俄木曲者,熊朝瑞*,范景勝,陳朝康,張錫文,聶忠源,孫 艷,劉世均,楊合琴
(1.四川省畜牧科學(xué)研究院,動物遺傳育種重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,四川成都 610066;2.四川富順縣農(nóng)牧業(yè)局,四川富順 643200;3.涼山州畜牧獸醫(yī)科學(xué)研究所,四川西昌 615000;4.四川省六順農(nóng)業(yè)開發(fā)有限公司,四川富順 643200;5.金川縣畜牧獸醫(yī)服務(wù)中心,四川金川 624100)
先天性免疫系統(tǒng)作為初生幼體防御和抵抗外界致病病原體侵染的首要防線,其功能的正常發(fā)揮有利于提高山羊羔羊抗病力,增加出生后羔羊存活率。BCL10(B Cell Lymophoma-10)即B細(xì)胞淋巴瘤因子10,是機(jī)體內(nèi)一種重要的細(xì)胞免疫因子,在初生幼體先天性免疫系統(tǒng)中扮演重要角色[1-2]。最初,BCL10是Willis等[3-5]在研究3例帶有t(1:14)(p22, q32)轉(zhuǎn)位的低級MALT淋巴瘤患者時發(fā)現(xiàn)。BCL10基因位于染色體lp22,編碼約230個氨基酸分子,屬于胞內(nèi)蛋白,其N端存在一個Caspase募集結(jié)構(gòu)域(Caspase Reeruitment Domain,CARD),C端存在一個富含絲氨酸/蘇氨酸結(jié)構(gòu)域[1-2,6]。該CARD由6個緊密壓縮的反平行的α-螺旋組成,類似于死亡結(jié)構(gòu)域(Death Domain,DD),與H型馬疙疹病毒E10基因的部分區(qū)域有高度的同源性,存在細(xì)胞凋亡調(diào)節(jié)作用[3,7-8]。正常免疫反應(yīng)中,BCL10基因能通過編碼蛋白活化Caspase-9或者參與LPS/TLR4途徑激活NF-κB信號通路,促進(jìn)免疫系統(tǒng)中細(xì)胞成熟、凋亡以及免疫因子的產(chǎn)生,提高機(jī)體先天免疫能力,增強(qiáng)抵抗細(xì)菌類病原體感染的能力[9-10]。近年來,BCL10先天免疫調(diào)控研究在人[5,11]、家牛[12]、豬[13]及雞[14]中都有所報(bào)道,而在山羊上較少。本實(shí)驗(yàn)以NCBI中山羊BCL10基因預(yù)測序列為模板,通過同源比對、分子克隆等技術(shù)獲取BCL10基因序列,采用生物信息學(xué)預(yù)測序列功能,qRT-PCR方法構(gòu)建初生羔羊各免疫相關(guān)器官BCL10基因表達(dá)譜,最后構(gòu)建BCL10基因真核重組載體,為進(jìn)一步研究山羊BCL10基因功能及蛋白免疫機(jī)制提供理論基礎(chǔ),為提高羔羊存活率提供產(chǎn)業(yè)指導(dǎo)。
1.1 材料
1.1.1 組織來源 對川南黑山羊肥羔型新品系初生羊羔(n=5)頸靜脈放血處死,采集肺臟、肝臟、頜下腺、脾臟、腎臟、胸腺和血液樣品,保存于液氮中備用。
1.1.2 菌株、載體及細(xì)胞來源 大腸桿菌DH5α和pEGFP-N1載體由本實(shí)驗(yàn)室提供;pMD1-T Simple購自上海生工生物技術(shù)有限公司;HEK293T細(xì)胞系由四川省畜牧科學(xué)研究院保存和提供。
1.1.3 主要試劑及儀器 RNAsimple Total RNA Kit、FastQuant RT Kit(天根生物技術(shù)有限公司),5′RACE System for Rapid Amplification of cDNA Ends Version 2.0試劑盒(Invitrogen公司)、SMARTer?RACE cDNA Amplification Kit試 劑 盒(Clontech公司 ),Power SYBR?Green PCR Master Mix(Applied Biosystems? Cat: 4367659),T4連接酶、TaqDNA聚合酶、限制性內(nèi)切酶EcoRI、Hind(TakaRa大連公司),質(zhì)粒提取試劑盒(BioDev公司),LipofiterTM脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑(漢恒生物技術(shù)有限公司),胎牛血清、青鏈霉素雙抗(G418)、DMEM高糖細(xì)胞培養(yǎng)基(Gibco公司),6孔和24孔細(xì)胞培養(yǎng)板(Costar公司)。
