論依據(jù)和試驗(yàn)基礎(chǔ)。
根際土壤樣品:采集南京市某礦區(qū)周邊農(nóng)田(32.17°N,118.96°E)中辣椒(Capsicum annuum)和圣女果(Lycopersicon esculentum)根際土壤。
LB培養(yǎng)基:胰蛋白胨10 g,酵母提取物5 g,NaCl 10 g,水1000 mL,固體培養(yǎng)基另加2%瓊脂。有氮培養(yǎng)基:蔗糖 10.0 g,(NH4)2SO41.0 g,K2HPO42.0 g,MgSO4·7H2O 0.5 g,NaCl 0.1 g,酵母膏 0.5 g,蒸餾水 1000 mL,pH 7.2。
供試蔬菜為辣椒(蘇椒5號(hào)博士王),購(gòu)買自江蘇省農(nóng)科院種子站。
供試土壤為南京市某礦區(qū)周邊農(nóng)田0~20 cm表層土壤,采集土樣后去除植物殘?bào)w,風(fēng)干,粉碎過(guò)5目篩,備用。土壤總 Cd 3.58±0.14 mg·kg-1,總 Pb 376.83±0.76 mg·kg-1,有機(jī)質(zhì) 9.30±0.31 g·kg-1,pH 6.13±0.2。育苗用的營(yíng)養(yǎng)基質(zhì)為常規(guī)品牌標(biāo)優(yōu)美,購(gòu)買于標(biāo)優(yōu)美生態(tài)工程股份公司,全氮 1.37 g·L-1,磷酐 0.79 g·L-1,氧化鉀 0.84 g·L-1,有機(jī)質(zhì)≥30%,N+P2O3+K2O≥3%,經(jīng)高溫高壓滅菌1 h處理后,備用。
采用系列稀釋涂布平板培養(yǎng)法在添加1 mg·L-1Cd(NO3)2的LB固體培養(yǎng)基上分離、純化植物根際Cd抗性細(xì)菌。稱取土樣1 g,放入盛有99 mL無(wú)菌水的錐形瓶中,充分振蕩。再放入85℃恒溫水浴鍋中水浴15 min,制成編號(hào)為10-2的土壤懸液。另取無(wú)菌水9 mL的試管5支分別編號(hào),吸取1 mL土壤懸液加到9 mL的無(wú)菌水試管中,混勻,依次稀釋后,涂布在添加 1 mg·L-1Cd(NO3)2的 LB 平板上。培養(yǎng) 72 h 后選取菌落數(shù)適當(dāng)?shù)钠桨?,隨機(jī)挑取長(zhǎng)勢(shì)良好的Cd抗性細(xì)菌單菌落,多次劃線分離純化,保存待用。
菌株產(chǎn)多糖能力測(cè)定采用苯酚-硫酸法[18],產(chǎn)吲哚乙酸(IAA)測(cè)定參考 Gordon[19]、Mayer[20]等的方法,鐵載體能力測(cè)定參考Schwyn[21]的方法,溶解無(wú)機(jī)磷能力測(cè)定參考Liu等[22]的方法。
將各菌株接種至LB液體培養(yǎng)液中培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期,參考顏?zhàn)臃f等人[23]的方法提取細(xì)菌的基因組DNA。以基因組DNA為模板,采用通用引物[24-25]27F:5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′和 1492R:5′-TACGGCTACCTTGTTACGACTT-3′進(jìn)行 PCR擴(kuò)增。PCR 反應(yīng)體系(50 μL):10×Buffer 5.0 μL,dNTPs 4.0 μL,27F 和 1492R 各 1.0 μL,重蒸水 38 μL,混合后加入 DNA 模板 0.5 μL,Taq 酶 0.5 μL。PCR 程序?yàn)椋?4℃,5 min預(yù)變性;94℃,1 min變性;52℃退火 60 s;72℃ 2 min;30個(gè)循環(huán);72℃延伸 10 min。將 16S rRNA基因擴(kuò)增產(chǎn)物送至南京金斯瑞生物科技有限公司測(cè)序。用BLAST軟件將所獲得序列與GenBank中已知的16S rRNA基因序列進(jìn)行比對(duì)分析構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。
將保存的菌株接到3 mL液體LB培養(yǎng)基中,30℃、150 r·min-1振蕩培養(yǎng) 16~20 h進(jìn)行活化,無(wú)菌操作條件下將發(fā)酵液稀釋至OD600值為1.0,按2%的接種量將菌液分別接種到單一濃度為7 mg·L-1的Cd2+[Cd(NO3)2]、14 mg·L-1的 Pb2+[Pb(NO3)2]和鎘鉛復(fù)合的LB液體培養(yǎng)基中,每組處理3個(gè)重復(fù),對(duì)照(CK)為不接菌處理。30℃、150 r·min-1振蕩培養(yǎng)24 h,10 000 r·min-1離心5 min取上清液。用ICP-OES測(cè)定上清液中的Cd和Pb濃度,重金屬的去除率按照下列公式計(jì)算:
