劉茜桐,田莉,解晉琳,師娟子
(西北婦女兒童醫(yī)院,西安 710003)
輔助生殖領(lǐng)域中,胚胎植入前遺傳學(xué)篩查(PGS)已廣泛應(yīng)用于篩查整倍體胚胎,改善妊娠結(jié)局。近年,隨著細(xì)胞遺傳學(xué)方法的改進(jìn),可以對(duì)單細(xì)胞進(jìn)行全染色體的篩查,因此,嵌合體胚胎的診斷率提高。但是,關(guān)于嵌合體胚胎的文獻(xiàn)報(bào)道較少,本文就嵌合體胚胎的發(fā)生機(jī)制、發(fā)生率,以及移植后臨床結(jié)局做一綜述。
嵌合體胚胎包含兩種及以上不同染色體成分的細(xì)胞系,是因減數(shù)分裂中染色體分離錯(cuò)誤所致。在兩細(xì)胞期就可以出現(xiàn)嵌合體,但是臨床上多見于在囊胚期進(jìn)行滋養(yǎng)外胚層細(xì)胞活檢,因?yàn)樵谶@一時(shí)期可以活檢的細(xì)胞數(shù)更多[1]。滋養(yǎng)外胚層細(xì)胞活檢是否能代表整個(gè)胚胎受諸多因素影響,例如嵌合的類型和程度、活檢細(xì)胞數(shù)量、活檢部位,以及操作方法等。種植前遺傳學(xué)診斷國(guó)際協(xié)會(huì)(PGDIS)規(guī)定異常細(xì)胞占比20%~80%為嵌合體胚胎,>80%為非整倍體胚胎,<20%為整倍體胚胎。染色體嵌合導(dǎo)致染色體增加和/或丟失主要有三種機(jī)制:染色體不分離、后期延遲和核內(nèi)復(fù)制。
1. 染色體不分離:染色體不分離是姐妹染色單體在有絲分裂過程中沒有分離。因此整個(gè)染色體(包括兩條染色單體)被牽引到一個(gè)細(xì)胞內(nèi),導(dǎo)致一個(gè)細(xì)胞是單體性而另一個(gè)細(xì)胞是三體性。如果不分離發(fā)生在細(xì)胞分化之前,例如在種植前的胚胎,將形成普遍嵌合。如果不分離發(fā)生在分化之后,例如滋養(yǎng)層,胎盤將包含嵌合細(xì)胞系,而胚胎可以是整倍體。
種植前染色體不分離的概率無(wú)統(tǒng)一結(jié)論,主要和發(fā)育的階段和涉及的染色體有關(guān)。例如,導(dǎo)致常染色體第一次和第二次減數(shù)分裂形成非整倍體的機(jī)制和染色體不分離的可能性最小,但是染色體不分離卻是性染色體在第一次卵裂期分裂中的主要機(jī)制。因此,染色體在不同發(fā)育階段對(duì)不分離的敏感性不同。
2.后期延遲:后期延遲是有絲分裂后期,單個(gè)染色單體沒有進(jìn)入子代細(xì)胞核隨后丟失,導(dǎo)致一個(gè)細(xì)胞里該染色體是單體性而另一個(gè)細(xì)胞里是二體性。如果染色單體沒有附著于紡錘體,或者染色單體雖然附著于紡錘體但是后來沒有進(jìn)入細(xì)胞核,即為后期延遲。如果后期延遲發(fā)生在分化前,將包含兩種細(xì)胞系,導(dǎo)致普遍嵌合。如果后期延遲發(fā)生在分化后的滋養(yǎng)層細(xì)胞,胎盤將包含正常和單體性細(xì)胞系,例如限制性胎盤嵌合體(confined placental mosaicism,CPM)。
Loannou等[2]利用丟棄的第5天的胚胎進(jìn)行檢測(cè),發(fā)現(xiàn)單體性發(fā)生率是三體性的7倍。這一發(fā)現(xiàn)提示后期延遲是人類種植前胚胎嵌合體的主要原因。Coonen等[3]和Capalbo等[4]發(fā)現(xiàn)后期延遲比不分離的發(fā)生率高3~5倍。
3. 核內(nèi)復(fù)制:核內(nèi)復(fù)制是有絲分裂后,子代細(xì)胞內(nèi)某一條或幾條染色體再次發(fā)生復(fù)制,導(dǎo)致一個(gè)細(xì)胞里有三體性染色體而另一個(gè)細(xì)胞里是二體性染色體。染色體增加有兩種可能機(jī)制:一種是由于細(xì)胞周期功能障礙,一個(gè)染色體復(fù)制但是隨后沒有細(xì)胞質(zhì)分裂,另一種是有絲分裂開始后很快結(jié)束,導(dǎo)致染色體復(fù)制。無(wú)論發(fā)生機(jī)制如何,結(jié)果都會(huì)導(dǎo)致一條染色體的增加。核內(nèi)復(fù)制又稱為多倍體。多倍體可以出現(xiàn)在血液、腸道、皮膚和大腦中[5]。
