金曄,袁海延,王好,周井祥,劉艷輝,李改娟,祖岫杰
(1.吉林農業(yè)大學動物科學技術學院,吉林長春130118;2.吉林省水產科學研究院,吉林長春130033)
錦鯉皰疹病毒病 (Koi Herpesvirus Diease,KHVD)是由錦鯉皰疹病毒 (Koi Herpesvirus,KHV)引起的一種高致病性和高死亡率的病毒性疾病,死亡率高達80%。KHVD是世界動物衛(wèi)生組織 (OIE)必報疾病之一[1],給中國及世界多個國家鯉和錦鯉養(yǎng)殖業(yè)造成了嚴重的經濟損失。目前,沒有可供使用的特效藥物來治療該種疾病,接種疫苗一直被認為是有效的治療病毒性疾病的手段,但免疫效果一直未能達到良好的目標效果[2]。
熱休克蛋白 (Heat shock protein,HSP)是細胞或生物體在各種不利條件 (包括缺氧、鹽度、重金屬、自由基、病毒感染)刺激下產生的與抗逆性相關的一類應激蛋白[3-5]。根據分子量和等電點的不同,劃分為七大家族:小 HSP、HSP40、HSP60、 HSP70、 HSP90、 HSP110和泛素[6]。 在免疫過程中,熱休克蛋白可以作為佐劑、抗原、抗原載體,能提高專一性免疫效果[7]。研究人員通過構建重組HSP-肽段復合體進行抗腫瘤免疫試驗發(fā)現(xiàn),HSP既具有增強免疫的功能,又具有免疫佐劑的一系列特征;在抗原呈遞中通過HSP將內源性和外源性抗原呈遞給MHCⅠ分子,專一啟動CD8+T 細胞, 激活 CTLs免疫應答[8-11]。
與其他HSP家族相比,HSP90家族含量豐富,具有非常高的保守性[12]。HSP90可與細胞中多種不同功能的蛋白結合形成復合物,調節(jié)細胞的活性,增強結構穩(wěn)定性[13]。當受到有害物質脅迫時,HSP90表達水平提高,產生熱耐受作為分子伴侶來幫助細胞,維持機體穩(wěn)態(tài)[14-15]。近年來,HSP所具有的免疫增強作用在核酸疫苗中應用廣泛。焦鳳平等[14]將重組質粒 PC-P6-gBCTL-HSP70與單純皰疹病毒Ⅱ型 (HSV-2)疫苗聯(lián)合免疫發(fā)現(xiàn),其具有同時增強體液免疫與細胞免疫的功能;李淑君[15]研究發(fā)現(xiàn),加入佐劑HSP65后與DNA質粒聯(lián)合,比單一滅活苗或單一DNA質粒誘導細胞免疫水平均高;Bolhassani等[16]研究發(fā)現(xiàn),HSPgp96作為佐劑與人體乳頭瘤E7(HPV E7蛋白)聯(lián)合免疫顯示,其具有特異性細胞免疫應答。因此,加入相關熱休克蛋白佐劑以提高核酸疫苗免疫效果是必不可少的。
目前,HSP90在作為水產動物免疫佐劑方面的應用還不常見。本研究中通過構建pEGFP-C1-HSP90真核表達載體,探究pEGFP-C1-HSP90作為免疫佐劑與pIRES-ORF81核酸疫苗 (吉林農業(yè)大學動物科學技術學院重點實驗室基于KHV主要保護性抗原囊膜蛋白ORF81研制的KHV核酸疫苗,保護率達80%以上,專利號為CN102988973A)[17-19]聯(lián)合免疫的免疫效果,旨在為錦鯉皰疹病毒病的治療提供新思路。
1.1.1 試驗魚 試驗魚購自長春市某養(yǎng)魚場,選取體質量為200~300 g的健康鯉150尾,在實驗室25℃水族箱中飼養(yǎng)2周以上。
1.1.2 質粒、細胞、病毒重組 質粒 pIRESORF81、KHV陽性血清和鯉腦細胞 (CCB)由吉林農業(yè)大學動物科學技術學院保存和凍存[20]。
1.1.3 試驗試劑 DNA Marker(DL2000、DL5000)及反轉錄酶、限制性內切酶、T4DNA連接酶均為TaKaRa產品;凝膠回收試劑盒、卡那霉素、氨芐青霉素購自AxyGen公司;焦磷酸二乙酯(DEPC)購自北京鼎國公司;EndoFectin TM-Max轉染試劑購自長春維爾特科技有限公司;抗鯉IgM單克隆抗體購自AQUATIC Diagnostic Ltd;羊抗鼠酶標二抗購自三箭生物科技有限公司;其他試劑均為國產分析純級別。
1.2.1 HSP90基因的引物設計與合成 根據Gen-Bank上登錄的鯉 HSP90基因序列 (登錄號:L513382.1),使用Primer Premiers 5.0軟件設計引物。上、下游引物分別為
其中畫線部分依次引入XhoⅠ和EcoRⅠ限制性酶切位點,由生工生物工程 (上海)股份有限公司合成。
1.2.2 HSP90基因的克隆與鑒定 將健康試驗鯉用體積分數為75%的乙醇消毒,在超凈工作臺上解剖魚體,取其頭腎組織。采用TRizol(Invitrogen)提取總RNA,并反轉錄為cDNA,建立100 μL反轉錄體系。PCR反應程序:95℃下預變性5 min;94℃下變性30 s,63.5℃下退火30 s,共進行35個循環(huán);在72℃下延伸1 min,于4℃下保存,用瓊脂糖凝膠電泳檢測擴增產物。