去除率=(對(duì)照組上清液中金屬離子濃度-接菌組上清液中金屬離子濃度)/對(duì)照組上清液中金屬離子濃度×100%。
辣椒種子消毒處理后,均勻地灑在鋪有濕潤(rùn)無(wú)菌紗布的培養(yǎng)皿中,放置于30℃黑暗培養(yǎng)箱中催芽。挑選長(zhǎng)勢(shì)一致的露白種子播種于育苗盤,待幼苗長(zhǎng)出3片真葉后,挑選大小、長(zhǎng)勢(shì)一致的幼苗清洗根部。將供試菌株接種于有氮培養(yǎng)基中,30℃、150 r·min-1振蕩培養(yǎng) 16~20 h 至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,6000 r·min-1離心 10 min收集菌體,用無(wú)菌去離子水將菌體重懸,調(diào)節(jié)菌懸液濃度至OD600為1.0。將辣椒根部浸于上述菌液30 min后,移栽入滅菌營(yíng)養(yǎng)基質(zhì)育苗盤中,每穴定植1株,以無(wú)菌的有氮培養(yǎng)液浸根處理的辣椒幼苗為對(duì)照(CK),每處理組重復(fù)三株。放置溫室光照培養(yǎng),澆水管理,每穴澆水量一致。植物移栽2周后采樣,將整株辣椒從穴盤中取出,清水洗凈,吸水紙吸干,測(cè)量根長(zhǎng)、株高和鮮重。
盆栽試驗(yàn)在南京農(nóng)業(yè)大學(xué)牌樓試驗(yàn)基地日光溫室中進(jìn)行。將風(fēng)干過(guò)篩的重金屬污染農(nóng)田土壤裝入塑料盆缽中,每盆1.5 kg,在種植前3 d澆水保持田間持水量約60%[26]。選擇大小均勻、飽滿一致的辣椒種子,按1.6方法催芽、育苗、分別蘸根接種,每盆接種供試菌株菌懸液30 mL(2%接種量),以同量無(wú)菌培養(yǎng)基處理為對(duì)照(CK)。植物果實(shí)成熟后收獲。整個(gè)盆栽試驗(yàn)過(guò)程中,每天適量澆水(每盆缽等量澆水)以保證植物生長(zhǎng)所需要的水分。盆栽設(shè)置時(shí)間135 d,處理前2 d不澆水。
植物收獲處理時(shí),小心摘下植株上的果實(shí),松土,將植物從盆缽中取出,用去離子水將果實(shí)和根部洗凈,吸水紙吸干稱量鮮質(zhì)量,于80℃烘箱內(nèi)烘干至恒質(zhì)量,稱量干質(zhì)量。用粉碎機(jī)粉碎果實(shí)干樣,稱取干燥的樣品1 g于微波消解儀中進(jìn)行消解,同樣稱取根部干樣0.2 g于微波消解儀中進(jìn)行消解。用5%HNO3定容,采用ICP-OES測(cè)定消解液中Cd2+和Pb2+含量,換算出辣椒果實(shí)和根中的Cd和Pb含量,單位:mg·kg-1。
鎘或鉛的富集、轉(zhuǎn)移系數(shù)按下列公式計(jì)算:
富集系數(shù)(Bio-concentration Factor,BCF)=辣椒果實(shí)鎘或鉛含量(mg·kg-1)/土壤鎘或鉛含量(mg·kg-1)
轉(zhuǎn)移系數(shù)(Transfer Factor,TF)=辣椒果實(shí)鎘或鉛含量(mg·kg-1)/辣椒根部鎘或鉛含量(mg·kg-1)
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用 Office 2007、SPSS 19.0和 Origin8.5軟件進(jìn)行分析與作圖,差異顯著性采用ANOVA單因素方差分析,不同小寫字母代表多重比較差異性顯著(P<0.05)。