既往研究報(bào)道胚胎嵌合體發(fā)生率不一,從30%到90%不等[5-6],歐洲人類生殖與胚胎學(xué)會(huì)指南(ESHRE)給出的嵌合體發(fā)生率為40%~60%。報(bào)道的差異可能和應(yīng)用熒光原位雜交技術(shù)(FISH)有關(guān)。FISH技術(shù)可以檢測(cè)每個(gè)細(xì)胞的細(xì)胞遺傳學(xué)信息,因此很多文獻(xiàn)應(yīng)用該技術(shù)進(jìn)行檢測(cè)。但是FISH技術(shù)本身存在局限性,例如需要細(xì)胞固定,該操作難以掌握,且方法多樣,部分方法出錯(cuò)率很高,并且診斷胚胎異常的標(biāo)準(zhǔn)不一[7]。檢測(cè)的材料對(duì)結(jié)果也有影響,如果檢測(cè)的是發(fā)育阻滯的胚胎,則出現(xiàn)嵌合體的幾率比形態(tài)正常的胚胎高。實(shí)驗(yàn)室培養(yǎng)環(huán)境(溫度、pH值、培養(yǎng)液成分等)也會(huì)影響嵌合體胚胎的診斷。無(wú)論是卵裂期胚胎或囊胚應(yīng)用合適的FISH方法,嵌合體的檢出率都可控制在30%左右。
單核苷酸多態(tài)性(SNP)、比較基因組雜交(aCGH)、定量PCR(qPCR)和二代測(cè)序(NGS)等分子細(xì)胞學(xué)技術(shù)比FISH更具有優(yōu)勢(shì),可以同時(shí)對(duì)24對(duì)染色體進(jìn)行檢測(cè)。但是由于對(duì)每個(gè)細(xì)胞都進(jìn)行檢測(cè)費(fèi)用昂貴,因此很少用于診斷胚胎是否為嵌合體。很多新的研究應(yīng)用全面染色體篩查(CCS)技術(shù),通過囊胚活檢,一次活檢約5個(gè)細(xì)胞作為一個(gè)整體進(jìn)行分析。由于正常細(xì)胞和非整倍體細(xì)胞混合檢測(cè),難以準(zhǔn)確診斷嵌合體。不同檢測(cè)方法得出卵裂期胚胎活檢嵌合體發(fā)生率在15%到75%[8-9]。
由于卵裂期胚胎嵌合體發(fā)生率高,目前學(xué)界傾向于對(duì)第5天或第6天囊胚進(jìn)行滋養(yǎng)外胚層活檢,同時(shí)應(yīng)用CCS技術(shù),對(duì)胚胎進(jìn)行更全面的評(píng)估[10]。囊胚期活檢的優(yōu)點(diǎn)在于比起卵裂期胚胎,可以活檢更多的細(xì)胞(大約5~10個(gè)),對(duì)非整倍體篩查更加全面。嵌合體囊胚的多細(xì)胞活檢容易檢出不同細(xì)胞系來源的細(xì)胞,單次活檢即可以做出診斷。文獻(xiàn)報(bào)道卵裂期嵌合體發(fā)生率最高,在15%~90%,囊胚活檢嵌合體發(fā)生率在3%~24%之間[11-13]。
和非整倍體不同,嵌合體發(fā)生率不會(huì)隨著年齡增大而增加,不同年齡的女性囊胚嵌合體發(fā)生率均約為30%。但是,由于高齡女性更容易出現(xiàn)減數(shù)分裂錯(cuò)誤,囊胚活檢細(xì)胞全部為整倍體細(xì)胞的幾率降低,文獻(xiàn)報(bào)道35歲以下的女性整倍體細(xì)胞占48.2%,42歲以上的女性僅占10.6%[7]。有絲分裂錯(cuò)誤導(dǎo)致嵌合體的發(fā)生,減數(shù)分裂錯(cuò)誤導(dǎo)致非整倍體發(fā)生,而有絲分裂錯(cuò)誤可伴隨減數(shù)分裂錯(cuò)誤從而導(dǎo)致胚胎嵌合體,因此對(duì)這部分人群可進(jìn)行胚胎植入前非整倍體篩查(PGS-A)。目前應(yīng)用非常廣泛的是NGS技術(shù),由于測(cè)序深度和平臺(tái)的不同,檢測(cè)細(xì)胞的敏感性也不同,因此導(dǎo)致PGS-A的結(jié)果也可能出現(xiàn)不同。
