高鳳云,斯欽巴特爾,張 輝,伊六喜,侯建華,周 宇
(1 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué), 呼和浩特 010019;2 內(nèi)蒙古農(nóng)牧業(yè)科學(xué)院, 呼和浩特 010031)
亞麻(LinumusitatissimumL.)是最古老的馴化栽培植物之一,在10000 年前的古埃及和撒瑪利亞地區(qū)就有栽培[1]。亞麻籽富含人體必需的a亞麻酸(ALA)、亞油酸(LIO),亞麻籽含油率為41%,其中a亞麻酸(ALA)占亞麻籽油的57%,亞油酸占16%[2]。a亞麻酸具有抗氧化作用,其抗氧化能力比維生素E強(qiáng)。
亞麻具有多種功能和用途[3],引起人們的廣泛興趣,但對亞麻產(chǎn)量和品質(zhì)的QTL定位研究不多,定位的QTL數(shù)量也比較少。國內(nèi)目前只有李明等[4]以早熟、蒴果開裂、藍(lán)花的典型農(nóng)家種CN100910與中晚熟、白花、高纖的典型纖用亞麻Opaline作為雜交親本,采用69個F2單株作為作圖群體,構(gòu)建了包含169個SRAP標(biāo)記,由18個連鎖群組成的連鎖圖譜。圖譜總長為499.30cM,平均圖距為2.95cM。并在圖譜上檢測到與纖維含量、工藝長度和裂果性狀有關(guān)的l5個QTL。國外對亞麻農(nóng)藝和品質(zhì)性狀QTL的研究報道有3篇,Cloutier 等[5]在114個SSR標(biāo)記構(gòu)建的連鎖遺傳圖譜基礎(chǔ)上,利用78個亞麻雙單倍體構(gòu)成的QTL定位群體對控制亞麻酸和亞油酸含量的QTL進(jìn)行了定位,把脂肪酸去飽和酶FAD3a基因定位于第7個連鎖群;Soto-Cerda等[6-7]利用448個覆蓋全基因組的簡單重復(fù)序列標(biāo)記(SSR),以加拿大亞麻核心資源庫407份亞麻材料為QTL定位群體,對亞麻品質(zhì)性狀和農(nóng)藝性狀進(jìn)行了QTL定位,檢測出7個品質(zhì)相關(guān)的QTL和9個農(nóng)藝性狀相關(guān)的QTL。Santosh Kumar等[8]在691個標(biāo)記 (362 個SSR和329個SNP)構(gòu)建的15個連鎖遺傳圖譜基礎(chǔ)上,利用243個重組自交系單株構(gòu)成的群體,對亞麻14個農(nóng)藝和品質(zhì)性狀進(jìn)行QTL定位,定位了20個與脂肪酸組成和農(nóng)藝性狀相關(guān)的QTL。這些研究主要局限在SRAP、AFLP和SSR等少數(shù)幾個標(biāo)記構(gòu)建的圖譜基礎(chǔ)上,圖譜存在標(biāo)記數(shù)量少、圖譜長度短、標(biāo)記密度低等缺點,降低了QTL定位的準(zhǔn)確性,限制了QTL的定位的后續(xù)研究,如標(biāo)記輔助選育種及基因圖位克隆等。
本研究以亞麻品系R43為母本、LH-89為父本構(gòu)建F2:3QTL定位群體,在構(gòu)建的包含4 547個SNP標(biāo)記的亞麻高密度連鎖遺傳圖譜基礎(chǔ)上[9],運用R/QTL定位軟件[10]采用復(fù)合區(qū)間作圖法[11]對13個亞麻農(nóng)藝和品質(zhì)性狀進(jìn)行QTL定位。本研究定位了最多的QTL,對亞麻遺傳研究和標(biāo)記輔助育種及圖位克隆具有重要的理論意義和應(yīng)用價值。
試驗所用親本為亞麻純合自交系R43和LH-89(內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)李心文教授提供),2個親本性狀差異大。母本R43的生育期比父本LH-89長1周左右;R43的花色為白色,種皮為淺黃色,LH-89的花為藍(lán)色,種皮為褐色;R43的植株較高,LH-89的植株較矮;R43為高亞麻酸低亞油酸品系,LH-89為高亞油酸低亞麻酸品系。亞油酸和亞麻酸含量差異尤其明顯,這有利于相關(guān)性狀表型變異值與連鎖圖譜標(biāo)記間的關(guān)聯(lián)分析,有利于相關(guān)性狀的QTL定位。