凝膠成像系統(tǒng)(美國 BIO-RAD公司)、DYY-8C型電泳儀(北京市六一儀器廠)、CFX Connect? 熒光定量PCR檢測系統(tǒng)(美國 BIO-RAD公司)、高速冷凍離心機(jī)(艾本德中國有限公司)、恒溫培養(yǎng)箱(上海齊欣科學(xué)儀器有限公司)、搖床OLS200(Grant公司)、超凈工作臺(蘇州凈化設(shè)備有限公司)。
1.1.4 軟件和網(wǎng)絡(luò)資源的利用 本研究中所用到的引物設(shè)計(jì)、生物信息學(xué)分析及統(tǒng)計(jì)軟件見表1。
1.2 方法
1.2.1 山羊BCL10基因克隆 RNAsimple Total RNA Kit提取初生羔羊脾臟組織RNA,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測總RNA完整性,核酸測定儀測定總RNA純度及濃度,260/280 nm處的OD比值在1.80~2.00為宜。FastQuant RT Kit反轉(zhuǎn)錄形成cDNA。以GenBank中山羊BCL10基因預(yù)測序列(登錄號:XM_005678157.2)為模板,Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)擴(kuò)增BCL10基因cDNA中間區(qū)域引物(BCL10-F,BCL10-R)見表2。擴(kuò)增BCL10基因,1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定,膠回收PCR產(chǎn)物與pMD18T進(jìn)行連接,轉(zhuǎn)化后陽性克隆送上海生工生物工程有限公司測序。
表1 引物設(shè)計(jì)、生物信息學(xué)分析及統(tǒng)計(jì)軟件
采用5'RACE System for Rapid Ampli fi cation of cDNA Ends Version 2.0試劑盒獲得BCL10基因的5'端序列,以前測序cDNA序列為模板,設(shè)計(jì)5'-UTR引物(表2):A054-1(GSP1),A054-2(GSP2),A054-3(GSP3)。采用 SMARTer? RACE cDNA Amplification Kit試劑盒獲得該基因的3'端序列,設(shè)計(jì)3'-UTR引物(表2):3'649-1,3'649-2。按照試劑盒操作說明進(jìn)行BCL10基因5'端序列和3'端序列的擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物經(jīng)3%瓊脂糖凝膠電泳純化,膠回收PCR產(chǎn)物與pMD18T進(jìn)行連接,轉(zhuǎn)化后對陽性克隆送上海生工生物工程有限公司測序。
表2 山羊BCL10基因cDNA序列RACE擴(kuò)增引物序列信息
1.2.2BCL10基因序列生物信息學(xué)分析 根據(jù)材料1.1.4中生物信息學(xué)軟件及網(wǎng)絡(luò)工具,對羔羊BCL10基因完整cDNA序列的氨基酸序列、蛋白質(zhì)二結(jié)構(gòu)、蛋白結(jié)構(gòu)域、物種同源進(jìn)化樹分析,深入了解和預(yù)測BCL10基因的結(jié)構(gòu)和功能。
