瞿恒賢,余洪波,黃瑩萍,席文博,黃玉軍,顧瑞霞,陳大衛(wèi),*
(1.揚(yáng)州大學(xué)江蘇省乳品生物技術(shù)與安全控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇揚(yáng)州225009;2.統(tǒng)一企業(yè)(中國(guó))投資有限公司,江蘇昆山215300)
非酒精性脂肪肝?。╪on-alcoholic fatty liver disease,NAFLD)是一種常見的慢性肝病,包括簡(jiǎn)單脂肪變性,非酒精性脂肪肝炎,纖維化,肝硬化和肝細(xì)胞癌[1]。NAFLD的標(biāo)志是脂質(zhì)的細(xì)胞內(nèi)積累,導(dǎo)致在肝細(xì)胞內(nèi)形成脂滴。這種積累是由脂質(zhì)合成和氧化之間的不平衡引起的[2-4]。與正常健康者相比,NAFLD患者呈現(xiàn)高水平的活性氧和脂質(zhì)過(guò)氧化產(chǎn)物,而抗氧化酶如超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、過(guò)氧化氫酶(catalase from micrococcus lysodeikticus,CAT)和抗氧化劑谷胱甘肽(glutathione、GSH)等的表達(dá)降低[5]。目前,對(duì)非酒精性脂肪肝發(fā)病機(jī)制廣泛接受的理論是“二次打擊”學(xué)說(shuō)[6]。第一次打擊主要是脂肪代謝失衡和胰島素抵抗導(dǎo)致脂肪在肝細(xì)胞中的沉積;第二次打擊即在第一次打擊的基礎(chǔ)上,出現(xiàn)氧化應(yīng)激和脂質(zhì)過(guò)氧化、線粒體功能失調(diào),在細(xì)胞因子等共同作用下,引起脂肪性肝炎,進(jìn)一步形成肝硬化,甚至肝癌[7-8]。脂質(zhì)過(guò)氧化是NAFLD肝細(xì)胞損傷的主要原因[9-11]?;钚匝跬ǔS烧<?xì)胞的代謝產(chǎn)生,但肝臟脂質(zhì)積累導(dǎo)致過(guò)氧化自由基不能狗夠被抗氧化防御抵消,從而誘發(fā)肝損傷[12]。
益生菌對(duì)NAFLD的作用越來(lái)越受到重視,大量研究表明,益生菌可以有效地預(yù)防和改善NAFLD。Ritze等[13]報(bào)道了鼠李糖乳桿菌對(duì)NAFLD的保護(hù)作用,在高糖飲食誘導(dǎo)的NAFLD模型小鼠中,有益細(xì)菌數(shù)量增加,腸屏障功能恢復(fù),肝臟炎癥和脂肪變性也隨之減弱。Paik等[14]也發(fā)現(xiàn),HFD喂養(yǎng)的大鼠在食用芽孢桿菌屬(Bacillus)6周后,血清總膽固醇(total cholesterol,TC)、低密度脂蛋白膽固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)和脂質(zhì)過(guò)氧化水平均得以明顯改善。然而,盡管益生菌對(duì)NAFLD有明顯的有益作用,但其影響機(jī)制尚未完全明了。
脂質(zhì)過(guò)氧化(lipid peroxidation)在NAFLD中扮演著重要角色[15],有研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),益生菌通過(guò)拮抗脂質(zhì)過(guò)氧化損傷,從而減輕肝臟炎癥[16-17]。本研究通過(guò)高脂飲食成功誘導(dǎo)SD雄性大鼠建立脂質(zhì)過(guò)氧化損傷模型,應(yīng)用單一及混合益生菌發(fā)酵乳進(jìn)行干預(yù),觀察益生菌對(duì)肝功能、肝內(nèi)臟脂肪堆積以及脂質(zhì)過(guò)氧化損傷狀態(tài),評(píng)價(jià)益生菌對(duì)肝臟脂質(zhì)過(guò)氧化損傷的拮抗效應(yīng),并探究其可能的機(jī)制。
鼠李糖乳桿菌(L.rhamnosus)LV108、發(fā)酵乳桿菌(L.fermentum)grx08、干酪乳桿菌(L.casei)grx12:揚(yáng)州大學(xué)江蘇省乳品生物技術(shù)與安全控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保藏。
1.2.1 主要儀器
5804R型高速冷凍離心機(jī):德國(guó)Eppendorf公司;RM225組織切片機(jī):德國(guó)萊卡公司;Axiocam erc5s型生物顯微鏡:德國(guó)Carl.Zeiss公司;7020型全自動(dòng)生化分析儀:日本株式會(huì)社日立制作所。
1.2.2 主要試劑
蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin,HE)染色試劑盒、TC、甘油三酯(triglyceride,TG)、高密度脂蛋白膽固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)、LDL-C、超氧陰離子自由基、羥自由基、NO自由基、CAT、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶 (glutathione peroxidase,GSH-Px)、SOD、丙二醛(malondialdehyde,MDA)測(cè)定試劑盒:南京建成生物工程研究所。