將回收純化的HSP90目的基因連接至pMD-19T克隆載體,連接產物轉化至DH5α大腸桿菌感受態(tài)細胞中,經雙酶切和PCR鑒定均為陽性的重組克隆質粒保種,由生工生物工程 (上海)股份有限公司測序,將測序結果與GenBank登陸的基因序列進行BLAST比對。
1.2.3 pEGFP-C1-HSP90重組質粒的構建回收
用T4DNA連接酶將pMD19-T-HSP9目的基因與pEGFP-C1酶切回收的大片段連接后,轉入至大腸桿菌感受態(tài)細胞DH5α中,用含有卡那霉素液體的LB培養(yǎng)基進行篩選后,經PCR和雙酶切進行驗證。選取陽性質粒命名為pEGFP-C1-HSP90并由生工生物工程 (上海)股份有限公司進行測序。
1.2.4 重組質粒pEGFP-C1-HSP90的細胞表達將純化重組表達質粒pEGFP-C1-HSP90及pIRESORF81菌液劃線培養(yǎng)。挑取單一乳白色菌落接種到液體LB培養(yǎng)基 (Kan抗性)中,培養(yǎng)至對數生長期后進行擴搖,收集菌體進行重組質粒的大量提取。使用Nanodrop 2000超微量分光光度計測定重組表達質粒在260 nm波長時的吸光值,并計算重組表達質粒濃度 (μg/μL),其計算公式為
用L-15培養(yǎng)基分別稀釋重組表達質粒pEGFP-C1-HSP90和轉染試劑 EndoFectionTM Max,并置于室溫。用125 μL L-15培養(yǎng)基分別稀釋重組表達質粒 pEGFP-C1-HSP90(2.5 μg) 和不同劑量 (5.0、7.5、10.0 μg) 的轉染試劑EndoFectionTM Max,并將兩者充分混勻,靜置10~20 min,形成DNA-EndoFectionTM混合物,并將混合物逐滴加入到每個細胞培養(yǎng)孔中,在26℃培養(yǎng)箱中孵育轉染細胞,24 h后在熒光倒置顯微鏡下觀察細胞轉染情況并采集圖片。
1.2.5 重組質粒 pEGFP-C1-HSP90與 pIRESORF81聯(lián)合免疫 隨機選取10尾鯉頭腎組織樣品進行PCR檢測,鑒定結果顯示均未感染KHV。將試驗魚平均分為6組,每組10尾,將表1試劑按組分配,每組配制成2000 μL,給每尾鯉肌肉注射,劑量均為200 μL。每周免疫1次,共免疫3次。
1.2.6 重組表達質粒pEGFP-C1-HSP90誘導鯉的免疫效果檢測 采用尾靜脈取血方法,免疫前采血一次,共進行3次免疫,第一次和第二次免疫一周后采血一次,第三次免疫后第一周、第二周、第三周分別采血一次。制備血清后進行間接ELISA檢測,結果通過酶標儀OD450nm測定。
表1 鯉免疫分組及注射量Tab.1 Immune groups and injection volumes in common carp
將鯉頭腎組織所提取的RNA進行反轉錄,獲得cDNA模板,以HSP90-F1、R2為引物進行PCR擴增,獲得與預期片段大小相符的687 bp基因,結果如圖1所示。
圖1 鯉HSP90基因的PCR擴增Fig.1 The PCR amplification product of HSP90 in common carp
使用XhoⅠ和EcoRⅠ兩種內切酶對重組質粒pMD19-T-HSP90進行雙酶切鑒定。結果顯示,符合預期結果大小,在687 bp處有明顯條帶 (圖2),表明成功構建了重組質粒pMD19-T-HSP90。
將HSP90的測序結果在GenBank中進行BLAST比對,結果見圖3,所克隆的HSP90基因與GenBank中登入的鯉HSP90基因序列匹配度相同。
將重組質粒pEGFP-C1-HSP90進行雙酶切鑒定。結果顯示,在687 bp處有明顯條帶,另一條帶在5000 bp左右 (圖4),與預期結果相符。表明成功構建了重組質粒pEGFP-C1-HSP90。
圖 2 pMD19-T-HSP90的雙酶切Fig.2 Identification of double restriction enzyme digestion for pMD19-T-HSP90
2.5.1 重組表達質粒濃度 根據濃度公式計算出pEGFP-C1-HSP90、 pIRES-ORF81 重組表達質粒的濃度分別為 0.95、 0.63 μg/μL。