1.2.3BCL10基因組織表達(dá)譜分析 分別取5只系譜無親緣關(guān)系羔羊的肺臟、肝臟、頜下腺、脾臟、腎臟、胸腺及血液各30 mg左右,根據(jù)方法1.2.1提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄形成cDNA。根據(jù)已克隆BCL10基因序列為模板,Primer 5.0設(shè) 計(jì) 引 物( 表 3):BCL10-f,BCL10-r,β-actin-f,β-actin-r。引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。qRT-PCR反應(yīng)體系:SsoAdvanced SYBR Green supermix 10 μL、Forward primer(10 μmol/L)0.5 μL、Reverse primer(10 μmol/L)0.5 μL、cDNA 1 μL、RNase-free water 8 μL;反應(yīng)體系:95℃熱變性3 min;95℃ 10 s;55℃ 20 s;72℃20 s,39 個 循 環(huán),75℃延伸5 s。采用2-△△Ct法分析實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù),并用SPSS18.0進(jìn)行組織間單因素方差法分析,P<0.05表示組織間差異顯著。
1.2.4BCL10基因真核表達(dá)載體的構(gòu)建 以完整BCL10基因序列為模板,PCR擴(kuò)增BCL10基因CDS全長,上游引物B1的5'端加上BamHⅠ酶切位點(diǎn);下游引物B2的5'端加上HindⅢ 酶切位點(diǎn)。PEGFP-N1載體經(jīng)BamHⅠ和PstⅠ雙酶切后,加入上述PCR產(chǎn)物,T4連接酶的作用下16℃連接過夜,連接入PEGFP-N1載體構(gòu)建重組質(zhì)粒PEGFP-N1-BCL10。然后將構(gòu)建好的PEGFP-N1-BCL10重組質(zhì)粒瓊脂糖凝膠檢測回收并轉(zhuǎn)化到大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞中篩選陽性克隆,PCR擴(kuò)增,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測目的條帶,上海生工生物工程有限公司測序鑒定。
1.2.5 重組真核質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞 接種HEK293T細(xì)胞于24孔板中,每孔細(xì)胞濃度為2×105個/mL,加500 μL不含抗生素的10% FBS DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)過夜;加入1 mL Opti-MEM洗細(xì)胞,重復(fù)1次,為細(xì)胞轉(zhuǎn)染做好準(zhǔn)備。以轉(zhuǎn)染PEGFP-N1-BCL10作為實(shí)驗(yàn)組、PEGFP-N1作為陰性對照組、未轉(zhuǎn)染作為空白對照組,分別加入50 μL Opti-MEM培養(yǎng)基預(yù)混合,再加入1 mL Opti-MEM培養(yǎng)基稀釋混勻;取2 μL Lipofectamine?ipofe 脂質(zhì)體與 50 μL Opti-MEM 培養(yǎng)基稀釋混勻,室溫孵育5 min;將稀釋好的3個實(shí)驗(yàn)組質(zhì)粒與稀釋好的脂質(zhì)體混勻,室溫孵育20 min;將混勻的100 μL混合物小心加入到24孔板的細(xì)胞孔中,輕輕搖晃細(xì)胞板混勻,置于37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng);轉(zhuǎn)染4~6 h后,將培養(yǎng)基更換為新鮮培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng);轉(zhuǎn)染72 h后,通過熒光顯微鏡觀察轉(zhuǎn)染效率。
2.1BCL10基因克隆 獲得5只初生羔羊脾臟組織總RNA,質(zhì)量均較好(圖1)。選取濃度最高一份RNA反轉(zhuǎn)錄cDNA,PCR擴(kuò)增BCL10基因中段cDNA約為600 bp片段(圖2-A)。膠回收,構(gòu)建質(zhì)粒測序獲得BCL10基因中段cDNA區(qū)域包括620 bp。5'RACE和3'RACE由中段向兩端擴(kuò)增分別約為300 bp,構(gòu)建質(zhì)粒測序獲得BCL10基因5'、3'兩端序列各328 bp和322 bp(圖2-B和2-C)。3段序列組合拼接得到BCL10基因CDS區(qū)域全長693 pb,5'-UTR長度為161 pb,3'-UTR長度為169 bp,cDNA全長為1 023 bp。