NGS有多個(gè)平臺(tái),檢測(cè)嵌合體的敏感性也不同。國(guó)際上最廣泛應(yīng)用的高分辨NGS(hr-NGS)方法是Illumina公司的VeriSeq PGS。利用MiSeq臺(tái)式測(cè)序儀,對(duì)短片段DNA序列進(jìn)行讀取。不需要對(duì)每一個(gè)染色體片段都進(jìn)行測(cè)序,為了降低檢測(cè)費(fèi)用,只需要同時(shí)檢測(cè)部分DNA“條形碼”,以判斷被檢測(cè)標(biāo)本是否為嵌合體[14]。hr-NGS可以檢測(cè)出異常細(xì)胞占20%~80%的嵌合體,由于每個(gè)囊胚平均活檢5~10個(gè)細(xì)胞,hr-NGS可以檢測(cè)出1/5(20%)至4/5(80%)的嵌合性。但是,也有觀點(diǎn)質(zhì)疑hr-NGS診斷嵌合體的準(zhǔn)確性。有研究認(rèn)為hr-NGS不能區(qū)別低比例嵌合和背景噪音[15],還有觀點(diǎn)認(rèn)為嵌合體檢測(cè)存在缺陷,如果三體和單體細(xì)胞數(shù)目相等,檢測(cè)結(jié)果將會(huì)是整倍體[16]。但是一項(xiàng)初步研究[17]通過對(duì)同一胚胎進(jìn)行多次活檢,然后應(yīng)用hr-NGS進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果發(fā)現(xiàn)28個(gè)胚胎中僅有兩個(gè)胚胎同時(shí)有單體和三體細(xì)胞系,提示這種現(xiàn)象很少發(fā)生,因?yàn)楫?dāng)胚胎發(fā)育到囊胚期時(shí)一個(gè)異常細(xì)胞系已經(jīng)替代另一異常細(xì)胞系。
aCGH應(yīng)用Illumina公司的Bluefuse分析軟件,也用于嵌合體胚胎的診斷,但是相比hr-NGS,其對(duì)多細(xì)胞樣本的檢測(cè)動(dòng)態(tài)范圍窄(異常細(xì)胞約占40%~60%)、錯(cuò)誤率高[18],難以區(qū)分背景噪音和嵌合。Maxwell 等[19]進(jìn)行了驗(yàn)證性研究,對(duì)aCGH診斷為整倍體胚胎但移植后流產(chǎn),用NGS對(duì)囊胚滋養(yǎng)外胚層細(xì)胞DNA樣本擴(kuò)增產(chǎn)物重新檢測(cè),發(fā)現(xiàn)其中31.6%的胚胎為嵌合體,5.2%為多倍體。也有文獻(xiàn)報(bào)道第3天胚胎行aCGH活檢,再用FISH重新檢測(cè),發(fā)現(xiàn)aCGH的假陽(yáng)性率是2%~3%[11]。由于aCGH也是將整倍體細(xì)胞和非整倍體細(xì)胞混合檢測(cè),當(dāng)樣本中≥35%的細(xì)胞是非整倍體細(xì)胞aCGH才能檢測(cè)出來[20],敏感性和準(zhǔn)確性較差。
細(xì)胞活檢技術(shù)本身也會(huì)影響結(jié)果。雖然沒有完全證實(shí),但是觀察發(fā)現(xiàn)應(yīng)用激光或機(jī)械牽拉進(jìn)行細(xì)胞活檢可能導(dǎo)致人為的染色體丟失或增加。如果活檢的細(xì)胞中有已經(jīng)死亡或凋亡的細(xì)胞,會(huì)導(dǎo)致樣本污染,影響DNA擴(kuò)增,從而將正常胚胎誤診為嵌合體。還有一種比較極端的情況是當(dāng)異常細(xì)胞局限于胚胎的某一區(qū)域,容易造成將嵌合胚胎誤認(rèn)為整倍體或非整倍體。但是,目前證據(jù)證實(shí)嵌合體胚胎的異常細(xì)胞一般是均勻隨機(jī)分布的,因?yàn)槭芫蟮那皫状斡薪z分裂容易出錯(cuò),從而導(dǎo)致嵌合體的異常細(xì)胞分散分布。