5周齡SPF級(jí)SD雄性大鼠40只,體質(zhì)量約150 g:揚(yáng)州大學(xué)比較醫(yī)學(xué)中心?;A(chǔ)飼料(面粉20%、米粉10%、玉米20%、鼓皮26%、豆料20%、魚粉2%、骨粉2%)適應(yīng)性飼喂1周,適應(yīng)有規(guī)律的12 h白天/12 h黑夜的循環(huán),然后按各組間平均體重?zé)o顯著差異隨機(jī)分成4組,每組各10只,選取一組作為空白對(duì)照組,飼喂基礎(chǔ)飼料,其余3組通過(guò)飼喂4周高脂飼料(10%豬油、10%蛋黃粉、1%膽固醇和0.2%膽鹽和78.8%基礎(chǔ)飼料)建立高血脂大鼠模型。4周末,各組隨機(jī)選取一只處死進(jìn)行肝臟HE染色,確定造模成功,造模成功后進(jìn)行灌胃實(shí)驗(yàn),時(shí)間為4周。
動(dòng)物分組與處理如下:空白組,日常飼喂普通飼料,灌胃給予生理鹽水(1 mL/100 g);模型組,日常飼喂高脂飼料,灌胃給予生理鹽水(1 mL/100 g);LV108組,日常飼喂高脂飼料,灌胃給予LV108發(fā)酵乳(1 mL/100 g,109CFU/mL);混合發(fā)酵乳組,日常飼喂高脂飼料,灌胃給予簡(jiǎn)單混合發(fā)酵(1 mL/100 g,109CFU/mL),體積比LV108發(fā)酵乳 ∶grx08發(fā)酵乳 ∶grx12發(fā)酵乳=1∶1∶1。定時(shí)補(bǔ)充飲水和飼料,更換墊料。
大鼠禁食12 h后,眼球取血,以12 000 r/min分離血清,-80℃儲(chǔ)存?zhèn)溆?。取肝臟,稱重,取肝臟左葉,大小1 cm×1 cm×0.5 cm,4%多聚甲醛固定,存于4℃冰箱中備用;另取0.8 g組織塊,在預(yù)冷的生理鹽水中漂洗,沖去表面血液,然后濾紙拭干,稱重后放入燒杯中。加入預(yù)冷的pH值為7.4 Tris-HCl(體積比1∶9的勻漿液),迅速用手術(shù)剪刀剪成碎塊。組織勻漿器進(jìn)行勻漿操作,然后在 4℃條件下離心(4 000×g,15 min),吸取上清液,存于-80℃冰箱中備用。
每周測(cè)定一次大鼠的體重,每天記錄每組大鼠飲食量。大鼠處死前測(cè)定空腹體重。計(jì)算食物效應(yīng)比(攝入每克食物造成的體重增加)。食物效應(yīng)比計(jì)算公式如下:
經(jīng)4%多聚甲醛固定,脫水,常規(guī)石蠟包埋,切片,蘇木精-伊紅(HE)染色,光鏡觀察組織病變情況。
血清總膽固醇(total cholesterol,TC)、甘油三酯(triglyceride,TG)、高密度脂蛋白膽固醇(high density lipoprotein cholesterol,HDL-C)、低密度脂蛋白膽固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)均由 7020型全自動(dòng)生化分析儀一同測(cè)定;肝臟超氧陰離子自由基、羥基自由基、一氧化氮自由基(NO)、過(guò)氧化氫酶(catalase from micrococcus lysodeikticus,CAT)、谷胱甘肽(glutathione,GSH)、谷胱甘肽過(guò)氧化氫酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)和丙二醛(malondialdehyde,MDA)均按照試劑盒提供的方法測(cè)定。
所有數(shù)據(jù)均采用SPSS進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,計(jì)量資料使用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差。
益生菌對(duì)大鼠飲食量及體重的影響如圖1所示。
圖1 益生菌對(duì)大鼠飲食量及體重的影響(n=10)Fig.1 Effect of probiotics on food intake and body weight of rats(n=10)
由圖1可以看出,大鼠對(duì)低脂飼料的攝入要高于高脂飼料,這是因?yàn)榈椭暳系哪芰棵芏缺容^低。益生菌發(fā)酵乳L(zhǎng)V108組和混合組消耗的飼料與模型組消耗的飼料無(wú)顯著性差異,表明益生菌的干預(yù)并沒有影響食物的攝入。第4周益生菌干預(yù)后,益生菌LV108組和混合組大鼠體重增加的速率較模型組相比明顯減緩,最終體重都顯著低于模型組(P<0.05),說(shuō)明益生菌干預(yù)能夠減緩大鼠體重的增加。如表1所示,兩組益生菌干預(yù)組的食物效應(yīng)比也顯著低于模型組(P<0.05)。