圖1 羔羊脾臟總RNA瓊脂糖凝膠電泳圖
2.2BCL10基因生物信息學(xué)分析
2.2.1BCL10基因一級結(jié)構(gòu)特征分析 初生羔羊BCL10基因共編碼230個氨基酸(圖3)。用Expasy在線軟件分析結(jié)果顯示山羊BCL10蛋白的分子量為25 995.3 ku,等電點(diǎn)是5.54,負(fù)電荷殘基(Asp+Glu)總數(shù)為38,正電荷殘基(Arg+Lys)總數(shù)為32。BCL10蛋白的分子式為C1129H1830N322O366S7,共由3 654個原子組成,不穩(wěn)定指數(shù)為64.15,表明BCL10蛋白是不穩(wěn)定蛋白,脂溶性指數(shù)為79.30,總的平均親水計(jì)算結(jié)果為-0.711。由于BCL10蛋白氨基酸末端N殘基為甲硫氨酸(Met)滿足“N端學(xué)說”,所以預(yù)測的BCL10蛋白半衰期,在體外哺乳動物網(wǎng)狀細(xì)胞中為30 h,在酵母體內(nèi)大于20 h,在大腸桿菌體內(nèi)大于10 h。
表3 山羊BCL10基因CDS擴(kuò)增及載體鑒定引物序列信息
圖2 羊BCL10基因cDNA擴(kuò)增產(chǎn)物
圖3 初生羔羊BCL10基因cDNA 的完整序列及其編碼蛋白的氨基酸序列
2.2.2BCL10基因二級結(jié)構(gòu)預(yù)測 用NPS@在線預(yù)測BCL10蛋白的二級結(jié)構(gòu)(圖4),結(jié)果顯示氨基酸序列含39.13%的α螺旋(Alpha Helix),5.22%的延伸帶(Extended Strand),53.91%的隨機(jī)卷曲區(qū)域(Random Coil),1.74%的模糊區(qū)域(Ambiguous States)。
圖4 出生羔羊BCL10蛋白二級結(jié)構(gòu)預(yù)測
2.2.3BCL10基因定位分析 用NCBI預(yù)測的BCL10蛋白序列保守區(qū)域(Conserved Domains)結(jié)果顯示,在17~100 aa左右存在CARD,類似于DD。利用TMHMM Server v.2.0分析BCL10蛋白的跨膜區(qū),結(jié)果表明aa屬于跨膜區(qū)域機(jī)率為零,非跨膜蛋白或膜內(nèi)蛋白(圖5)。利用NetPhos軟件預(yù)測初生羔羊BCL10蛋白磷酸化位點(diǎn)結(jié)果,磷酸化電勢閾值為0~1,當(dāng)磷酸化電勢位于紅線上方即閾值>0.5時,則該位點(diǎn)有可能被磷酸化(圖6)。山羊BCL10蛋白的230個氨基酸中,可能被磷酸化的位點(diǎn)一共有29個,包括絲氨酸(Ser)位點(diǎn)20個以及蘇氨酸(Thr)位點(diǎn)9,其中絲氨酸接近磷酸電勢1的比例最大,這些絲氨酸位點(diǎn)被磷酸化的概率非常大,主要集中在50 aa和150 aa位置。蛋白糖基化位點(diǎn)預(yù)測結(jié)果發(fā)現(xiàn),山羊BCL10蛋白序列可能含有9個潛在的糖基化位點(diǎn),分別是4、7、59、136、161、182、186、189、190 aa,當(dāng)閾值大于0.5時就可能被糖基化,其中161和189氨基酸糖基化的可能性最高,分別為0.628 9和0.627 6。WolFPSORT預(yù)測山羊BCL10蛋白細(xì)胞定位結(jié)果表明,在32個同源較近的蛋白中,細(xì)胞核定位值為8.5,細(xì)胞質(zhì)定位值18.5,細(xì)胞質(zhì)和核中都有的定位值為15,胞外定位值為3。說明BCL10蛋白極大可能在細(xì)胞質(zhì)中發(fā)揮作用。初生羔羊BCL10蛋白信號肽的預(yù)測結(jié)果顯示,剪切位置分值(C-score)、信號肽分值(S-score)和(Y-score)分值都小于基準(zhǔn)閾值0.5,所以山羊BCL10蛋白沒有信號肽(圖7)。