2.5.2 重組表達質粒的轉染 將重組質粒pEGFPC1-HSP90(2.5 μg) 分別與3種不同劑量 (5.0、7.5、 10.0 μg) 的轉染試劑 EndoFectionTM Max混合后轉染至鯉腦細胞中,轉染24 h后在熒光倒置顯微鏡下觀察轉染情況并成像。結果顯示,轉染試劑EndoFectionTM Max劑量為5.0 μg時轉染效果最佳,重組質粒在鯉腦細胞中的轉染熒光圖見圖5。
隨機選取10尾試驗鯉,對其頭腎組織樣品基因組進行PCR擴增,以KHV病毒作為陽性對照。結果顯示,所選10尾試驗鯉均為KHV陰性 (圖6),未攜帶KHV病毒,可以進行免疫試驗。
圖3 鯉HSP90基因的BLAST比對Fig.3 The BLAST contrast of HSP90 gene in common carp
圖4 pEGFP-C1-HSP90的雙酶切鑒定Fig.4 The PCR identification of recombinant plasmid pEGFP-C1-HSP90
圖5 pEGFP-C1-HSP90在鯉腦細胞中的表達 (5 μg)Fig.5 Expression in common carp brain(CCB)cells of pEGFP-C1-HSP90(5 μg)
通過間接ELISA方法檢測抗體水平,在450 nm處吸光值平均數和標準差的計算結果如表2所示。從表2可見,空白對照組與PBS對照組均沒有特異性抗體產生,而重組質粒單獨免疫或聯(lián)合免疫均可以獲得較高的抗體水平,免疫次數增加的同時抗體水平也隨之增加。與單獨用pIRES-ORF81核酸免疫相比,pEGFP-C1-HSP90作為佐劑聯(lián)合免疫抗體水平相對升高,其中第6組即pIRESORF81(10 μg) +pEGFP-C1-HSP90(20 μg) 在各免疫劑量組中相對較好,第三次免疫后兩周,抗體水平達到最高 (1.316 9),但與其他組無顯著性差異 (P>0.05)。后續(xù)為驗證重組質粒的安全性,在結束試驗后對試驗魚暫養(yǎng)一個月,未發(fā)現(xiàn)對魚體健康存在不良影響,并隨機篩選部分試驗魚進行了組織病理學觀察,也未發(fā)現(xiàn)異常。
表2 ELISA檢測抗體水平 (OD450 nm)Tab.2 Antibody detection(OD450 nm)by ELISA
圖6 試驗鯉的PCR檢測Fig.6 The PCR detections of the test common carp
自20世紀90年代末首次對KHV的描述以來,這種病毒已經在世界范圍內流行,對鯉和錦鯉產業(yè)可持續(xù)健康發(fā)展造成極大危害。KHV也通過影響野生鯉種群進而對環(huán)境產生負面影響,其作為水生動物疫病病毒越來越被重視。但現(xiàn)有開發(fā)的核酸疫苗都或多或少存在一些問題。其中,弱毒苗雖然免疫效果較好[21-22],但存在散毒和返強的危險,后經Yasumoto等[23]研發(fā)的用質體脂包裹甲醛滅活的KHV滅活疫苗與弱毒疫苗相比,具有安全性好、不存在散布病毒和造成KHV新疫源的危險,但其產生的保護力不強,僅為65%,需要反復多次免疫,一直未能達到預期效果。因此,為了增強核酸疫苗的免疫原性,加入如佐劑的免疫刺激劑尤為重要。
相關學者研究表明,病毒HSP90高度保守,在生物體內發(fā)揮極其重要的功能。王婷婷等[24]研究發(fā)現(xiàn),菱鲆Psetta maxima胚胎細胞系在感染鰻弧菌Vibrio anguillarum 6 h后,HSP90β即可被檢測到且顯著上調;馮儷等[25]通過構建 PVAXHSP90重組質粒聯(lián)合核酸疫苗顯示出良好的免疫保護作用,都具有良好的免疫應答和抗原呈遞作用。
本試驗中,為增強pIRES-ORF81核酸疫苗的免疫活性,選擇 HSP90作為 KHV pIRES-ORF81疫苗的佐劑。用 pIRES-ORF81與重組表達質粒pEGFP-C1-HSP90聯(lián)合免疫患病鯉,采集鯉血清,通過間接ELISA檢測抗體水平。研究結果表明,重組質粒單獨免疫或聯(lián)合免疫均可以獲得較高的抗體水平,與單獨用pIRES-ORF81核酸免疫效果相比, pEGFP-C1-HSP90與 pIRES-ORF81聯(lián)合免疫后抗體水平相對升高??梢钥闯觯琀SP90可以提高專一性免疫效果,重組表達質粒 pEGFP-C1-HSP90對pIRES-ORF81的抗體水平起到了促進作用,與上述學者的研究結果相似。本研究結果可為后續(xù)水生動物熱休克蛋白研究提供參考數據,還可為錦鯉皰疹病毒病的疫苗研制及用免疫佐劑聯(lián)合免疫治療提供新的思路。
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