當(dāng)PGS檢測(cè)結(jié)果同時(shí)有整倍體和嵌合體時(shí),應(yīng)優(yōu)先選擇整倍體胚胎進(jìn)行移植。但是如果檢測(cè)結(jié)果僅有嵌合體胚胎,是否應(yīng)該移植嵌合體胚胎仍然有爭(zhēng)議。Bolton等[21]通過構(gòu)建小鼠嵌合體模型,發(fā)現(xiàn)非整倍體細(xì)胞的結(jié)局取決于細(xì)胞譜系。胎兒譜系的非整倍體細(xì)胞可通過凋亡清除,胎盤譜系的非整倍體細(xì)胞出現(xiàn)嚴(yán)重的生長(zhǎng)缺陷。Fiorentino等[22]研究發(fā)現(xiàn),移植18個(gè)嵌合體胚胎(嵌合細(xì)胞占35%~50%),其中6個(gè)最終正常活產(chǎn)。文獻(xiàn)報(bào)道約40%的嵌合體胚胎移植后可以獲得妊娠[11,23-24],但是與滋養(yǎng)外胚層細(xì)胞活檢正常的囊胚相比,嵌合體胚胎種植率低,流產(chǎn)風(fēng)險(xiǎn)高,且復(fù)雜嵌合體(約占總胚胎的4.5%)比僅有一兩條染色體嵌合的胚胎明顯種植率低[24]。PGS診斷為嵌合體的胚胎有自我糾正的機(jī)制,學(xué)說包括以下幾種:整倍體細(xì)胞優(yōu)勢(shì)生長(zhǎng)、異常細(xì)胞自我糾正、正常細(xì)胞向內(nèi)細(xì)胞團(tuán)聚集。三體細(xì)胞群可通過后期延遲或染色體不分離以丟失多余的染色體達(dá)到自我糾正[25],但是這種情況可能性很小,因?yàn)樵谀遗邫z測(cè)中很少發(fā)現(xiàn)單親二體[26]。研究發(fā)現(xiàn)非整倍體細(xì)胞生長(zhǎng)慢,可在細(xì)胞凋亡過程中死亡,在胚胎發(fā)育過程中數(shù)量逐漸減少,最終健康胎兒出生。嵌合發(fā)生的染色體號(hào)數(shù)和持續(xù)種植率無(wú)關(guān),除了17號(hào)染色體外,幾乎所有出現(xiàn)嵌合的染色體都有最終妊娠。染色體的大小和持續(xù)種植率也無(wú)關(guān),但是大染色體的嵌合部分顯著比小染色體多。
對(duì)于活檢滋養(yǎng)外胚層的5~10個(gè)細(xì)胞能否準(zhǔn)確代表整個(gè)胚胎仍不清楚,因此這就可以解釋為什么異常細(xì)胞>40%的嵌合胚胎移植后也有著床的。胎兒或新生兒的嵌合型可導(dǎo)致先天畸形,自閉癥和精神發(fā)育遲緩。每條染色體的嵌合型都可能導(dǎo)致異常表型。異常表型可能胎兒發(fā)育正常,也可能受到嚴(yán)重影響,基因型與表型的關(guān)系很難判斷。因此,理論上所有移植嵌合體胚胎的妊娠和活產(chǎn)都應(yīng)該檢查胎兒染色體核型,并且對(duì)孩子的發(fā)育進(jìn)行長(zhǎng)期隨訪。PGDIS指南建議,對(duì)于移植嵌合胚胎妊娠的女性需做羊水穿刺進(jìn)行產(chǎn)前診斷。僅進(jìn)行無(wú)創(chuàng)產(chǎn)前檢查和絨毛活檢是不夠的,因?yàn)樗鼈冎粰z查滋養(yǎng)外胚層(形成胎盤),并不能檢測(cè)內(nèi)細(xì)胞團(tuán)(形成胎兒)。
是否移植嵌合體胚胎需要考慮多方面因素[27],例如PGD的檢測(cè)方法、嵌合程度、嵌合發(fā)生在哪條染色體、患者的要求等。一些實(shí)驗(yàn)室用截點(diǎn)值來區(qū)分嵌合型胚胎是正?;虍惓?,通常把異常細(xì)胞的截點(diǎn)值定為40%或50%,但是這樣容易出現(xiàn)假陽(yáng)性(浪費(fèi)正常胚胎)和假陰性(導(dǎo)致誤診和可能的并發(fā)癥)[28]。嵌合體是除了整倍體和非整倍體以外的第三種胚胎類型,在移植級(jí)別中次優(yōu)于整倍體胚胎。如果沒有整倍體胚胎,根據(jù)患者的需求,進(jìn)行遺傳咨詢,在充分了解風(fēng)險(xiǎn)和知情同意的情況下,可以考慮移植嵌合體胚胎[29-30]。對(duì)于移植嵌合體胚胎妊娠的患者,建議行產(chǎn)前診斷。