試驗地點為內(nèi)蒙古農(nóng)牧業(yè)科學(xué)院試驗地。2013年以LH-89為父本,R43為母本,雜交獲得F1。2014年,種植F1,經(jīng)自交后得到F2。2015年,將F2和2份親本一起種植,從F2中隨機(jī)選取100株為F2構(gòu)圖群體[9]。2016年,將100株F2構(gòu)圖群體單株按株行種植,構(gòu)建F2:3家系QTL定位群體,隨機(jī)區(qū)組設(shè)置,3次重復(fù),每重復(fù)1行,行長1 m,行距20 cm。
F1的性狀調(diào)查,采用5點取樣法,每點隨機(jī)選取20株,單株單收,整株收獲。20株平均值作為一個重復(fù)的性狀值,收獲后對F1的株高(H)、工藝長度(TL)、分枝數(shù)(BN)、單株果數(shù)(BPP)、果粒數(shù)(SPB)、千粒重(TSW)、單株粒重(SWPP)等性狀進(jìn)行室內(nèi)考種,及粗脂肪和脂肪酸組成的測定。
F2:3家系的性狀調(diào)查,從株行中部隨機(jī)選取20株,單株收獲。20株平均值作為一個重復(fù)的性狀值,收獲后對F2:3家系的株高、工藝長度、分枝數(shù)、單株果數(shù)、果粒數(shù)、千粒重、單株粒重等性狀進(jìn)行室內(nèi)考種,及粗脂肪和脂肪酸組成的測定。
利用已構(gòu)建的亞麻SNP連鎖遺傳圖譜[9],對亞麻農(nóng)藝性狀、粗脂肪和脂肪酸組成的數(shù)量性狀位點進(jìn)行定位。采用R/QTL定位軟件檢測表型變量與圖譜標(biāo)記間的關(guān)聯(lián)關(guān)系,運用復(fù)合區(qū)間作圖法(CIM),根據(jù)所繪制的亞麻遺傳圖譜和表型變量數(shù)據(jù),檢測株高(cm)、工藝長度(cm)、分枝數(shù)(個)、單株果數(shù)(個)、果粒數(shù)(個)、單株粒重(g)、千粒重(g)、粗脂肪、脂肪酸組成等農(nóng)藝品質(zhì)相關(guān)數(shù)量性狀位點(QTL)。每一個性狀的QTL定位,采用計算重復(fù)抽樣1 000次的排列測驗來決定LOD值的臨界值,在顯著性水平P=0.05的條件下,從總體數(shù)據(jù)來確定LOD值的取舍,確定QTL存在與否及其位置。在運行區(qū)間作圖的同時,估算出控制這一性狀QTL位點的加性效應(yīng)和對這一性狀表型的貢獻(xiàn)率。LOD臨界值也可預(yù)先設(shè)定為3.0、2.5、2.0等幾個水平,為保證一些遺傳力低的性狀的定位,一般都把LOD臨界值設(shè)定低一點。QTL的命名采用性狀+連鎖群,性狀以英文縮寫表示,同一性狀同一連鎖群的多個QTL以“-1、-2、-3”等區(qū)分[12]。
根據(jù)QTL位置、對應(yīng)分子標(biāo)記和連鎖群長度用MapChart軟件繪制QTL圖譜。
父本的花藍(lán)色對母本的花白色顯性,F(xiàn)1花色全為藍(lán)色。方差分析也顯示株高、工藝長度、分枝數(shù)、單株果數(shù)、果粒數(shù)、千粒重、單株粒重、粗脂肪、脂肪酸組成等表型性狀沒出現(xiàn)性狀分離,表明雜交親本屬于純合自交系。說明F2株系和F2:3家系的表型變異值是基因分離和非遺傳因素共同作用的結(jié)果,F(xiàn)2:3表型變異值可用于性狀與標(biāo)記的關(guān)聯(lián)分析,來進(jìn)行相關(guān)農(nóng)藝和品質(zhì)性狀的QTL定位。
圖1 亞麻 F2:3家系農(nóng)藝性狀表型頻率分布圖(箭頭標(biāo)明親本值)Fig.1 Phenotypic distribution of agronomic traits of F2:3 (arrows indicate values of parents)
2.2.1農(nóng)藝性狀利用SPSS22對F2:3家系農(nóng)藝性狀表型頻率分布作圖,從圖1看出,單株粒重、單株果數(shù)等性狀的表型頻率分布呈偏正態(tài)分布,這些性狀受少數(shù)幾個主效基因的控制,表型差異大;株高、工藝長度、分枝數(shù)、單株果粒數(shù)、千粒重等性狀的表型頻率呈正態(tài)分布,這些性狀表型受多基因控制,表型差異小。所有農(nóng)藝性狀都出現(xiàn)超親分離現(xiàn)象,株高超低親分離。
2.2.2粗脂肪和脂肪酸組成利用SPSS22對粗脂肪和脂肪酸組成性狀表型頻率分布作圖,從圖2看出,亞油酸、亞麻酸、硬脂酸的表型頻率分布呈偏正態(tài)分布,這些性狀受少數(shù)幾個主效基因的控制,表型差異大;棕櫚酸、油酸和粗脂肪等性狀的表型頻率分布呈正態(tài)分布,這些性狀表型受多基因控制,表型差異小。粗脂肪和脂肪酸組成各性狀都出現(xiàn)超親分離現(xiàn)象,其中亞油酸、粗脂肪超高親分離,亞麻酸超低親分離。