從南京某礦區(qū)周邊農(nóng)田辣椒和圣女果的根際土壤中分離純化到150株耐熱細(xì)菌,這些細(xì)菌都對(duì)1 mg·L-1Cd2+有抗性。進(jìn)一步測(cè)定菌株的生物學(xué)特性復(fù)篩獲得7株芽孢桿菌,編號(hào)分別為L(zhǎng)11、L15、L22、L24、L25、L44、L121。由表 1可以看出,這 7株芽孢桿菌都能分泌IAA、鐵載體和胞外多糖。這些菌株的IAA產(chǎn)量范圍為 1.64~51.02 mg·L-1,多糖產(chǎn)量范圍為0.43~1.90 g·L-1。菌株 L22、L24、L44 和 L121 能夠溶解磷酸鈣,在NBRIP培養(yǎng)基上有透明的溶磷圈產(chǎn)生。經(jīng)16S rRNA基因序列分析,L11、L15、L22和 L44與 B.megaterium的同源性達(dá)到99.9%,L24和L121與B.aryabhattai和B.velezensis的同源性分別為99.9%和100.0%,而L25與Lysinibacillus fusiformis的同源性為99.6%,系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系見(jiàn)圖1,由此將7株芽孢桿菌分別歸屬于 B.megaterium、B.aryabhattai、B.velezensis和L.fusiformis。
表1 供試菌株的植物促生特性和種屬Table1 Plant growth-promoting characteristics and species of the isolated bacteria
圖1 基于菌株部分16S rRNA基因序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)Figure1 Phylogenetic tree on the basis of partial 16S rRNA gene sequences of the isolated bacteria
由圖2A可知,在含7 mg·L-1Cd2+的LB培養(yǎng)液中,24 h時(shí)7株芽孢桿菌對(duì)Cd2+的去除率范圍為30.2%~36.4%,差異不顯著。在含14 mg·L-1Pb2+的LB培養(yǎng)液中,24 h時(shí)7株芽孢桿菌對(duì)Pb的去除率差異較大。菌株L121對(duì)Pb的去除率高達(dá)88.4%,而其他6株芽孢桿菌對(duì)溶液中Pb2+的去除率范圍在10.9%~25.6%,由圖2B可知,在復(fù)合Cd、Pb處理時(shí),24 h時(shí)菌株對(duì)Cd2+的去除率范圍為32.9%~39.2%,與單一Cd條件下的去除率相近。復(fù)合重金屬條件下菌株對(duì)Pb2+的去除率在4.3%~17.5%之間,與單一Pb條件下的去除率相比略有下降。結(jié)合圖2A、2B可知,在單一Pb2+處理和Cd、Pb復(fù)合處理時(shí)菌株L121對(duì)Pb2+的去除率從88.4%下降到9.6%,可能是菌株L121對(duì)Pb、Cd吸附的位點(diǎn)是相似或相近的,Cd2+的存在與Pb2+發(fā)生了競(jìng)爭(zhēng)作用而引起的[27-28]。
由圖3可知,不同菌株對(duì)辣椒的促生作用有差異。接種菌株L44的辣椒根長(zhǎng)、株高和鮮重?cái)?shù)值最高,比對(duì)照組分別顯著增加65.7%、20.6%和20.5%(P<0.05)。其次,接種菌株L11的辣椒根長(zhǎng)、株高和鮮重與CK相比顯著增加了42.4%、17.5%和17.4%(P<0.05);與CK相比,接種菌株L15組的辣椒根長(zhǎng)和株高分別顯著增加了19.0%和19.6%(P<0.05),但鮮重沒(méi)有增加。菌株L22、L24、L121對(duì)辣椒無(wú)促生作用,L25對(duì)辣椒根長(zhǎng)和鮮重有抑制作用。
由表2可知,與CK相比,7株供試菌株都能顯著降低辣椒果實(shí)中Cd含量,降低率范圍為21.8%~39.1%(P<0.05)。菌株 L22、L44、L121 處理的辣椒果實(shí)Cd含量為0.07 mg·kg-1,較接近食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)(GB 2762—2017)規(guī)定的 Cd 限量 0.05 mg·kg-1。轉(zhuǎn)移系數(shù)可以反映植物將重金屬?gòu)牡叵虏哭D(zhuǎn)移到地上部的能力大小。與CK相比,除L24處理之外,其余接菌處理均能使辣椒果實(shí)Cd轉(zhuǎn)移系數(shù)下降,其中接種菌株L22、L25、L44處理的辣椒果實(shí)Cd轉(zhuǎn)移系數(shù)分別顯著下降17.7%、27.6%和22.0%(P<0.05)。與CK相比,接菌處理的辣椒果實(shí)Cd富集系數(shù)顯著下降25.2%~40.6%。