圖5 初生羔羊BCL10蛋白跨膜結(jié)構(gòu)預(yù)測
圖6 初生羔羊BCL10蛋白磷酸化位點(diǎn)分布
圖7 初生羔羊BCL10蛋白信號肽預(yù)測
2.2.4BCL10基因進(jìn)化樹分析 用MEGA5.0對10種不同哺乳動物的BCL10蛋白做了進(jìn)一步同源分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)山羊BCL10與水牛和綿羊的親緣關(guān)系最近( 圖8)。水 牛(GenBank:XP_006080537.1)、 綿 羊(GenBank:XP_004002198.1)、家牛(GenBank:NP_001071496.1)、馬(GenBank:XP_001495228.2)、人(GenBank:NP_003912.1)、家兔(GenBank:XP_008263174.1)、野豬(GenBank:NP_001096683.1)、大鼠(GenBank:NP_112618.1)以及小鼠(GenBank:NP_033870.1)之間的同源性分別為53%、41%、100%、100%、39%、35%、99%。
2.3BCL10基因在山羊不同組織中的相對表達(dá)量 由圖9可知,BCL10基因mRNA在肺臟、肝臟、頜下腺、脾臟、腎臟、胸腺和血液中均有表達(dá),其中頜下腺中表達(dá)最高,胸腺次之,其次為腎臟、脾臟、肺臟、肝臟、血液。頜下腺中BCL10基因表達(dá)量顯著高于肺臟、肝臟、脾臟、腎臟及血液(P<0.05);而與胸腺差異不顯著(P>0.05)。胸腺中BCL10基因表達(dá)量顯著高于血液(P<0.05);與肺臟、肝臟、脾臟及腎臟中表達(dá)量差異不顯著(P>0.05)。
圖8 不同物種BCL10基因進(jìn)化樹
圖9 BCL10基因在山羊不同組織中的表達(dá)
2.4 真核表達(dá)質(zhì)粒pEGFP-N1-BCL10的鑒定 將構(gòu)建好的pEGFP-N1-BCL10轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,篩選陽性克隆,提取質(zhì)粒直接進(jìn)行測序鑒定,測序片段與克隆序列大小完全一致(圖10)。說明BCL10基因已經(jīng)成功插入pEGFP-N1表達(dá)載體中,且位置和讀碼框均正確。
2.5 重組真核質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞 利用熒光顯微鏡對轉(zhuǎn)染pEGFP-N1-BCL10質(zhì)粒的HEK293T細(xì)胞從12 h開始進(jìn)行隔天觀察,發(fā)現(xiàn)在轉(zhuǎn)染72 h后,轉(zhuǎn)染pEGFP-N1-BCL10實(shí)驗(yàn)組和pEGFP-N1陰性對照組均出現(xiàn)綠色熒光,未轉(zhuǎn)染空白對照組細(xì)胞無綠色熒光(圖11)。證明重組質(zhì)粒成功轉(zhuǎn)入細(xì)胞中并能夠正常表達(dá)。
圖10 真核重組質(zhì)粒pEGFP-N1-BCL10中BCL10 CDS凝膠電泳鑒定
圖11 pEGFP-N1-BCL10和pEGFP-N1轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞72 h后顯微鏡白光和熒光檢測(200×)
BCL10基因是哺乳動物及鳥類免疫反應(yīng)中重要的細(xì)胞凋亡調(diào)節(jié)基因。該基因高表達(dá)于淋巴細(xì)胞及邊緣區(qū)域的B細(xì)胞,參與黏膜相關(guān)淋巴組織(MALT)淋巴瘤的發(fā)生發(fā)展,能夠促進(jìn)細(xì)胞成熟、誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡等過程[4-5,15]。而此,該基因在機(jī)體各個器官中均有表達(dá),且在骨髓、胸腺、脾臟等免疫器官中高表達(dá)并發(fā)揮重要的免疫作用[16]。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),BCL10基因參與免疫系統(tǒng)行使免疫功能首先要通過自身磷酸化實(shí)現(xiàn)[8-9],且只有全長轉(zhuǎn)錄條件下,才能活化Caspase-9或者介導(dǎo)LPS/TLR4途徑激活NF-κB信號通路[17],促進(jìn)B細(xì)胞增殖和成熟從而參與適應(yīng)性免疫和先天免疫反應(yīng)[18-19]。