2.3.1農(nóng)藝性狀對株高等7個農(nóng)藝性狀考種數(shù)據(jù)的方差、標(biāo)準(zhǔn)差、變異系數(shù)的統(tǒng)計分析(表1)表明,單株粒重、單株果數(shù)的變異系數(shù)最大,分別達(dá)到0.59、0.56,分枝數(shù)的變異系數(shù)達(dá)到0.34,這些性狀離散程度高,性狀分離大,能很好地估算標(biāo)記與性狀的相關(guān)關(guān)系,有利于性狀的QTL定位。
圖2 亞麻 F2:3家系品質(zhì)性狀表型頻率分布圖(箭頭標(biāo)明親本值)Fig. 2 Phenotypic distribution of quality traits of F2:3(arrows indicate values of parents)
2.3.2粗脂肪和脂肪酸組成對脂肪酸組成(棕櫚酸、硬脂酸、油酸、亞油酸、亞麻酸)和粗脂肪含量等數(shù)據(jù)的方差、標(biāo)準(zhǔn)差、變異系數(shù)的統(tǒng)計分析(表2)表明,硬脂酸、亞麻酸、亞油酸的變異系數(shù)最大,分別達(dá)到0.31、0.32和0.39,這些性狀離散程度高,性狀分離大,能很好地估算標(biāo)記與性狀的相關(guān)關(guān)系,有利于性狀的QTL定位。
2.4.1農(nóng)藝性狀株高、工藝長度的遺傳力最高,分別為79%和72%;單株果數(shù)遺傳力為66%;分枝數(shù)、果粒數(shù)遺傳力分別為54%和51%,處于中等水平;單株粒重和千粒重的遺傳力最低(表3)。
2.4.2粗脂肪和脂肪酸組成從表4看出,亞油酸和亞麻酸遺傳力最高,分別為88%和86%;硬脂酸和油酸的遺傳力分別為76%、78%;粗脂肪和棕櫚酸的遺傳力分別為55%、64%,整體上比農(nóng)藝性狀遺傳力高。
表1 亞麻 F2:3家系農(nóng)藝性狀方差分析
表2 亞麻 F2:3群體品質(zhì)性狀方差分析
表3 亞麻 F2:3家系農(nóng)藝性狀的廣義遺傳力
表4 亞麻 F2:3家系粗脂肪和脂肪酸組成廣義遺傳力
共檢測出35個QTL(表5~8),與粗脂肪及其組成成分相關(guān)的QTL共有20個,農(nóng)藝性狀相關(guān)的QTL共有15個。從QTL分布的連鎖群(圖3)來看,LG1、LG3、LG6、LG8分布的QTL最多,每個連鎖群有5個;LG12有3個;LG2、LG4、LG9、LG14、LG15各有2個;LG5、LG10各有1個;LG7、LG11、LG13沒有檢測出QTL。
從性狀來看,檢測出與亞油酸和粗脂肪相關(guān)的QTL最多,各有5個;其次為亞麻酸、千粒重各4個,棕櫚酸、株高、工藝長度各3個;硬脂酸、分枝數(shù)各2個;單株果數(shù)、果粒數(shù)、單株粒重、油酸各1個。
從LOD值和表型貢獻(xiàn)率來看(表7、表8),有21個QTL的LOD值為3.07~12.98,表型貢獻(xiàn)率為4.65%~44.08%,置信度較高。表型貢獻(xiàn)率超10%的QTL有18個,為主效基因,其中農(nóng)藝性狀的有8個主效基因,品質(zhì)性狀的有10個主效基因。
2.5.1亞麻農(nóng)藝性狀的QTL分布農(nóng)藝性狀株高、工藝長度、分枝數(shù)、單株果數(shù)、單株粒重等性狀相關(guān)的QTL,表型貢獻(xiàn)率均在11%~18%范圍內(nèi),這些QTL位點的基因是遺傳效應(yīng)較高的主效基因。
(1)株高 檢測到與株高相關(guān)的QTL共3個,其中H-LG6位于LG6上,LOD值為3.88,加性效應(yīng)為3.21,加效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率17.49%,為主效基因;第8連鎖群上有2個:H-LG8-1,LOD值為3.2,加性效應(yīng)為-2.64,減效基因,來自父本,表型貢獻(xiàn)率為11.36%,為主效基因;H-LG8-2,LOD值為3.07,加性效應(yīng)為-1.46,減效基因,來自父本,表型貢獻(xiàn)率為5.51%。