與CK相比,除菌株L11之外,其余6株產(chǎn)芽孢細(xì)菌均能顯著降低辣椒果實(shí)中Pb的含量,降低率范圍為22.9%~81.3%(P<0.05)。接種菌株L44的辣椒果實(shí)中Pb含量為0.2 mg·kg-1,接近食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)(GB 2762—2017)規(guī)定的0.1 mg·kg-1Pb限量。與CK相比,除菌株L11之外,其余接種菌株的辣椒果實(shí)Pb轉(zhuǎn)移系數(shù)顯著降低22.2%~81.5%(P<0.05),果實(shí)Pb富集系數(shù)降低33.3%~66.7%。
相關(guān)性分析(表3)表明辣椒果實(shí)中Cd含量與Cd轉(zhuǎn)移系數(shù)、富集系數(shù)極顯著正相關(guān),Pb含量與Pb轉(zhuǎn)移系數(shù)、富集系數(shù)極顯著正相關(guān),說(shuō)明辣椒果實(shí)Cd、Pb的轉(zhuǎn)移系數(shù)和富集系數(shù)降低是辣椒果實(shí)中Cd和Pb含量減少的原因之一,接菌處理降低Cd、Pb轉(zhuǎn)移系數(shù)和富集系數(shù),有利于阻控辣椒果實(shí)中吸收Cd和Pb。
綜上所述,在所考察菌株中,接種菌株L44后辣椒果實(shí)的Cd和Pb含量分別降低至0.07 mg·kg-1和0.20 mg·kg-1,降低幅度分別為 39.1%和 81.3%,Cd、Pb轉(zhuǎn)移系數(shù)和富集系數(shù)均最低,說(shuō)明B.megaterium L44具有阻控辣椒吸收重金屬的潛在應(yīng)用價(jià)值。
圖2 單一(A)、復(fù)合(B)Cd和Pb條件下芽孢桿菌對(duì)Cd和Pb的去除率Figure2 Effects of the isolated bacteria on removal rate of Cd(Ⅱ)and Pb(Ⅱ)under single(A)or compound(B)treatments
圖3 芽孢桿菌對(duì)辣椒根長(zhǎng)(A)、株高(B)和鮮質(zhì)量(C)的影響Figure3 Effects of the isolated bacteria on peppers growth in the fertilization experiments
在長(zhǎng)期的生物演化過(guò)程中,微生物與植物形成了一個(gè)良好的微生態(tài)系統(tǒng),大量關(guān)于植物根際促生細(xì)菌促進(jìn)植物生長(zhǎng)的研究被報(bào)道[29-31]。目前已鑒定出多種PGPR菌株,主要種類包括芽孢桿菌屬(Bacillus)、假單胞菌屬(Pseudomonas)、固氮菌屬(Azotobacter)、固氮螺菌屬(Azospirillum)、腸桿菌屬(Enterobacter)等[30-32]。對(duì)辣椒促生和防病的研究中,枯草芽孢桿菌、蠟樣芽孢桿菌、短小芽孢桿菌、多粘芽孢桿菌、解淀粉芽孢桿菌的作用皆有報(bào)道[32]。PGPR的促生能力主要體現(xiàn)在能夠產(chǎn)生一些植物促生物質(zhì),如吲哚乙酸、赤霉素和玉米素等[11,32],本研究中7株供試芽孢桿菌均產(chǎn)生吲哚乙酸和鐵載體,但L25產(chǎn)生吲哚乙酸和鐵載體較少,也無(wú)溶磷能力,因此對(duì)辣椒促生作用不顯著。分離自辣椒根際土的B.megaterium L44菌株對(duì)辣椒有明顯的促生作用,顯示與辣椒有良好的匹配關(guān)系,并能顯著降低辣椒果實(shí)中Cd和Pb含量,具有潛在應(yīng)用價(jià)值。
表2 芽孢桿菌對(duì)辣椒果實(shí)吸收Cd和Pb的影響Table2 Effects of the isolated bacterial inoculation on Cd and Pb accumulation in the fruit of the peppers
表3 辣椒果實(shí)中Cd、Pb含量與轉(zhuǎn)移系數(shù)、富集系數(shù)的相關(guān)性Table3 Correction coefficients between fruit Cd content,Pb content,transfer factor and bio-concentration factor
