李麗琪，徐華容，劉 陽(yáng)，李 瀟，蔡 依，阮金蘭

(1武昌理工學(xué)院生命科學(xué)院/生物多肽糖尿病藥物湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心，武漢 430223；2武漢工程大學(xué)化工與制藥學(xué)院，武漢 430073)

骨骼肌和肝臟是葡萄糖攝取的主要靶器官[1-5]，當(dāng)骨骼肌和/或肝臟對(duì)葡萄糖的使用發(fā)生異常時(shí)，胰島素抵抗的發(fā)生機(jī)率將提高[6]，所以探究HepG2用于建立體外胰島素抵抗模型探索核桃多肽促葡萄糖吸收以及改善胰島素抵抗的機(jī)制具有重要的意義。

1 試驗(yàn)材料

1.1 試驗(yàn)材料

L6細(xì)胞、HepG2細(xì)胞，中南民族大學(xué)藥學(xué)院藥理實(shí)驗(yàn)室；HT多肽、HT-1、HT-2，武昌理工學(xué)院生物多肽糖尿病藥物湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心自制(HT多肽批號(hào)：20141218；HT-1批號(hào)：20150816；HT-2批號(hào)：20150816)。

1.2 試驗(yàn)試劑

MEM-α培養(yǎng)基、胎牛血清，美國(guó)Hyclone公司；SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液，碧云天生物技術(shù)研究所；葡萄糖攝取細(xì)胞的測(cè)定試劑盒、葡萄糖攝取細(xì)胞的測(cè)定試劑盒、ECL化學(xué)發(fā)光檢測(cè)試劑盒，Amersham-Pharmacia，Piscataway，USA；甘油、過(guò)氧硫銨、Tris-HCl、無(wú)菌PBS溶液、二甲亞砜，國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；聚偏氟乙烯膜，Pall Corporation，Washington，USA；RIPA組織/細(xì)胞裂解液，北京陽(yáng)光生物科技有限公司；BCA蛋白含量測(cè)定試劑盒，美國(guó)Abgent公司；門(mén)冬胰島素注射液，丹麥諾和諾德公司；IRS-1抗體、p-IRS-1抗體、IRβ抗體、GLUT2抗體、β-actin抗體、Anti-rabbit IgG、Anti-mouse IgG，美國(guó)Cell Signaling公司；胰酶，美國(guó)GIBCO公司；雙抗溶液，上海suer生物科技有限公司；丙烯酰胺、十二烷基硫酸鈉、甘氨酸、四甲基已二胺、溴酚藍(lán)、二硫代蘇糖醇、甲醇、氨基丁三醇，美國(guó)Tedia公司。

1.3 試驗(yàn)儀器

Bio-RAD凝膠成像系統(tǒng)，美國(guó)Bio-Rad公司；Gel Image系統(tǒng)，APLEGEN，INC，USE；超凈臺(tái)，鄭州宏朗儀器有限公司；CO2培養(yǎng)箱，上海博訊實(shí)業(yè)有限公司；XSM-20生物顯微鏡，寧波順宇儀器有限公司；酶標(biāo)儀，美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司；WH-1微型漩渦混合儀，江蘇盛藍(lán)儀器制造有限公司；電泳儀，北京六一儀器廠；YXQ-LS-100 S II高溫高壓蒸汽滅菌鍋，濟(jì)南思卓醫(yī)療儀器制造有限公司。

2 試驗(yàn)方法

2.1 HT蛋白、HT多肽、HT-1、HT-2活性篩選

2.1.1 GLUT4轉(zhuǎn)膜活性篩選[7]含有pIRAP-mOrange cDNAs的質(zhì)粒通過(guò)lipofectamineTM 2000轉(zhuǎn)染入L6細(xì)胞，轉(zhuǎn)染操作依照試劑盒說(shuō)明進(jìn)行。將穩(wěn)定表達(dá)IRAP-mOrange(L6 IRAP-mOrange)的L6細(xì)胞培養(yǎng)于含10%胎牛血清和1%雙抗的α-MEM培養(yǎng)液中，隔天換液，于細(xì)胞培養(yǎng)箱中37℃、5%CO2條件下進(jìn)行培養(yǎng)。實(shí)驗(yàn)前，細(xì)胞于48孔板中按照15 000個(gè)細(xì)胞/孔培養(yǎng)至融合狀態(tài)，然后無(wú)血清饑餓培養(yǎng)4h。分別加入100 nmol的胰島素和待篩選50μg/mL的HT多肽、HT-1、HT-2(胰島素作為陽(yáng)性對(duì)照藥，每個(gè)樣品重復(fù)3次)，在0～30min之間，每5min拍攝1張，采用激光共聚焦掃描顯微鏡下觀察IRAP-mOrange的轉(zhuǎn)運(yùn)上膜變化，實(shí)驗(yàn)中采用不加入Ca2+的觀測(cè)模式，采用555 nm的激光通道。以細(xì)胞膜上熒光強(qiáng)度作為測(cè)量指標(biāo)，用SPSS和Excel統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)整理和統(tǒng)計(jì)，多組間顯著性差異比較。