表1 益生菌對(duì)大鼠體重的影響(n=10)Table 1 Effects probiotics on weight parameters of rats(n=10)
益生菌對(duì)大鼠血清TC、TG、HDL-C和LDL-C水平的影響如圖2所示。
圖2 益生菌對(duì)大鼠血清TC、TG、HDL-C和LDL-C水平的影響(n=10)Fig.2 Effects of probiotics on serum TC、TG、HDL-C and LDL-C levels in rats(n=10)
由圖2結(jié)果顯示,模型組大鼠血清中TG、TC、LDL-C與空白組相比均顯著增高(P<0.05),分別增加了68.90%,21.61%,82.14%;HDL-C含量明顯降低(P<0.05),較空白組降低了27.08%,說(shuō)明高脂飲食模型造成了大鼠脂質(zhì)代謝平衡被破壞,產(chǎn)生過(guò)多的脂肪酸,從而使血清中的TG、TC水平升高,肝臟脂肪酶加速清除HDL,使HDL-C含量降低,LDL-C含量升高。益生菌干預(yù)后,與模型組相比,LV108組與混合組大鼠血清的 TG、TC、LDL-C 水平顯著降低(P<0.05);HDLC顯著升高(P<0.05)。其中,TG降低最明顯,LV108組和混合組分別降低了35.49%,36.59%。但與空白組比較,LV108組與混合組大鼠的TC、TG、LDL-C仍然有所升高,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),而HDL-C顯著降低(P<0.05)。
大鼠肝臟HE染色觀察如圖3所示。
圖3 大鼠肝臟HE染色觀察(×200)Fig.3 H&E staining of mouse liver(×200)
由圖3可知,空白組大鼠肝臟肝小葉結(jié)構(gòu)完整,細(xì)胞界限清晰,細(xì)胞核位于中央,未見脂肪空泡。模型組大鼠肝臟肝細(xì)胞結(jié)構(gòu)被破壞,細(xì)胞腫脹,細(xì)胞間隙不清,脂肪沉積明顯,肝組織小泡性脂肪變性及水樣變性,可見大量肝細(xì)胞脂肪空泡。益生菌干預(yù)后,肝臟細(xì)胞的脂肪變性減輕,肝細(xì)胞脂肪空泡減少,且空泡更小。病理學(xué)研究的結(jié)果同血清反映的情況一致,說(shuō)明益生菌干預(yù)能夠改善肝臟脂肪變性,對(duì)大鼠肝臟脂質(zhì)過(guò)氧化損傷具有拮抗效應(yīng)。
益生菌對(duì)大鼠肝臟氧化指標(biāo)的影響如表2所示。
由表2結(jié)果顯示,模型組大鼠肝臟抗氧陰離子自由基、羥自由基、NO自由基和MDA水平與空白組相比顯著升高(P<0.05),分別增加了 73.18%、24.35%、100%和37.93%;而SOD、GSH、GSH-Px、CAT水平顯著降低(P<0.05),分別降低了 45.26%、31.67%、13.17%和39.85%。在益生菌干預(yù)以后,與模型組相比,LV108組和混合組大鼠肝臟抗氧陰離子自由基、羥自由基、NO自由基和MDA水平均顯著降低(P<0.05),SOD、GSH、GSH-Px、CAT 水平顯著升高 (P<0.05),其中LV108組對(duì)SOD、GSH和CAT的影響較大,較模型組分別增加了42.87%、32.93%和44.76%,而混合組對(duì)抗氧陰離子自由基、GSH和CAT的影響較大,較模型組抗氧陰離子自由基減少了30.36%,GSH和CAT分別增加了35.98%和53.68%。兩組益生菌組干預(yù)效果相當(dāng),無(wú)顯著性差異(P>0.05)。但與空白組相比,LV108組和混合組大鼠肝臟抗氧陰離子自由基、羥自由基、NO自由基和MDA水平仍然有所升高,SOD、GSH、GSH-Px、CAT水平有所降低,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
表2 益生菌對(duì)大鼠肝臟氧化指標(biāo)的影響(n=10)Table 2 Effects of probiotics on hepatic oxidants and antioxidants levels in rats(n=10)
本研究旨在探究益生菌對(duì)大鼠肝臟脂質(zhì)氧化損傷的拮抗效應(yīng)機(jī)制。我們應(yīng)用高脂飲食成功誘導(dǎo)大鼠建立脂質(zhì)氧化損傷模型,結(jié)果也顯示了模型組大鼠與正??瞻捉M大鼠相比出現(xiàn)了體重升高,血脂水平增高,光鏡下可見肝臟病理切片肝細(xì)胞結(jié)構(gòu)被破壞,脂肪沉積明顯,可見大量肝細(xì)胞脂肪空泡。
益生菌干預(yù)有效的控制了血清中TG、TC、LDL-C和HDL-C水平。國(guó)內(nèi)外的研究也發(fā)現(xiàn)益生菌可以降低血脂水平,并提高HDL-C水平[18-19]。同時(shí),血脂水平在一定程度上能夠反映肝臟的損傷程度,間接說(shuō)明了益生菌干預(yù)能夠拮抗肝臟脂質(zhì)過(guò)氧化損傷。