3.1BCL10基因克隆與生物信息學(xué)分析 本研究通過初生羔羊脾臟組織中BCL10基因克隆,得到BCL10基因全長1 023 bp,其中CDS為693 bp,編碼230個氨基酸。通過生物信息分析發(fā)現(xiàn),BCL10蛋白等電點(diǎn)為正,穩(wěn)定性較差,脂溶性較高,其預(yù)測結(jié)果對以后BCL10蛋白質(zhì)等電點(diǎn)鹽析及分離有重要作用。BCL10蛋白的半衰期預(yù)測對于后續(xù)的體外過表達(dá)、干擾等載體構(gòu)建及檢測時間實(shí)驗(yàn)提供了參考。二級結(jié)構(gòu)預(yù)測結(jié)果顯示BCL10蛋白沒有雙鏈β-螺旋,而存在α-螺旋和無規(guī)卷曲結(jié)構(gòu)。膜結(jié)合蛋白的純化結(jié)晶難度大,外源表達(dá)困難所以分析預(yù)測出BCL10屬于非膜結(jié)合蛋白,此對后續(xù)的BCL10基因的蛋白純化及過表達(dá)等研究具有重要的借鑒。糖基化預(yù)測和信號肽檢測發(fā)現(xiàn),不存在信號肽序列,說明山羊BCL10蛋白不是分泌蛋白,其作用在于細(xì)胞內(nèi),與已有的研究相似[1-2]。結(jié)合山羊BCL10生物信息學(xué)預(yù)測結(jié)果,推斷山羊BCL10蛋白是一種在細(xì)胞質(zhì)中合成并停留在胞質(zhì)內(nèi)作用的非分泌、非膜結(jié)合、N端存在CARD結(jié)構(gòu)域的蛋白。這一結(jié)果初步揭開BCL10基因的主要功能結(jié)構(gòu)域所編碼的蛋白質(zhì)的特點(diǎn),為進(jìn)一步闡明該基因在山羊免疫系統(tǒng)中扮演的重要角色提供了可靠的參考。同源進(jìn)化樹分析山羊BCL10蛋白與水牛和綿羊的親緣關(guān)系最為接近,無疑為山羊借鑒免疫生理現(xiàn)象找到了可靠的參考家畜類型。
3.2BCL10基因羔羊組織表達(dá)比較 本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),BCL10基因在羔羊頜下腺表達(dá)最高,在其他文獻(xiàn)中尚未報(bào)道,羔羊出生后由于哺乳原因極大地刺激了唾液腺發(fā)育,其中可引起腺體細(xì)胞NF-κB信號通路激活,促進(jìn)細(xì)胞成熟和凋亡,而調(diào)控此通路的上游基因則有可能是BCL10基因[7,20]。此外,由于頜下腺除了含有大量腺細(xì)胞以外,還有部分淋巴細(xì)胞,頜下腺快速發(fā)育也能促進(jìn)淋巴細(xì)胞增殖,從而伴隨有BCL10基因高表達(dá)情況[21]。頜下腺位置與淋巴結(jié)靠近,可能具有淋巴結(jié)相似的免疫功能[5,22-23],但需要進(jìn)一步證明。此外,胸腺中BCL10基因表達(dá)量較高,這與何建鋒等[13]在大白豬上發(fā)現(xiàn)BCL10基因組織表達(dá)譜研究結(jié)果基本一致,說明羔羊出生后,胸腺器官在先天免疫過程中起著重要的作用。脾臟、腎臟中的表達(dá)則與豬上表達(dá)情況有所出入,這可能是由于物種特異性造成的組織器官免疫功能強(qiáng)弱的差異,需要進(jìn)一步研究。血液中BCL10基因的表達(dá)量最低,這可能是由于BCL10基因主要調(diào)節(jié)和參與B細(xì)胞成熟和增殖[7,15,24],從而起免疫應(yīng)答作用,而游離在血液中的免疫細(xì)胞包括嗜酸性粒細(xì)胞、嗜堿性粒細(xì)胞、淋巴細(xì)胞等白細(xì)胞,而非免疫B細(xì)胞,除非存在血管組織損傷,否則表達(dá)極少。