(2)工藝長度 檢測到與工藝長度相關(guān)的QTL共3個,其中TL-LG1位于LG1上,LOD值為5.20,加性效應(yīng)為2.65,加效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率為14.70%,為主效基因;TL-LG6位于LG6上,LOD值為4.10,加性效應(yīng)為3.28,加效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率為14.45%,為主效基因;TL-LG8位于LG8上,LOD值為3.26,加性效應(yīng)為-0.93,減效基因,來自父本,表型貢獻(xiàn)率為7.03%。
(3)分枝數(shù) 檢測到與分枝數(shù)相關(guān)的QTL共2個,BN-LG10和BN-LG14分別位于第10和14連鎖群上,LOD值分別為3.39和3.67,加性效應(yīng)分別為-0.32和-0.29,表型貢獻(xiàn)率分別為14.13%和11.99%,為主效基因。從加性效應(yīng)可知,均是減效基因,來自母本。
(4)單株果數(shù) 檢測到與單株果數(shù)相關(guān)的QTL為 BPP-LG14,位于第14號連鎖群,其LOD值為6.36,加性效應(yīng)為-2.23,減效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率為15.05%,為主效基因。
(5)果粒數(shù) 與果粒數(shù)相關(guān)的QTL檢測出1個,為SPB-LG12,位于第12連鎖群上,其LOD值為3.57,加性效應(yīng)為0.28,加效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率為9.25%。
(6)單株粒重 與單株粒重相關(guān)的QTL檢測到1個,為SWPP-LG5,位于第5連鎖群上,LOD值為7.47,加性效應(yīng)為-0.21,減效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率為17.19%,為主效基因。
(7)千粒重 與千粒重相關(guān)的QTL檢測到4個,分別命名為TSW-LG2-1、TSW-LG2-2、TSW-LG3和TSW-LG6。TSW-LG2-1的LOD值為2.17,加性效應(yīng)為-0.01,減效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率0.48%,遺傳效應(yīng)低;TSW-LG2-2的LOD值為2.3,加性效應(yīng)-0.28,減效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率7.43%;TSW-LG3的LOD值為2.22,加性效應(yīng)-0.15,減效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率8.95%;TSW-LG6的LOD值為2.45,加性效應(yīng)0.18,加效基因,來自父本,表型貢獻(xiàn)率5.79%。
2.5.2亞麻粗脂肪及脂肪酸組成的QTL分布與亞油酸相關(guān)的QTL有5個。其中,LIO-LG9的LOD值、加性效應(yīng)和表性貢獻(xiàn)率分別為6.55、8.54和23.85%;LIO-LG15的LOD值、加性效應(yīng)和表性貢獻(xiàn)率分別為12.98、11.63和44.08%,從表型貢獻(xiàn)率判斷為主效QTL位點,加性效應(yīng)為正數(shù),為加效基因,來自父本LG-89。
亞麻酸相關(guān)的4個QTL中,LIN-LG9和LIN-L15的LOD值、加性效應(yīng)和表性貢獻(xiàn)率分別為3.80、-7.36、16.76%和10.31、-10.97、37.28%,都達(dá)到極高的水平,加性效應(yīng)為負(fù)數(shù),是減效基因,來自父本LG-89,從表型貢獻(xiàn)率判斷為主效QTL位點。同時,加性效應(yīng)與亞油酸呈正負(fù)互補(bǔ)關(guān)系,符合亞油酸和亞麻酸的代謝關(guān)系,LIO-LG9和LIN-LG9,LIO-LG15和LIN-LG15位置相同,分別定位在LG9的38.389 cM和LG15的7.808 cM處。