微生物的胞外聚合物和細(xì)胞對(duì)重金屬有很強(qiáng)的吸附能力。胞外聚合物(Extracellular polymeric substances,EPS)是細(xì)菌在一定條件下分泌的高分子聚合物,包括多糖、蛋白質(zhì)和核酸等,富含負(fù)電官能團(tuán),具有優(yōu)越的金屬鍵合性[33-35]。另外,芽孢桿菌屬于革蘭氏陽(yáng)性細(xì)菌,細(xì)胞壁由大量肽聚糖和磷壁酸組成,含有豐富的羧基、酰胺基等基團(tuán),使得細(xì)胞表面帶有負(fù)電荷,與土壤中的重金屬離子產(chǎn)生靜電吸附作用,限制了金屬離子的活動(dòng)范圍[36-37]。本研究中發(fā)現(xiàn)7株芽孢桿菌都分泌多糖,在溶液中24 h時(shí)可去除30%~39%的Cd,Pb去除率在4.3%~25.6%之間,通過(guò)盆栽試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)6株芽孢桿菌能顯著降低辣椒果實(shí)中Cd、Pb含量,推測(cè)芽孢桿菌的細(xì)胞和代謝產(chǎn)生的多糖能夠吸附重金屬離子,降低了Pb和Cd的轉(zhuǎn)移系數(shù)與富集系數(shù),減少了重金屬離子向植物體的轉(zhuǎn)移。Park等[38]發(fā)現(xiàn)溶磷細(xì)菌Enterobactersp.與磷礦粉的聯(lián)合使用可以很好地實(shí)現(xiàn)重金屬鉛的固定,主要是磷氯鉛礦的形成導(dǎo)致的。Guo等[39]研究發(fā)現(xiàn)解磷細(xì)菌Bradyrhizobiumsp.YL-6提高大豆礦質(zhì)營(yíng)養(yǎng)Fe吸收從而減少大豆根莖中Cd的積累。L44菌株具有解磷能力,進(jìn)一步研究該菌株是否溶解磷礦粉或磷酸鈣時(shí)固定鉛、或能否改善植物Fe營(yíng)養(yǎng)從而穩(wěn)定土壤中重金屬并闡明其機(jī)制,可以為解釋菌株降低辣椒果實(shí)重金屬含量的作用機(jī)理提供基礎(chǔ)。
農(nóng)田土壤受到不同程度的重金屬污染,必須采取不同措施進(jìn)行修復(fù)并保障農(nóng)產(chǎn)品安全生產(chǎn)。對(duì)高度污染土壤而言,植物提取或休耕等策略比較可行;而對(duì)輕度或中度污染土壤,原位重金屬穩(wěn)定化修復(fù)備受關(guān)注,已有許多修復(fù)材料正被研發(fā)應(yīng)用。梁學(xué)峰等[40]在田間示范條件下應(yīng)用海泡石磷肥復(fù)配和海泡石硅肥復(fù)配處理后,發(fā)現(xiàn)糙米鎘含量最大降幅約為72.7%,分別降低至 0.33 mg·kg-1和 0.34 mg·kg-1,但復(fù)配處理組糙米鎘含量最低值仍然超過(guò)現(xiàn)行國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)最大限量值。方至萍等[41]通過(guò)低積累水稻品種與鈍化材料相結(jié)合,增加海泡石用量達(dá)到9.00 g·kg-1土?xí)r,嘉33精米中的Pb、Cd含量才能低于國(guó)家的限量指標(biāo)(GB 2762—2017)。陳玲[42]比較了單一菌劑、化學(xué)修復(fù)劑、菌劑-化學(xué)修復(fù)劑復(fù)配減少蔬菜重金屬含量的效果,發(fā)現(xiàn)復(fù)配制劑的效果好于單一菌劑和化學(xué)修復(fù)劑。本研究中接種B.megaterium L44使辣椒果實(shí)中的Cd和Pb含量顯著降低,但還未達(dá)到現(xiàn)行國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)蔬菜安全的限量值,進(jìn)一步開(kāi)展功能菌株與磷酸鈣、海泡石、生物炭等的復(fù)配和相互作用研究,配合低積累辣椒品種應(yīng)用,有望為阻控辣椒吸收重金屬、安全生產(chǎn)提供有效技術(shù)途徑和理論基礎(chǔ)。
(1)從生長(zhǎng)于南京某礦區(qū)周邊農(nóng)田的辣椒和圣女果的根際土壤中篩選到7株能分泌胞外多糖、IAA和鐵載體、耐受Cd和Pb的芽孢桿菌。
(2)B.megaterium L44菌株接種處理的辣椒果實(shí)Cd和Pb含量分別顯著降低39.1%和81.3%,接近食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)限量要求,具有阻控辣椒吸收重金屬的潛在應(yīng)用價(jià)值。
[1]周建軍,周 桔,馮仁國(guó).我國(guó)土壤重金屬污染現(xiàn)狀及治理戰(zhàn)略[J].中國(guó)科學(xué)院院刊,2014,29(3):315-320.