3.3 BCL10重組載體真核表達(dá)鑒定 本研究成功地將BCL10基因構(gòu)建到帶有綠色熒光標(biāo)記的真核表達(dá)載體pEGFP-N1中,實(shí)現(xiàn)了BCL10蛋白的瞬時表達(dá)。由于山羊的pEGFP-N1-BCL10重組表達(dá)載體未見報(bào)道,該質(zhì)粒的重組為該蛋白的穩(wěn)定表達(dá)和單克隆抗體的制備與篩選提供了寶貴原始材料,對于后續(xù)研究基因功能和指導(dǎo)培育優(yōu)良抗病的山羊品系具有深遠(yuǎn)的意義。
本研究首次克隆了山羊BCL10基因序列,并對其生物信息學(xué)功能進(jìn)行了分析,檢測了其在免疫相關(guān)組織中的表達(dá)分布情況,構(gòu)建了表達(dá)重組載體。研究表明了BCL10在山羊中的基本情況,為進(jìn)一步探索山羊BCL10基因在免疫系統(tǒng)中的作用和功能提供參考價(jià)值,同時,對于今后培育優(yōu)良抗病山羊品種給予指導(dǎo)意義。
參考文獻(xiàn):
[1] Zhang Q, Cui X, Siebert R. BCL10, a novel caspase recruitment domain (CARD)-containing gene, overexpressed in MALT lymphoma with t(1;14) (p22;q32)[J]. Blood, 1998, 92(10): 508.
[2] Yoshida H, Hara H, Nakaya M. Activation of the Syk-CARD9-Bcl10-mediated novel innate immune system is critically involved in defense against leishmania major infection[J].Cytokine, 2012, 59(3): 501.
[3] Willis T G, Jadayel D M, Du M Q. Bcl10 is involved in t(1;14)(p22;q32) of MALT B cell lymphoma and mutated in multiple tumor types[J]. Cell, 1999, 96(1): 35-45.
[4] Sagaert X, Laurent M, Baens M. MALT1 and BCL10 aberrations in MALT lymphomas and their effect on the expression of BCL10 in the tumour cells[J]. Modern Pathology, 2006, 19(2):225-232.
[5] Juilland M, Thome M. Role of the CARMA1/BCL10/MALT1 complex in lymphoid malignancies[J]. Current Opinion In Hematology, 2016, 23(4): 402-409.
[6] Turvey S E, Durandy A, Fischer A. The CARD11-BCL10-MALT1 (CBM) signalosome complex: Stepping into the limelight of human primary immunodeficiency[J]. J All Clin Immunol, 2014, 134(2): 276-284.
[7] Chiarini A, Liu D S, Armato U. Bcl10 crucially nucleates the pro-apoptotic complexes comprising PDK1, PKC zeta and caspase-3 at the nuclear envelope of etoposide-treated human cervical carcinoma C4-I cells[J]. Int J Mol Med, 2015, 36(3):845-856.