2.1.2 L6肌管細(xì)胞葡萄糖攝取活性篩選[8-9]L6成纖維細(xì)胞在含有10%胎牛血清、青霉素100 kU/L、鏈霉素100mg/L的高糖DMEM培養(yǎng)基中，置于CO2培養(yǎng)箱(37℃、5% CO2)培養(yǎng)，細(xì)胞長(zhǎng)至80%左右傳代。換用2%胎牛血清、青霉素100 kU/L、鏈霉素100mg/L的α-MEM培養(yǎng)基中進(jìn)行分化，每48h換液1次。至第7天成纖維細(xì)胞90%以上分化為肌管細(xì)胞。將細(xì)胞接種于96孔板中，待其100%鋪滿孔底，換用無(wú)糖、無(wú)血清培養(yǎng)基饑餓2h。配置含100μg/mL濃度HT多肽、HT-1、HT-2的α-MEM培養(yǎng)基(胰島素作為陽(yáng)性對(duì)照給藥濃度為100nmol)備用。L6細(xì)胞饑餓完成后，將每孔中培養(yǎng)基吸出，換用含藥物培養(yǎng)基，每孔加入100μL配置好的給藥培養(yǎng)基，孵育12h。隨后按照葡萄糖氧化酶試劑盒的說(shuō)明方法，分別取各孔上清培養(yǎng)液加2μL加入200μL反應(yīng)試劑中，37℃恒溫箱孵育30min，用酶標(biāo)儀在波長(zhǎng)為505 nm下檢測(cè)各孔吸光度，細(xì)胞葡萄糖攝取率=[(空白組OD-給藥組OD)/(空白組OD-未給藥組OD)]*100%。

2.2 HT多肽、HT-1、HT-2對(duì)高糖誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞 模型的影響[10]

2.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 配制培養(yǎng)基100mL(90%+10%胎牛血清+1mL雙抗)，復(fù)蘇HEPG2細(xì)胞至培養(yǎng)瓶中，于5%CO2、37℃、95%空氣飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，觀察細(xì)胞形態(tài)，待細(xì)胞完全貼壁后更換培養(yǎng)液，每3d按1∶3進(jìn)行細(xì)胞傳代，取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。當(dāng)細(xì)胞長(zhǎng)滿80%時(shí)，用1mL胰酶消化，消化完全后，加入5mL培養(yǎng)液終止消化，反復(fù)吹打均勻并吸取2mL于10mL EP管中，用普通DMEM培養(yǎng)基稀釋5倍，均勻接種于96孔板，每孔150μL，24 h后棄去上清液。

2.2.2 高糖培養(yǎng)基的配制 配制120mmol/L的高糖培養(yǎng)基為母液，精密稱取171.2mg溶于10mL新鮮含酚紅培養(yǎng)基中，用0.22μm濾頭過(guò)濾除菌。分別配制0、30、40、50、60、70、80、90、100、120mmol/L高糖培養(yǎng)基。

2.2.3 高糖培養(yǎng)基的誘導(dǎo) 吸取掉廢棄培養(yǎng)基，換新配制的高糖培養(yǎng)液，每個(gè)濃度6個(gè)復(fù)孔，每孔15μL，普通DMEM培養(yǎng)基為對(duì)照，放置培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24h后，吸取掉高糖培養(yǎng)基，為防止酚紅對(duì)結(jié)果的影響，用新鮮無(wú)酚紅培養(yǎng)基清洗1遍，并點(diǎn)板，每孔100μL，放置培養(yǎng)箱24h。