ZHOU Jian-jun,ZHOU Ju,FENG Ren-guo.Status of China′s heavy metal contamination in soil and its remediation strategy[J].Chinese A-cademy of Sciences,2014,29(3):315-320.
[2]李精超,胡小鳳,李文一,等.設(shè)施蔬菜基地土壤重金屬污染分析及防治研究[J].中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2010,26(18):393-396.
LI Jing-chao,HU Xiao-feng,LI Wen-yi,et al.Study of heavy metals pollution analysis and control in protected vegetable base soil[J].Chinese Agricultural Science Bulletin,2010,26(18):393-396.
[3]崔曉峰,李淑儀,丁效東,等.珠江三角洲地區(qū)典型菜地土壤與蔬菜重金屬分布特征研究[J].生態(tài)環(huán)境學(xué)報(bào),2012,21(1):130-135.
CUI Xiao-feng,LI Shu-yi,DING Xiao-dong,et al.Contents of heavy metals in soil and vegetables at typical vegetable plot in the Pearl River Delta[J].Ecology and Environmental Sciences,2012,21(1):130-135.
[4]李書(shū)幻,溫祝桂,陳亞茹,等.我國(guó)蔬菜重金屬污染現(xiàn)狀與對(duì)策[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,44(8):231-235.
LI Shu-huan,WEN Zhu-gui,CHEN Ya-ru,et al.The status and countermeasures of heavy metal pollution in vegetables in China[J].Journal of Jiangsu Agricultural Sciences,2016,44(8):231-235.
[5]黃益宗,郝曉偉,雷 鳴,等.重金屬污染土壤修復(fù)技術(shù)及其修復(fù)實(shí)踐[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2013,32(3):409-417.
HUANG Yi-zong,HAO Xiao-wei,LEI Ming,et al.The remediation technology and remediation practice of heavy metals-contaminated soil[J].Journal of Agro-Environment Science,2013,32(3):409-417.
[6]李劍睿,徐應(yīng)明,林大松,等.農(nóng)田重金屬污染原位鈍化修復(fù)研究進(jìn)展[J].生態(tài)環(huán)境學(xué)報(bào),2014,23(4):721-728.
LI Jian-rui,XU Ying-ming,LIN Da-song,et al.In situ immobilization remediation of heavy metals in contaminated soils:A review[J].Ecology and Environmental Sciences,2014,23(4):721-728.
[7]王陳絲絲,馬友華,陳倩倩,等.鈍化劑對(duì)農(nóng)田土壤重金屬形態(tài)與其穩(wěn)定性影響研究[J].中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2016,32(1):172-177.
WANG Chen-si-si,MA You-hua,CHEN Qian-qian,et al.Effect of passivation agent on morphology and stability of heavy metals in cropland soil[J].Chinese Agricultural Science Bulletin,2016,32(1):172-177.
[8]Lombi E,Zhao F J,Zhang G Y,et al.In situ fixation of metals in soils using bauxite residue:Chemical assessment[J].Environmental Pollution,2002,118(3):435-443.
[9]Lee S H,Lee J S,Choi Y J,et al.In situ stabilization of cadmium-,lead-,and zinc-contaminated soil using various amendments[J].Chemosphere,2009,77(8):1069-1075.
[10]Yang J,Kloepper J W,Ryu C M.Rhizosphere bacteria help plants tolerate abiotic stress[J].Trends in Plant Science,2009,14(1):1-4.
[11]Chen Y M,Chao Y Q,Li Y Y,et al.Survival strategies of the plant-associated bacterium Enterobactersp.strain EG16 under cadmium stress[J].Applied and Environmental Microbiology,2016,82(6):1734-1744.
[12]陳亞剛,陳雪梅,張玉剛,等.微生物抗重金屬的生理機(jī)制[J].生物技術(shù)通報(bào),2009,25(10):60-65.
CHEN Ya-gang,CHEN Xue-mei,ZHANG Yu-gang,et al.The physiological mechanism of microbial heavy metals tolerance[J].Biotechnology Bulletin,2009,25(10):60-65.
[13]Park J H,Bolan N,Megharaj N,et al.Isolation of phosphate solubilizing bacteria and their potential for lead immobilization in soil[J].Journal of Hazardous Materials,2011,185:829-836.
[14]Wang X H,Nie Z W,He L Y,et al.Isolation of As-tolerant bacteria and their potentials of reducing As and Cd accumulation of edible tissues of vegetables in metal(loid)-contaminated soils[J].Science of the Total Environment,2016,579:179-189.