棕櫚酸PAL-LG4、硬脂酸的STE-LG4、油酸OLE-LG1的LOD值分別為4.63、2.90、8.32,表型貢獻(xiàn)率分別為14.02%、13.83%、14.50%,其QTL位點的基因均為遺傳效應(yīng)較高的主效基因。
(1)棕櫚酸 與棕櫚酸相關(guān)的QTL檢測到3個,分布在LG1和LG4上。PAL-LG1-1和PAL-LG1-2的LOD值分別為3.33和3.09,加性效應(yīng)分別為-0.10和-0.11,均為減效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率分別為4.65%和6.25%;PAL-LG4的LOD值為4.63,加性效應(yīng)為0.09,加效基因,來自父本,表型貢獻(xiàn)率為14.02%,為主效基因。
(2)硬脂酸 與硬脂酸相關(guān)的QTL檢測到2個,位于第3和4連鎖群上,STE-LG3的LOD值、加性效應(yīng)和表性貢獻(xiàn)率分別為2.79、0.33和13.21%,為主效加效基因,來自父本;STE-LG4的LOD值、加性效應(yīng)和表性貢獻(xiàn)率分別為2.90、-0.19和13.83%,為主效減效基因,來自母本。
(3)油酸 檢測到與油酸相關(guān)的QTL 為OLE-LG1,位于1號連鎖群上,其LOD值、加性效應(yīng)和表性貢獻(xiàn)率分別為8.32、1.49和14.50%,為主效加效基因,來自父本。
(4)亞油酸 與亞油酸相關(guān)的QTL檢測到5個,分別位于LG3、LG6、LG8、LG9和LG15上。其中,LIO-LG3、LIO-LG6和LIO-LG8的LOD值分別為2.87 、2.30、 2.44,加性效應(yīng)分別為1.66、0.67和1.38,表性貢獻(xiàn)率分別為6.71%、3.41%和1.39%;LIO-LG9的LOD值、加性效應(yīng)和表性貢獻(xiàn)率分別為6.55、8.54和23.85%,為主效基因。LIO-LG15的LOD值、加性效應(yīng)和表性貢獻(xiàn)率分別為12.98、11.63和44.08%,為主效基因。從加性效應(yīng)來看,均是加效基因,都來自父本。
(5)亞麻酸 與亞麻酸相關(guān)的QTL檢測到4個,分別為LIN-LG3、LIN-LG6、LIN-LG9、LIN-LG15,其LOD值分別為3.37、2.77、3.80和10.31,加性效應(yīng)分別為-3.04、-2.57、-7.36和-10.97,均是減效基因,來自父本,表性貢獻(xiàn)率分別為10.11%、5.64%、16.76%和37.28%,LIN-LG3、LIN-LG9、LIN-LG15均為主效基因。LIN-LG9、LIN-LG15兩個連鎖群上的加性效應(yīng)極強(qiáng),與亞油酸在這兩個連鎖群上的QTL的加性效應(yīng)呈互補(bǔ)關(guān)系,且位置相同。
(6)粗脂肪 與粗脂肪相關(guān)的QTL檢測到5個,位于LG1、LG3、LG8和LG12連鎖群上,分別命名為OIL-LG1、OIL-LG3、OIL-LG8、OIL-LG12-1和OIL-LG12-2。OIL-LG1的LOD值2.40,加性效應(yīng)-0.26,減效基因,來自父本,表型貢獻(xiàn)率2.93%;OIL-LG3的LOD值2.33,加性效應(yīng)-0.05,減效基因,來自父本,表型貢獻(xiàn)率4.53%;OIL-LG8的LOD值3.70,加性效應(yīng)0.18,加效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率10.82%,為主效基因;OIL-LG12-1的LOD值2.06,加性效應(yīng)0.20,加效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率7.20%;OIL-LG12-2的LOD值2.40,加性效應(yīng)0.07,加效基因,來自母本,表型貢獻(xiàn)率8.26%。