2.2.4 GOD-POD法測(cè)葡萄糖吸收 從培養(yǎng)板中取2μL細(xì)胞培養(yǎng)液與200μL工作液于另一個(gè)96孔板混合，沒(méi)有細(xì)胞的無(wú)酚紅培養(yǎng)基為空白對(duì)照，在37℃反應(yīng)30min，用酶標(biāo)儀在505nm處測(cè)定吸光度，吸光度值越大，含糖量越高，選用葡萄糖消耗量最大時(shí)的葡萄糖添加量為最佳濃度的高糖培養(yǎng)基。

2.2.5 細(xì)胞給藥 以2.2.4中得到的最佳效果的溶度建立模型，配制高糖培養(yǎng)基15mL，按2.1.1培養(yǎng)細(xì)胞，精密稱取HT多肽凍干粉、HT-1、HT-2各1.0mg溶于10μL DMSO中，用無(wú)酚紅培養(yǎng)基稀釋，配制濃度為100μg/mL的培養(yǎng)液1mL，分別給藥點(diǎn)板，每孔100μL，設(shè)置6個(gè)復(fù)孔，以5μg/mL的小檗堿為對(duì)照，高糖培養(yǎng)基為對(duì)照組，放置培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24h。吸取掉高糖培養(yǎng)基，用新鮮無(wú)酚紅培養(yǎng)基清洗1遍，并點(diǎn)板，每孔100μL，放置培養(yǎng)箱24h，新鮮無(wú)酚紅培養(yǎng)基為空白對(duì)照，按2.1.4測(cè)葡萄糖吸收。選擇給藥效果最好的樣品，設(shè)置3個(gè)濃度梯度，重復(fù)實(shí)驗(yàn)。

2.3 蛋白質(zhì)印跡分析[11]

2.3.1 高糖、低胰島素刺激誘導(dǎo)HepG2-IR細(xì)胞模型的建立 配制培養(yǎng)基200mL(90%普通培養(yǎng)基+10%胎牛血清+2mL雙抗)，培養(yǎng)細(xì)胞，待長(zhǎng)滿80%～90%時(shí)，從培養(yǎng)瓶中取4mL，用普通DMEM培養(yǎng)基稀釋至10mL，于6孔板點(diǎn)板，每孔2mL，培養(yǎng)24h后，實(shí)驗(yàn)組為優(yōu)選出的最佳濃度高糖培養(yǎng)液培養(yǎng)，對(duì)照組仍用普通DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)，24h后用室溫預(yù)熱的PBS沖洗2遍后，用含100nmol/L胰島素的普通DMEM培養(yǎng)基孵育10min(放置5%CO2，37℃培養(yǎng)箱)。

2.3.2 細(xì)胞給藥 選用3.3.2中效果最佳的樣品精密稱取1.0mg，用10μL DMSO超聲使充分溶解后，于普通DMEM培養(yǎng)基稀釋，分別配制終濃度為50、100μg/mL的含藥培養(yǎng)基2mL，以5μg/mL的小檗堿為對(duì)照組，空白對(duì)照孔仍用普通DMEM培養(yǎng)基，每孔2mL，培養(yǎng)24h。

2.3.3 Westernblot檢測(cè)蛋白表達(dá)

實(shí)驗(yàn)步驟：潤(rùn)洗→檢漏→上分離膠→除氣泡→封滿靜置使凝膠→上濃縮膠→插梳→靜置使凝膠→拔梳→上樣→跑膠→轉(zhuǎn)膜→封膜→敷一抗→敷二抗→顯影

BCA法繪制蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線圖：按50體積BAC試劑A加1體積BAC試劑(50∶1)配制適量的BCA工作液，充分混勻(室溫24h使用完)。完全溶解的蛋白標(biāo)準(zhǔn)品，取10μL用PBS稀釋100μL，使終濃度為0.5mg/mL，將標(biāo)準(zhǔn)品按0、1、2、4、8、12、16、20μL加到96孔板中，加PBS稀釋到20μL，各孔再加BCA工作液200μL，37℃放置30min。用酶標(biāo)儀檢測(cè)波長(zhǎng)562nm吸光度，繪制蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線。