[15]Chen L,He L Y,Wang Q,et al.Synergistic effects of plant growthpromoting Neorhizobium huautlense T1-17 and immobilizers on the growth and heavy metal accumulation of edible tissues of hot pepper[J].Journal of Hazardous Materials,2016,312:123-131.
[16]姚榮江,楊勁松,謝文萍,等.江蘇沿海某設(shè)施農(nóng)區(qū)土壤重金屬累積特點(diǎn)及生態(tài)風(fēng)險(xiǎn)評(píng)價(jià)[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2016,35(8):1498-1506.
YAO Rong-jiang,YANG Jin-song,XIE Wen-ping,et al.Accumulation and potential ecological risk assessment of heavy metals in greenhouse soils from coastal area of Jiangsu Province[J].Journal of Agro-Environment Science,2016,35(8):1498-1506.
[17]劉 峰,弭寶彬,魏瑞敏,等.基于聚類分析法篩選低鎘累積辣椒品種[J].園藝學(xué)報(bào),2017,44(5):979-986.
LIU Feng,MI Bao-bin,WEI Rui-min,et al.Screening out of Cd-pollution-safe pepper cultivars by clustering analysis[J].Acta Horticulturae Sinica,2017,44(5):979-986.
[18]Dubois M,Gilles K A,Hamilton J K,et al.Colorimetric method for determination of sugars and related substances[J].Analytical Chemistry,1955,28(3):350-356.
[19]Gordon S A,Weber R P.Colorimetric estimation of indoleacetic acid[J].Plant Physiology,1951,26(1):192.
[20]Mayer A M.Determination of indole acetic acid by the Salkowsky reaction[J].Nature,1958,182(4650):1670-1671.
[21]Schwyn B,Neilands J B.Universal chemical assay for the detection and determination of siderophores[J].Analytic Biochemistry,1987,160:47-56.
[22]Liu Z G,Li Y C,Zhang S A,et al.Characterization of phosphate-solubilizing bacteria isolated from calcareous soils[J].Applied Soil Ecology,2015,96:217-224.
[23]顏?zhàn)臃f,王海林.精編分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)指南[M].北京:科學(xué)出版社,1998:37-39.
YAN Zi-ying,WANG Hai-lin.Molecular biology experiment guide[M].Beijing:Science press,1998:37-39.
[24]Lane D J.16S/23S rRNA sequencing[M]//Stackebrandt E,Good fellow M.Eds.Nucleic acid techniques in bacterial systematics.Chichester:Wiley,1991:115-175.
[25]郜金榮.分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)[M].武漢:武漢大學(xué)出版社,2007:83-85.
GAO Jin-rong.Molecular biology experimental guidance[M].Wuhan:Wuhan University Press,2007:83-85.
[26]陳生濤,何琳燕,李 婭,等.Rhizobium sp.W33對(duì)不同植物吸收銅和根際分泌物的影響[J].環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2014,34(8):2077-2084.CHEN Sheng-tao,HE Lin-yan,LI Ya,et al.Effects of Rhizobium sp.
W33 on absorption of copper and rhizosphere secretions from different plants[J].Acta Scientiae Circumstantiae,2014,34(8):2077-2084.
[27]Hajdu R,Slaveykova V I.Cd and Pb removal from contaminated environment by metal resistant bacterium Cupriavidus metallidurans CH34:Importance of the complexation and competition effects[J].Environmental Chemistry,2012,9(4):389-398.
[28]Wang J,Li Q,Li M M,et al.Competitive adsorption of heavy metal by extracellular polymeric substances(EPS)extracted from sulfate reducing bacteria[J].Bioresource Technology,2014,163(7):374-376.
[29]劉丹丹,李 敏,劉潤(rùn)進(jìn).我國(guó)植物根圍促生細(xì)菌研究進(jìn)展[J].生態(tài)學(xué)雜志,2016,35(3):815-824.
LIU Dan-dan,LI Min,LIU Run-jin.Recent advances in the study of plant growth-promoting rhizobacteria in China[J].Chinese Journal of Ecology,2016,35(3):815-824.
[30]張夢(mèng)琦,陳云云,張 熙,等.多功能植物根際促生菌DD3的功能特性及對(duì)大蒜幼苗的促生效果[J].植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào),2017,23(3):748-756.
ZHANG Meng-qi,CHEN Yun-yun,ZHANG Xi,et al.Characterizations of rhizobacteria DD3 and their growth promoting effect on garlic seedlings[J].Journal of Plant Nutrition and Fertilizer,2017,23(3):748-756.
[31]張 楊,文春燕,趙買瓊,等.辣椒根際促生菌的分離篩選及生物育苗基質(zhì)研制[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2015,60(6):950-957.