此外,有研究報(bào)道了益生菌通過(guò)減少大鼠對(duì)高脂飲食中脂肪吸收來(lái)抑制血清TG和TC水平的增加[20-21]。益生菌對(duì)大鼠飲食量并沒有顯著影響,在相同的食物攝入量下,益生菌的干預(yù)顯著降低了高脂飼料的食物效應(yīng)比,減少了高脂飲食中脂肪的吸收,從而減緩了大鼠體重的增加,降低了血清TG和TC的含量。
肝臟脂質(zhì)代謝平衡被破壞,最為常見的是發(fā)生膽固醇代謝紊亂,其代謝的穩(wěn)態(tài)依賴于膽固醇合成、吸收和排泄途徑。HDL能將外周細(xì)胞中游離膽固醇運(yùn)到周圍的組織中去,實(shí)現(xiàn)膽固醇逆轉(zhuǎn)運(yùn),排除多余的膽固醇[22]。益生菌干預(yù)顯著提高血清中HDL-C水平,加速了膽固醇轉(zhuǎn)運(yùn)和排泄,抑制了脂肪酸合成,也起到了降血脂的功效。
機(jī)體通過(guò)酶系統(tǒng)或非酶系統(tǒng)產(chǎn)生大量的自由基(如氧陰離子自由基、羥自由基、NO自由基等),自由基攻擊生物膜中的不飽和脂肪酸,引發(fā)脂質(zhì)過(guò)氧化作用,形成脂質(zhì)過(guò)氧化物,消耗體內(nèi)的抗氧化物質(zhì),并可引起生物膜損害、線粒體功能紊亂、ATP合成障礙等,導(dǎo)致細(xì)胞壞死和凋亡[23-25]。丙二醛(MDA)作為自由基作用于脂質(zhì)產(chǎn)生過(guò)氧化反應(yīng)的產(chǎn)物,其含量可反映機(jī)體內(nèi)脂質(zhì)過(guò)氧化程度,也是衡量機(jī)體自由基代謝的敏感指標(biāo),可間接反映肝臟細(xì)胞受自由基攻擊的嚴(yán)重程度[26]。GSH是由谷氨酸、半胱氨酸及甘氨酸結(jié)合而成的小分子三肽化合物,是機(jī)體重要的抗氧化劑和自由基清除劑[27]。SOD、CAT和GSH-Px都是生物機(jī)體內(nèi)重要的抗氧化酶,它們可以消除機(jī)體內(nèi)的過(guò)氧化氫及脂質(zhì)過(guò)氧化物[28]。SOD是機(jī)體清除超氧陰離子自由基最主要的酶。CAT主要存在于過(guò)氧化物酶體,清除機(jī)體過(guò)多的過(guò)氧化氫[29]。GSH-Px是一種以GSH為底物的重要抗氧化酶,通過(guò)保護(hù)機(jī)體免受H2O2造成的傷害,能降低脂質(zhì)過(guò)氧化程度[30]。本實(shí)驗(yàn)中模型組大鼠肝臟抗氧陰離子自由基、羥自由基、NO自由基和MDA水平顯著升高,而 GSH、SOD、CAT、GSH-Px水平顯著降低,說(shuō)明高脂飲食造成了肝細(xì)胞的脂質(zhì)過(guò)氧化損傷。在在益生菌干預(yù)以后,大鼠肝臟抗氧陰離子自由基、羥自由基、NO自由基和MDA水平均有所降低,GSH、SOD、CAT、GSH-Px水平升高,說(shuō)明益生菌可有效提高大鼠體內(nèi)部分抗氧化酶活力和非酶抗氧化物質(zhì)的含量,清除自由基、脂質(zhì)過(guò)氧化產(chǎn)物,緩解肝臟受損的程度,有效對(duì)抗大鼠肝臟脂質(zhì)過(guò)氧化損傷。
益生菌通過(guò)降低高脂飼料的食物效應(yīng)比,緩解脂質(zhì)堆積,調(diào)控血脂水平,維持大鼠體內(nèi)部分抗氧化酶的活力和非酶抗氧化物質(zhì)的水平,清除過(guò)氧化自由基,減少脂質(zhì)過(guò)氧化產(chǎn)物的形成,拮抗肝臟脂質(zhì)過(guò)氧化損傷,緩解肝臟受損的程度,減輕肝臟炎癥。但為進(jìn)一步明確益生菌對(duì)大鼠肝臟脂質(zhì)過(guò)氧化損傷拮抗機(jī)制,需后期從分子水平作深入研究。
[1]Henaomejia J,Elinav E,Jin C,et al.Inflammasome-mediated dysbiosis regulates progression of NAFLD and obesity[J].Nature,2012,482:179-185
[2]Donnelly K L,Smith C I,Schwarzenberg S J,et al.Sources of fatty acids stored in liver and secreted via lipoproteins in patients with nonalcoholic fatty liver disease[J].Journal of Clinical Investigation,2005,115(5):1343
[3]Malhi H,Gores G J.Molecular Mechanisms of Lipotoxicity in Nonalcoholic Fatty Liver Disease[J].Seminars in Liver Disease,2008,28(4):360-369
[4]Neuschwander-Tetri B A.Hepatic lipotoxicity and the pathogenesis of nonalcoholic steatohepatitis:the central role of nontriglyceride fatty acid metabolites[J].Hepatology,2010,52(2):774-788