隨著科技的發(fā)展,未來有望能準(zhǔn)確診斷嵌合體胚胎,這樣可以避免丟棄可用胚胎,對(duì)于卵巢儲(chǔ)備功能差、無(wú)整倍體胚胎的患者可以增加移植機(jī)會(huì)。為了了解嵌合體的真實(shí)發(fā)生率,需要對(duì)全面染色體篩查實(shí)驗(yàn)室制定標(biāo)準(zhǔn)化流程和共識(shí)。同時(shí),也需要進(jìn)一步研究和長(zhǎng)時(shí)間隨訪以了解嵌合體胚胎移植后的結(jié)局。
【參考文獻(xiàn)】
[1] Vera-Rodriguez M,Rubio C. Assessing the true incidence of mosaicism in preimplantation embryos[J].Fertil Steril,2017,107:1107-1112.
[2] Loannou D,F(xiàn)onseka KG,Meershoek EJ,et al. Twenty-four chromosome FISH in human IVF embryos reveals patterns of post-zygotic chromosome segregation and nuclear organisation[J]. Chromosome Res,2012,20: 447-460.
[3] Coonen E,Derhaag JG,Dumoulin JC,et al. Anaphase lagging mainly explains chromosomal mosaicism in human preimplantation embryos[J]. Hum Reprod,2004,19: 316-324.
[4] Capalbo A,Bono S,Spizzichino L,et al. Sequential comprehensive chromosome analysis on polar bodies,blastomeres and trophoblast: insights into female meiotic errors and chromosomal segregation in the preimplantation window of embryo development[J]. Hum Reprod,2013,28: 509-518.
[5] Taylor TH,Gitlin SA,Patrick JL,et al. The origin,mechanisms,incidence and clinical consequences of chromosomal mosaicism in humans[J]. Hum Reprod Update,2014,20: 571-581.
[6] Colls P,Escudero T,Cekleniak N,et al. Increased efficiency of preimplantation genetic diagnosis for infertility using “no result rescue”[J]. Fertil Steril,2007,88: 53-61.
[7] Munne S,Wells D. Detection of mosaicism at blastocyst stage with the use of high-resolution next-generation sequencing[J]. Fertil Steril,2017,107: 1085-1091.