ZHANG Yang,WEN Chun-yan,ZHAO Mai-qiong,et al.Isolation of plant growth promoting rhizobacteria from pepper and development of bio-nursery substrates[J].Journal of Nanjing Agricultural University,2015,60(6):950-957.
[32]Joo G J,Kim Y M,Lee I J,et al.Growth promotion of red pepper plug seedlings and the production of gibberellins by Bacillus cereus,Bacillus macroides and Bacillus pumilus[J].Biotechnology Letters,2004,26(6):487-491.
[33]張宗迪,崔夏倩,楊延斌,等.不同微生物制劑對(duì)土壤中結(jié)合態(tài)Zn穩(wěn)定性的影響[J].上海交通大學(xué)學(xué)報(bào)(農(nóng)業(yè)科學(xué)版),2017,35(03):70-75,89.
ZHANG Zong-di,CUI Xia-qian,YANG Yan-bin,et al.Effect and mechanism of different microbial preparations on stability of Zn in soil[J].Journal of Shanghai Jiaotong University(Agricultural Science Edition),2017,35(3):70-75,89.
[34]洪 晨,李益飛,司艷曉,等.土壤芽孢桿菌產(chǎn)胞外聚合物對(duì)Pb2+吸附特性研究[J].中國(guó)環(huán)境科學(xué),2017,37(5):1805-1813.
HONG Chen,LI Yi-fei,SI Yan-xiao,et al.Pb2+adsorption features of extracellular polymeric substance producted by a Brevibacillus agristrain[J].China Environmental Science,2017,37(5):1805-1813.
[35]Wei D,Lia M T,Wang X D,et al.Extracellular polymeric substances for Zn(Ⅱ)binding during its sorption process onto aerobic granular sludge[J].Journal of Hazardous Materials,2016,301:407-415.
[36]王澤煌,王 蒙,蔡昆爭(zhēng),等.細(xì)菌對(duì)重金屬吸附和解毒機(jī)制的研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通報(bào),2016,32(12):13-19.
WANG Ze-huang,WANG Meng,CAI Kun-zheng,et al.Research advances on biosorption and detoxification mechanisms of heavy metals by bacteria[J].Biotechnology Bulletin,2016,32(12):13-19.
[37]余勁聰,何舒雅,曾潤(rùn)穎,等.芽孢桿菌修復(fù)土壤重金屬鎘污染的研究進(jìn)展[J].廣東農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,43(1):73-78.
YU Jin-cong,HE Shu-ya,ZENG Run-ying,et al.Research progress in remediation of cadmium contaminated soil with Bacillus[J].Guangdong Agricultural Sciences,2016,43(1):73-78.
[38]Park J H,Bolan N,Megharaj N,et al.Concomitant rock phosphate dissolution and lead immobilization by phosphate solubilizing bacteria(Enterobacter sp.)[J].Journal of Environmental Management,2011,92:1115-1120.
[39]Guo J K,Chi J.Effect of Cd-tolerant plant growth-promoting rhizobium on plant growth and Cd uptake by Lolium multiflorum Lam.and Glycine max(L.) Merr.in Cd-contaminated soil[J].Plant Soil,2014,375:205-214.
[40]梁學(xué)峰,韓 君,徐應(yīng)明,等.海泡石及其復(fù)配原位修復(fù)鎘污染稻田[J].環(huán)境工程學(xué)報(bào),2015,9(9):4571-4577.
LIANG Xue-feng,HAN Jun,XU Ying-ming,et al.In situ remediation of Cd polluted paddy soil using sepiolite and combined amendments[J].Chinese Journal of Environmental Engineering,2015,9(9):4571-4577.
[41]方至萍,廖 敏,張 楠,等.鉛鎘復(fù)合污染土壤施用海泡石對(duì)鉛、鎘在土壤-水稻系統(tǒng)中遷移與再分配的影響[J].環(huán)境科學(xué),2017,38(7):3028-3035.
FANG Zhi-ping,LIAO Min,ZHANG Nan,et al.Effect of sepiolite application on the migration and redistribution of Pb and Cd in soil rice system in soil with Pb and Cd combined contamination[J].Environmental Science,2017,38(7):3028-3035.
[42]陳 玲.植物促生細(xì)菌Rhizobiumsp.T1-17對(duì)蔬菜重金屬消減作用的效果及其機(jī)制研究[D].南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2015.
CHEN Ling.Effects of Rhizobiumsp.T1-17 on heavy metal absorption in vegetables and its mechanism[D].Nanjing:Nanjing Agricultural U-niversity,2015.
農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào)2018年6期