藥物干預(yù)24h后，棄去培養(yǎng)液，用PBS將細(xì)胞洗3遍，分別轉(zhuǎn)入2mL EP管中，放入離心機(jī)2 000r離心10min，去掉上清液留底部細(xì)胞，每孔加入100μL裂解液用槍吹打數(shù)下，使裂解液和細(xì)胞充分接觸，置冰上40min，期間每隔10min用振蕩儀振蕩1次。充分裂解后，12 000r離心10min，取上清液即為細(xì)胞總蛋白，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線檢測(cè)蛋白濃度，剩余蛋白經(jīng)緩沖液處理、蛋白變性。

2.3.4 十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳實(shí)驗(yàn) 選擇1.5cm的制膠板，清洗干凈晾干后組裝好垂直電泳板，去離子水潤(rùn)洗并加滿檢漏，20min后液面沒(méi)有下降，倒掉去離子水，每邊用移液槍加入8%分離膠1 000μL*6，緩慢加入200μL異丙醇除氣泡，去離子水封滿，靜置30min，倒掉制膠器中液體，加滿濃縮膠，迅速插入樣梳，將整個(gè)制膠器放入透明槽內(nèi)，加滿1*Running Buffer，靜置30min拔梳，去除蛋白樣品，溫水浴解凍，取等量蛋白樣品30μg上樣(根據(jù)蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線換算為體積)，插上電極，在80V電壓下跑膠40min，切換電壓120V，跑膠2h。

2.3.5 轉(zhuǎn)膜 電泳結(jié)束后，采用濕轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移至NC膜上，用含5%脫脂奶粉的TBST溶液室溫?fù)u床30r封閉2h封膜，將切割大小與凝膠大小一致的PVDF膜置于無(wú)水甲醇中浸泡3min，將泡好的PVDF膜及濾紙放于轉(zhuǎn)移緩沖液中，約30～60min，排凈膜上空氣，按3層濾紙、PVDF膜、凝膠、3層濾紙的順序從下到上放入轉(zhuǎn)膜儀中，恒定電流300mA下電轉(zhuǎn)1.5h。

2.3.6 封閉 轉(zhuǎn)膜結(jié)束后，將PVDF膜浸泡于5%脫脂牛奶中封閉液，完全排除氣泡后，低速搖床30r室溫封閉2 h，封閉完成后洗膜。

2.3.7 蛋白抗體的孵育 將封閉后的PVDF膜浸沒(méi)于相應(yīng)蛋白的一抗(1∶2 000)4℃搖床低速30r孵育1夜，p-IRS-1抗體孵1天2夜，β-actin 2 h，孵育結(jié)束后，棄去封閉液，用TBST室溫震搖洗膜，將PVDF膜浸于用適量TBST按1∶5 000稀釋的二抗溶液中，在室溫下孵育1h。結(jié)束孵育后，用TBST洗液室溫振搖洗膜3次，每次10min。

2.3.8 顯影 將含蛋白面的PVDF膜置朝上放置潔凈的玻璃皿上，并將ECL化學(xué)發(fā)光試劑A液和B液等體積充分混合均勻，用移液槍吸取滴于PVDF膜蛋白面上，完全浸濕，室溫反應(yīng)1min，于ECL化學(xué)發(fā)光儀中曝光，曝光時(shí)間由目的蛋白的熒光強(qiáng)弱而定。印跡條帶利用Odyssey雙色紅外熒光成像系統(tǒng)對(duì)目的條帶進(jìn)行掃描，然后用Image軟件進(jìn)行條帶分析。

3 結(jié)果與討論

HT多肽、HT-1和HT-2在降糖生物活性上都有一定的作用，其中HT-2的降糖效果最為顯著。

3.1 GLUT4轉(zhuǎn)膜活性篩選

由圖1可知，HT多肽、HT-1、HT-2均有一定的促GLUT4活性，但是量效曲線分布趨勢(shì)不相同，其中趨勢(shì)分布較好的為HT-2，隨著時(shí)間延長(zhǎng)，促GLUT4轉(zhuǎn)膜效應(yīng)逐漸增加，核桃多肽促GLUT4上膜效應(yīng)很快，5min即達(dá)峰值，HT-2促GLUT4上膜效應(yīng)較慢，15min開(kāi)始響應(yīng)，30min達(dá)峰值。胰島素(100nmol)和小檗堿(BBR，5μg/mL)作為陽(yáng)性對(duì)照藥，均顯示很強(qiáng)的促GLUT4轉(zhuǎn)膜活性，轉(zhuǎn)膜提升倍數(shù)分別為2.66、2.46倍，說(shuō)明選擇的系統(tǒng)和構(gòu)建的模型成功；HT多肽、HT-1、HT-2以50μg/mL給藥均具有一定的促GLUT4轉(zhuǎn)膜活性(圖2)。運(yùn)用基于L6細(xì)胞GLUT4熒光標(biāo)記和轉(zhuǎn)染的促GLUT4轉(zhuǎn)位上膜篩選方法對(duì)HT多肽、HT-1、HT-2進(jìn)行了篩選，結(jié)果顯示，核桃多肽富集部位HT-2具有良好的促GLUT4轉(zhuǎn)位上膜活性，在25min細(xì)胞膜上GLUT4增加1倍(圖3)。