[8] Rueda D, Gaide O, Ho L Z. Bcl10 controls TCR- and Fc gamma R-induced actin polymerization[J]. J Immunol, 2007, 178(7):4373-4384.
[9] Ishiguro K, Ando T, Goto H. Bcl10 is phosphorylated on Ser138 by Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II[J]. Mol Immunol, 2007, 44(8): 2095-100.
[10] Wu W, Zhen Z H, Niu T T. κ-Carrageenan enhances lipopolysaccharide-induced interleukin-8 secretion by stimulating the Bcl10-NF-kappa B pathway in HT-29 Cells and Aggravates C. freundii-induced inflammation in mice[J]. Media Inflamm,2017, 2017: 8634865.
[11] Dyer M J S, Price H P, Jadayel D M. In response to Fakruddin et al. and Apostolou et al[J]. Cell, 1999, 97(6): 686-688.
[12] Lee M A, Keane O M, Glass B C. Establishment of a pipeline to analyse non-synonymous SNPs in Bos taurus[J]. BMC Genomics, 2006, 7:298.
[13] 何建鋒, 張彥明, 段會娟. 人天然免疫基因BCL10的豬同源物的識別、克隆與初步表達(dá)分析[J]. 遺傳, 2008(6): 747-754.
[14] 孫柏, 李燕麗, 張亞杰. 雞BCL10基因的克隆與表達(dá)[J]. 中國獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2011(4): 533-538.
[15] Tibiletti M G, Martin V, Bernasconi B. BCL2, BCL6, MYC,MALT 1, and BCL10 rearrangements in nodal diffuse large B-cell lymphomas: a multicenter evaluation of a new set of fluorescent in situ hybridization probes and correlation with clinical outcome[J]. Human Pathology, 2009, 40(5): 645-652.
[16] Vito P, Stilo R. 1999-2014: 15 years of BCL10[J]. Immunol Lett, 2014, 160(1): 102-103.
[17] Tian M T, Gonzalez G, Scheer B. Bcl10 can promote survival of antigen-stimulated B lymphocytes[J]. Blood, 2005, 106(6):2105-2112.
[18] Yoneda T, Imaizumi K, Maeda M. Regulatory mechanisms of TRAF2-mediated signal transduction by Bcl10, a MALT lymphoma-associated protein[J]. J Biol Chem, 2000, 275(15):11114-11120.
[19] Xue L Q, Morris S W, Orihuela C. Defective development and function of Bcl10-deficient follicular, marginal zone and B1B cells[J]. Nature Immunol, 2003, 4(9): 857-865.
[20] Moreno-Garcia M E, Sommer K, Rincon-Arano H. Kinaseindependent feedback of the TAK1/TAB1 complex on BCL10 turnover and NF-kappa B activation[J]. Mol Cell Biol, 2013,33(6): 1149-1163.
[21] Nguyen C Q, Gao J H, Kim H. IL-4-STAT6 signal transductiondependent induction of the clinical phase of Sjogren's Syndrome-like disease of the nonobese diabetic mouse[J]. J Immunol, 2007, 179(1): 382-390.
[22] Tibiletti M, Martin V, Bernasconi B. Bcl2, Bcl6, MYC,MALT 1 and Bcl10 rearrangements in nodal diffuse large B-cell lymphomas: A multicenter evaluation of a new set of fish probes and correlation with clinical outcome]J]. Annals Oncology, 2008, 19: 168-169.
[23] 朱建華, 李佳宜, 李維善. 枸杞多糖干預(yù)糖尿病大鼠頜下腺組織中核因子κB的表達(dá)[J]. 中國組織工程研究, 2012(42):7940-7944.
[24] Ma Y, Liao Z W, Xu Y. Characteristics of CARMA1-BCL10-MALT1-A20-NF-kappa B expression in T cell-acute lymphocytic leukemia[J]. Eur J Med Res, 2014, 19:62.