[5]Qu L L,Yu B,Li Z,et al.Gastrodin Ameliorates Oxidative Stress and Proinflammatory Response in Nonalcoholic Fatty Liver Disease through the AMPK/Nrf2 Pathway[J].Phytotherapy Research Ptr,2016,30(3):402-411
[6]Day C P,James O F.Steatohepatitis:a tale of two “hits”?[J].Gastroenterology,1998,114(4):842
[7]Ascha M S,Hanouneh I A,Lopez R,et al.The incidence and risk factors of hepatocellular carcinoma in patients with nonalcoholic steatohepatitis[J].Hepatology,2010,51(6):1972-1978
[8]Tiniakos D G,Vos M B,Brunt E M.Nonalcoholic fatty liver disease:pathology and pathogenesis[J].Annual Review of Pathology,2010,5(5):145
[9]Roskams T,Yang S Q,Koteish A,et al.Oxidative stress and oval cell accumulation in mice and humans with alcoholic and nonalcoholic fatty liver disease[J].American Journal of Pathology,2003,163(4):1301-1311
[10]Videla L A,Rodrigo R,Orellana M,et al.Oxidative stress-related parameters in the liver of non-alcoholic fatty liver disease patients[J].Clinical Science,2004,106(3):261
[11]Serviddio G,Bellanti F,Vendemiale G.Free radical biology for medicine:learning from nonalcoholic fatty liver disease[J].Free Radical Biology&Medicine,2013,65(6):952-968
[12]Muriel P.Role of free radicals in liver diseases[J].Hepatology International,2009,3(4):526-536
[13]Ritze Y,Bárdos G,Claus A,et al.Lactobacillus rhamnosus GG ProtectsagainstNon-AlcoholicFattyLiverDiseasein Mice[J].Plos One,2014,9(1):e80169
[14]Paik H D,Park J S,Park E.Effects of Bacillus polyfermenticus SCD on lipid and antioxidant metabolisms in rats fed a high-fat and high-cholesterol diet[J].Biological&Pharmaceutical Bulletin,2005,28(7):1270
[15]Negre-Salvayre A,Auge N,Ayala V,et al.Pathological aspects of lipid peroxidation[J].Free Radical Research,2010,44(10):1125
[16]Gaudreau H.Tea extract render probiotic Lactobacillus helveticus more resistant to oxygen exposure through lipid modification mechanism[J].Food Research International,2016,81:141-148
[17]Chávez-Tapia N C,González-Rodríguez L,Jeong M S,et al.Current evidence on the use of probiotics in liver diseases[J].Journal of Functional Foods,2015,17:137-151