2.5.3亞麻農(nóng)藝和品質(zhì)性狀QTL及其關(guān)聯(lián)的SNP標(biāo)記與35個QTL關(guān)聯(lián)的SNP標(biāo)記共有112個(表5、表6)。從表中可以看出,多數(shù)QTL位點對應(yīng)的SNP標(biāo)記數(shù)都超過2個,有的甚至達(dá)到21個(如亞油酸LG8上的一個QTL位點)。標(biāo)記數(shù)量為3個的QTL位點有:H-LG6、LIO-LG6、OIL-LG1;標(biāo)記數(shù)量為4個的QTL位點有:H-LG8-2、SWPP-LG5;標(biāo)記數(shù)量為5個的QTL位點有:TL-LG1和OIL-LG3;標(biāo)記數(shù)量為7個的QTL位點有:TSW-LG6;標(biāo)記數(shù)量為8個的QTL位點有:OLE-LG1;標(biāo)記數(shù)量為9個的QTL位點有:PAL-LG1-2;標(biāo)記數(shù)量為10個的QTL位點有:TSW-LG2-1;亞油酸LIO-LG8對應(yīng)的標(biāo)記數(shù)量為21個。從性狀來看,標(biāo)記數(shù)最多的是亞油酸,對應(yīng)標(biāo)記有27個;其次為千粒重,有20個;然后是粗脂肪有12個;棕櫚酸有11個;株高、工藝長度、油酸分別有8個。標(biāo)記與性狀變異的對應(yīng)關(guān)系,是性狀的控制因子與標(biāo)記的對應(yīng)關(guān)系,研究結(jié)果表明以上多數(shù)性狀都是多基因控制的復(fù)雜數(shù)量性狀。
表5 亞麻 F2:3家系農(nóng)藝性狀QTL及其對應(yīng)的連鎖群和SNP標(biāo)記
表6 亞麻 F2:3家系品質(zhì)性狀QTL及其對應(yīng)的連鎖群和SNP標(biāo)記
表7 亞麻 F2:3家系農(nóng)藝性狀的連鎖群、QTL定位、基因效應(yīng)及貢獻(xiàn)率
表8 亞麻F2:3家系品質(zhì)性狀的連鎖群、QTL定位、基因效應(yīng)及貢獻(xiàn)率
加性效應(yīng)正向為實心,負(fù)向為斜線;下同圖3 亞麻農(nóng)藝和品質(zhì)相關(guān)的QTL遺傳圖譜上的分布圖(一)Full square for positive additive effect,square filled with italic lines for negative additive effect.The same as belowFig.3 Positions of QTL related to traits of agronomic and quality of flax(一)
農(nóng)藝和品質(zhì)性狀的QTL定位受表型變異值大小的影響:表型變異值越小,所需要的后代數(shù)量越多。傳統(tǒng)的QTL定位方法[13-15]在定位遺傳標(biāo)記附近的QTL時,牽涉到對雜交后代的表型均值的比較,在不同平均值間估算出在一個QTL區(qū)域B等位基因取代A等位基因的表型效應(yīng),即交換重組的表型效應(yīng)。再運用生物統(tǒng)計估算出遺傳標(biāo)記與數(shù)量性狀位點的關(guān)聯(lián)關(guān)系[16]。QTL檢測的關(guān)鍵是性狀表型值與標(biāo)記基因型分離間關(guān)聯(lián)關(guān)系的統(tǒng)計分析[17]。
本研究以R43和LH-89為親本構(gòu)建F2作圖群體,R43為高亞麻酸低亞油酸品系,亞麻酸含量為57.64%,亞油酸含量為14.79%;LH-89為高亞油酸低亞麻酸品系,亞油酸含量為53.42%,亞麻酸含量17.48%。本試驗在構(gòu)圖群體親本的選擇上與Cloutier等的試驗是相同的[5]。Cloutier選用的構(gòu)圖群體親本是SP2047和UGG5-5,SP2047亞麻酸含量2%~4%,UGG5-5亞麻酸含量63%~66%[5]。在相關(guān)性狀的QTL定位上也得到相似的結(jié)果,都檢測出亞油酸和亞麻酸共位置現(xiàn)象,并且兩個共位置的主效基因位點在加性效應(yīng)上都呈正負(fù)互補(bǔ)的效應(yīng),符合亞油酸/亞麻酸代謝關(guān)系[5]。Soto-Cerda等利用關(guān)聯(lián)分析方法定位了7個與品質(zhì)相關(guān)的QTL[6]和9個與產(chǎn)量和農(nóng)藝性狀相關(guān)的QTL[7],鑒定的亞油酸、亞麻酸QTL也呈共位置現(xiàn)象。而Kumar選用的親本是加拿大栽培種CDC Bethune和Macbeth,這2個品種的成熟期、株高、脂肪酸組成和亞麻酸含量等性狀的差異小,雖然其QTL定位的連鎖遺傳圖譜是包含329個SNP和362個SSR標(biāo)記的高密度圖譜,但鑒定的2個亞油酸相關(guān)QTL和1個亞麻酸相關(guān)QTL不存在共位置現(xiàn)象,加性效應(yīng)都為負(fù)數(shù),并且加性效應(yīng)值和表型貢獻(xiàn)率都不高[8],可見群體結(jié)構(gòu)及性狀表型變異值對相關(guān)性狀的QTL定位有非常大的影響。