圖1 HT多肽、HT-1、HT-2對(duì)GLUT4轉(zhuǎn)膜的時(shí)間效應(yīng)

圖2 HT多肽、HT-1、HT-2對(duì)GLUT4轉(zhuǎn)膜的促進(jìn)作用

圖3 HT-2對(duì)L6細(xì)胞中GLUT4轉(zhuǎn)位的影響注：A給藥前L6細(xì)胞中GLUT4的分布情況；B給藥25min后L6細(xì)胞中GLUT4的分布情況；C給藥25min內(nèi)熒光值的變化；D給藥前和給藥25min后熒光值的變化；*P≤0.05，與給藥前相比較

3.2 L6肌管細(xì)胞葡萄糖攝取(消耗)活性篩選

由圖4可知，胰島素(100nmol)和小檗堿(BBR，5μg/mL)作為陽(yáng)性對(duì)照藥，在L6細(xì)胞上均顯示很強(qiáng)的葡萄糖攝取活性，攝取率分別為2.38、1.78，說(shuō)明選擇的系統(tǒng)和構(gòu)建的模型成功；HT-多肽、HT-1和HT-2均有一定的葡萄糖攝取活性，攝取率分別為1.16、1.06和1.36。

圖4 HT蛋白、HT-1、HT-多肽和HT-2葡萄糖攝取活性

3.3 不同濃度高糖誘導(dǎo)的HepG2葡萄糖消耗量的影響

與對(duì)照組相比，實(shí)驗(yàn)組的葡萄糖吸光度均有明顯的下降，綜合考慮葡萄糖用量，選用50mmol/L高糖誘導(dǎo)建立胰島素抵抗細(xì)胞模型(圖5)。

圖5 不同濃度高糖培養(yǎng)基誘導(dǎo)的HepG2細(xì)胞葡萄糖消耗量的影響

3.4 HT多肽、HT-1、HT-2對(duì)高糖誘導(dǎo)的HepG2葡萄糖消耗量的影響

50mmol/L的高糖培養(yǎng)基誘導(dǎo)后，不同組分的核桃多肽(100μg /mL)對(duì)HepG2細(xì)胞葡萄糖消耗量的影響，與空白對(duì)照組相比，實(shí)驗(yàn)組的吸光度均有一定的降低，陽(yáng)性組小檗堿有良好的降糖效果，實(shí)驗(yàn)組中HT-2效果相對(duì)較好(圖6)。

圖6 核桃多肽對(duì)高糖誘導(dǎo)的HepG2細(xì)胞葡萄糖消耗量的影響

3.5 HT-2對(duì)高糖誘導(dǎo)的HepG2葡萄糖消耗量的影響

與對(duì)照組和空白對(duì)照組相比，HT-2有一定的降糖作用，且隨著給藥濃度的加大，葡萄糖消耗量增加，即降糖作用與HT-2的濃度呈依賴性增加(圖7)。

圖7 不同濃度HT-2高糖誘導(dǎo)的HepG2細(xì)胞葡萄糖消耗量的影響

3.6 Westernblot檢測(cè)蛋白表達(dá)結(jié)果

蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線圖見(jiàn)附表、圖8。本研究通過(guò)蛋白印跡進(jìn)行HT-2改善脂質(zhì)代謝的體內(nèi)分子機(jī)制的研究，用一定濃度的HT-2處理胰島素抵抗的HepG2細(xì)胞，評(píng)估HT-2對(duì)IRβ、IRS-1、P-IRS-1、GLUT2的影響，與空白對(duì)照組相比，IRβ、IRS-1蛋白、GLUT2蛋白的表達(dá)水平呈濃度依賴性增加，圖9表明，HT-2通過(guò)胰島素信號(hào)傳導(dǎo)途徑改善葡萄糖代謝。