[18]Nido S A,Shituleni S A,Mengistu B M,et al.Effects of Selenium-Enriched Probiotics on Lipid Metabolism,Antioxidative Status,Histopathological Lesions,and Related Gene Expression in Mice Fed a High-Fat Diet[J].Biological Trace Element Research,2016,171(2):399-409
[19]Jackson K G,Lovegrove J A.Impact of probiotics,prebiotics and synbiotics on lipid metabolism in humans[J].Nutrition&Aging,2012,1(3/4):181-200
[20]Esposito E,Iacono A,Bianco G,et al.Probiotics reduce the inflammatory response induced by a high-fat diet in the liver of young rats[J].Journal of Nutrition,2009,139(5):905
[21]Kondo S,Xiao J Z,Satoh T,et al.Antiobesity Effects of Bifidobacterium breve Strain B-3 Supplementation in a Mouse Model with High-Fat Diet-Induced Obesity[J].Bioscience Biotechnology&Biochemistry,2010,74(8):1656-1661
[22]Hill S A,Mcqueen M J.Reverse cholesterol transport——a review of the process and its clinical implications[J].Clinical Biochemistry,1997,30(7):517
[23]Paradies G,Paradies V,Ruggiero F M,et al.Oxidative stress,cardiolipin and mitochondrial dysfunction in nonalcoholic fatty liver disease[J].World Journal of Gastroenterology,2014,20(39):14205
[24]Rolo A P,Teodoro J S,Palmeira C M.Role of oxidative stress in the pathogenesis of nonalcoholic steatohepatitis[J].Free Radic Biol Med,2012,52(1):59-69
[25]Begriche K,Igoudjil A,Pessayre D,et al.Mitochondrial dysfunction in NASH:causes,consequences and possible means to prevent it[J].Mitochondrion,2006,6(1):1-28
[26]Gil L,Siems W,Mazurek B,et al.Age-associated analysis of oxidative stress parameters in human plasma and erythrocytes[J].Free Radic Res,2006,40(5):495-505
[27]Nordberg J,Arnér E S.Reactive oxygen species,antioxidants,and the mammalian thioredoxin system[J].Free Radical Biology&Medicine,2001,31(11):1287-1312
[28]Passardi F,Theiler G,Zamocky M,et al.PeroxiBase:the peroxidase database[J].Phytochemistry,2007,68(12):1605-1611
[29]Cederbaum A I,Lu Y,Wu D.Role of oxidative stress in alcohol-induced liver injury[J].Archives of Toxicology,2009,83(6):519
[30]Esposito L A,Kokoszka J E,Waymire K G,et al.Mitochondrial oxidative stress in mice lacking the glutathione peroxidase-1 gene[J].Free Radical Biology&Medicine,2000,28(5):754-766