圖3 亞麻農(nóng)藝和品質(zhì)相關(guān)的QTL遺傳圖譜上的分布圖(二)Fig.3 Positions of QTL related to traits of agronomic and quality of flax(二)
本研究所用的低亞麻酸親本HL-89是從母本H-624和父本E-1747雜交后代選育的品系(內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)李新文教授選育),母本H-624為自主選育的優(yōu)良親本;父本E-1747引自加拿大亞麻材料,經(jīng)甲基磺酸乙酯(EMS)誘變而成[18],SP2047也是EMS誘變種[5]。通過EMS誘變選育低亞麻酸亞麻品系的研究開始于1984年[19],隨后在低亞麻酸品系SolinTM鑒定了2個獨立控制亞麻酸的位點[20],并克隆了2個發(fā)生點突變、形成不具有活力酶的fad3A、fad3B基因[21]。因為亞油酸、亞麻酸在代謝途徑上是直接關(guān)聯(lián)的負(fù)相關(guān)關(guān)系[22],所以本試驗定位的2個共位置的亞油酸和亞麻酸的主效QTL位點可能是fad3A、fad3B基因位點,可以直接用于圖位克隆和標(biāo)記輔助育種。
QTL檢測受2個因素的影響,即作圖群體大小和性狀的遺傳力。Beavis的模擬研究顯示當(dāng)定位群體只有100個后代個體,則對QTL的效應(yīng)的估算值就會大大偏離其實際的數(shù)值;當(dāng)定位群體為500個后代個體,則QTL的效應(yīng)的估算值會稍微偏高一點;當(dāng)定位群體為1 000個后代個體,則QTL的效應(yīng)的估算值就非常接近其真實值[23]。
本研究在102個構(gòu)圖群體的基礎(chǔ)上,F(xiàn)2代種子按株系種植構(gòu)成F2:3家系QTL定位群體,按3次重復(fù)隨機(jī)排列設(shè)計,定位群體數(shù)量達(dá)到6 000個個體,這在一定程度上消除了非遺傳因素的影響,保證了表型值測定的準(zhǔn)確性。但總體來說,100個后代個體構(gòu)建的F2:3QTL定位群體家系,數(shù)量還是偏少,特別是對遺傳力不高性狀的QTL定位影響更大,因此本實驗定位的脂肪酸組成等品質(zhì)性狀的QTL數(shù)量比農(nóng)藝性狀的要多,定位了影響亞麻品質(zhì)的關(guān)鍵酶fad3A和fad3B。本試驗表明,對某一特定性狀的QTL定位需要構(gòu)建包含這一性狀盡量多分離變異的盡量大的定位群體。
參考文獻(xiàn):
[1] ZOHARY D, HOPF M. Domestication of Plants in the Old World: The Origin and Spread of Cultivated Plants in West Asia, Europe and the Nile Valley[M]. Oxford University Press, Oxford, 2000: 316.
[2] HARRIS R K, HAGGERTY W J. Assays for potentially anticarcinogenic phytochemicals in flax seed[J].CerealFoodsWorld,1993, 38: 147-151.
[3] HALL C, SCHWARZ J. Functionality of flax seed in frozen desserts-Preliminary report [C].Proceedings of the 59th Flax Institute of the United States, 2002: 21-24.
[4] 李 明,姜 碩,鄭東澤,等.亞麻SRAP標(biāo)記連鎖圖譜的構(gòu)建及3個數(shù)量性狀的定位[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2014,45(2): 12-21.