附表 標(biāo)準(zhǔn)蛋白吸光度數(shù)據(jù)

圖8 蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線

圖9 HT-2對(duì)高糖誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞胰島素受體蛋白、磷酸化胰島素受體蛋白、GLUT2蛋白表達(dá)水平的影響注：與正常組比較，+++P<0.001、++P<0.01、+P<0.03，與模型組比較，+++P<0.001、++P<0.01、+P<0.03

4 結(jié)論

根據(jù)GLUT4轉(zhuǎn)膜活性篩選和L6肌管細(xì)胞葡萄糖攝取活性篩選結(jié)果，HT多肽、HT-1和HT-2均顯示有一定的生物活性，其中HT-2轉(zhuǎn)膜活性和葡萄糖攝取活性相對(duì)較好；并且在高糖誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞檢測(cè)葡萄糖攝取實(shí)驗(yàn)中，HT-2的降糖效果也較HT多肽、HT-1的顯著。肝臟是用于儲(chǔ)存和釋放碳水化合物的主要組織，GLUT2存在于肝臟組織中，并且GLUT2易位可刺激葡萄糖的攝取，因此GLUT2在肝臟葡萄糖和脂質(zhì)代謝的調(diào)節(jié)中起著關(guān)鍵的作用，在蛋白質(zhì)印跡結(jié)果中可發(fā)現(xiàn)，HT-2可以上調(diào)糖尿病小鼠肝臟組織GLUT2蛋白水平，并對(duì)IRβ、IRS-1蛋白的表達(dá)水平具有一定的增強(qiáng)效果，表明HT-2對(duì)高糖誘導(dǎo)的胰島素抵抗HEPG2細(xì)胞具有有益作用，即通過(guò)胰島素信號(hào)通路改善肝臟糖脂代謝，包括改善葡萄糖耐量，降低高血糖并恢復(fù)胰島素水平。◇

[1]Qi SY，Zhang ZW，Zhao K，et al.Evaluation of walnut by terahertz nondestructive technology[J].Guang Pu Xue Yu Guang Pu Fen Xi，2012，32(12)：3390-3393.

[2]孫樹(shù)杰，王兆華，宋康，等.核桃營(yíng)養(yǎng)價(jià)值及功能活性研究進(jìn)展[J].中國(guó)食物與營(yíng)養(yǎng)，2013，19(5)：72-74.

[3]孫一.核桃多肽的抗氧化活性研究[D].長(zhǎng)春中醫(yī)藥大學(xué)，2013.

[4]郭世彪，程春梅.抗糖尿病藥物的研究現(xiàn)狀與展望[J].中國(guó)藥物與臨床，2014(8)：1066-1068.

[5]Bastien-Dionne PO，Valenti L，Kon N，et al.Glucagon-like peptide 1 inhibits the sirtuin deacetylase SirT1 to stimulate pancreatic beta-cell mass expansion[J].Diabetes，2011，60(12)：3217-3222.

[6]黃建華.2型糖尿病相關(guān)的代謝組學(xué)和生物信息學(xué)研究[D].中南大學(xué)，2014.

[7]張遠(yuǎn)遠(yuǎn).AMPK基因在2型糖尿病發(fā)病中的作用[D].北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院，2011.

[8]She S，Liu W，Li T，et al.Effects of puerarin in STZ-induced diabetic rats by oxidative stress and the TGF-beta1/Smad2 pathway[J].Food Funct，2014，5(5)：944-950.

[9]余華輝，張延潔.肌腱細(xì)胞培養(yǎng)方法的研究進(jìn)展[J].中國(guó)細(xì)胞生物學(xué)學(xué)報(bào)，2016(3)：312-321.

[10]李秀麗，賀嵩敏，朱瑩，等.HepG2細(xì)胞胰島素抵抗模型的建立與鑒定[J].中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志，2013，19(5)：203-207.

[11]萬(wàn)春平，魏雅改，李曉雪，等.胡椒堿對(duì)HepG2細(xì)胞胰島素抵抗模型糖代謝AMPK信號(hào)通路上游靶點(diǎn)干預(yù)機(jī)制的研究[J].中國(guó)中藥雜志，2017，42(3)：542-547.