LI M, JIANG S, ZHENG D Z,etal. Construction of linkage map based on SRAP marker and QTL mapping of three traits inLinumusitiaissimumL.[J].JournalofNortheastAgriculturalUniversity,2014,45(2): 12-21.
[5] CLOUTIER S, RAGUPATHY R, NIU Z,etal. SSR-based linkage map of flax (LinumusitatissimumL.) and mapping of QTLs underlying fatty acid composition traits[J].MolecularBreeding, 2011,28: 437-451.
[6] SOTO CERDA B J, DUGUID S, BOOKER H,etal. Genomic regions under-lying agronomic traits in linseed (LinumusitatissimumL.) as revealed by association mapping[J].JournalofIntegrativePlantBiology, 2014b,56: 75-87.
[7] SOTO-CERDA B J, DUGUID S, BOOKER H,etal.Association mapping of seed quality traits using the Canadian flax (LinumusitatissimumL.) core collection[J].Theoretical&AppliedGenetics, 2014, 127: 881-896
[8] KUMAR S, YOU F M, DUGUID S,etal. QTL for fatty acid composition and yield in linseed (LinumusitatissimumL.) [J].Theoretical&AppliedGenetics, 2015,128(5): 965-984.
[9] 高鳳云,斯欽巴特爾,張 輝,等.基于SLAF-seq技術(shù)構(gòu)建亞麻高密度遺傳圖譜[J].中國油料作物學(xué)報,2017,3: 334-341.
GAO F Y, SIQIN B T, ZHANG H,etal. High density genetic map of flax based on SLAF-seq technology[J].ChineseJournalofOilCropSciences, 2017,3: 334-341.
[10] BROMAN KW, WU H, SEN S,etal. R/QTL: QTL mapping in experimental crosses[J].Bioinformatics, 200319: 889-890.
[11] ZENG Z B. Precision mapping of quantitative trait loci[J].Genetics,1994,136(4): 1 457-1 466.
[12] MCCOUCHSR, CHENX, PANAUDO,etal. Microsatellite marker development, mapping and applications in rice genetics and breeding[J].PlantMolecularBiology, 1997, 35: 89-99.
[13] SOLLER M, BRODY T. On the power of experimental designs for the detection of linkage between marker loci and quantitative loci in crosses between inbred lines[J].TheoreticalandAppliedGenetics,1976,47: 35-39.
[14] TANKSLEY S D, MEDINA FILHO H, RICK C M. Use of naturallyoccurring enzyme variation to detect and map genes controlling quantitative traits in an interspecific backcross of tomato[J].Heredity,1982,49: 11-25.
[15] EDWARDS M D, STUBER C W, WENDEL J F. Molecular marker facilitated investigation of quantitative trait loci in maize.1.Numbers, genomic distribution and types of gene action[J].Genetics,1987,116: 113-125.
[16] THODAY J M. Location of polygenes[J].Nature, 1961, 191: 368-370.
[17] DOREGE R W, CHURCHILL G A. Permutation tests for multiple loci affecting a quantitative character[J].Genetics,1996,142(1):285-294.
[18] 王樹彥,李心文.胡麻新品種‘內(nèi)亞油1號’和‘內(nèi)亞 7號’的選育[J].作物雜志, 2010, (3): 128.
WANG S Y, LI X W. Breeding of new flax varieties Neiya 1 and Neiya 7[J].Crops, 2010, (3): 128.
[19] GREEN A G, MARSHALL D R. Isolation of induced mutants in linseed (Linumusitatissimum) having reduced linolenic acid content[J].Euphytica,1984,33(2): 321-328.
[20] GREEN A G. Genetic control of polyunsaturated fatty acid biosynthesis in flax (Linumusitatissimum) seed oil[J].Theoretical&AppliedGenetics, 1986,72(5): 654-661.
[21] VRINTEN P, HU Z Y, MUNCHINSKY M A,etal. TwoFAD3 desaturase genes control the level of linolenic acid in flax seed[J].PlantPhysiology, 2005,139: 79-87.
[22] SOMERVILLE C, BROWSE J. Dissecting desaturation: plants prove advantageous[J].TrendsinCellBiology, 1996,6: 148-153.
[23] BEAVIS W. The power and deceit of QTL experiments: lessons from comparative QTL studies[C].Proceedings of the Forty-Ninth Annual Corn and Sorghum Industry Research Conference,1994, 49: 250-266.