[8] Mertzanidou A,Wilton L,Cheng J,et al. Microarray analysis reveals abnormal chromosomal complements in over 70% of 14 normally developing human embryos[J]. Hum Reprod,2013,28: 256-264.
[9] Wells D,Delhanty JD. Comprehensive chromosomal analysis of human preimplantation embryos using whole genome amplification and single cell comparative genomic hybridization[J]. Mol Hum Reprod,2000,6: 1055-1062.
[10] Weissman A,Shoham G,Shoham Z,et al. Chromosomal mosaicism detected during preimplantation genetic screening: results of a worldwide Web-based survey[J]. Fertil Steril,2017,107: 1092-1097.
[11] Greco E,Minasi MG,F(xiàn)iorentino F. Healthy Babies after Intrauterine Transfer of Mosaic Aneuploid Blastocysts[J]. N Engl J Med,2015,373: 2089-2090.
[12] Ruttanajit T,Chanchamroen S,Cram DS,et al. Detection and quantitation of chromosomal mosaicism in human blastocysts using copy number variation sequencing[J]. Prenat Diagn,2016,36: 154-162.
[13] Capalbo A,Wright G,Elliott T,et al. FISH reanalysis of inner cell mass and trophectoderm samples of previously array-CGH screened blastocysts shows high accuracy of diagnosis and no major diagnostic impact of mosaicism at the blastocyst stage[J]. Hum Reprod,2013,28: 2298-2307.
[14] Kung A,Munne S,Bankowski B,et al. Validation of next-generation sequencing for comprehensive chromosome screening of embryos[J/OL]. Reprod Biomed Online,2015,31: 760-769.
[15] Capalbo A,Ubaldi FM,Rienzi L,et al. Detecting mosaicism in trophectoderm biopsies: current challenges and future possibilities[J]. Hum Reprod,2017,32: 492-498.
[16] Scott RT Jr,Galliano D. The challenge of embryonic mosaicism in preimplantation genetic screening[J]. Fertil Steril,2016,105: 1150-1152.
[17] Garrisi J,Walmsley RH,Bauckman K,et al. Discordance among serial biopsies of mosaic embryos[J]. Fertil Steril,2016,106(Suppl):e151.
[18] Fiorentino F,Biricik A,Bono S,et al. Development and validation of a next-generation sequencing-based protocol for 24-chromosome aneuploidy screening of embryos[J]. Fertil Steril,2014,101: 1375-1382.
[19] Maxwell SM,Colls P,Hodes-Wertz B,et al. Why do euploid embryos miscarry? A case-control study comparing the rate of aneuploidy within presumed euploid embryos that resulted in miscarriage or live birth using next-generation sequencing[J]. Fertil Steril,2016,106: 1414-1419 e1415.
[20] Mamas T,Gordon A,Brown A,et al. Detection of aneuploidy by array comparative genomic hybridization using cell lines to mimic a mosaic trophectoderm biopsy[J]. Fertil Steril,2012,97: 943-947.
[21] Bolton H,Graham SJ,Van der Aa N,et al. Mouse model of chromosome mosaicism reveals lineage-specific depletion of aneuploid cells and normal developmental potential[J]. Nat Commun,2016,7: 11165.
[22] Fiorentino F. Clinical outcome derived after transfer of embryos with chromosomal mosaicism[J].Hum Reprod,2016,31(suppl 1):513.
[23] Fragouli E,Alfarawati S,Spath K,et al. Analysis of implantation and ongoing pregnancy rates following the transfer of mosaic diploid-aneuploid blastocysts[J]. Hum Genet,2017,136: 805-819.
[24] Munne S,Blazek J,Large M,et al. Detailed investigation into the cytogenetic constitution and pregnancy outcome of replacing mosaic blastocysts detected with the use of high-resolution next-generation sequencing[J]. Fertil Steril,2017,108: 62-71 e68.
[25] Bazrgar M,Gourabi H,Valojerdi MR,et al. Self-correction of chromosomal abnormalities in human preimplantation embryos and embryonic stem cells[J]. Stem Cells Dev,2013,22: 2449-2456.
[26] Gueye NA,Devkota B,Taylor D,et al. Uniparental disomy in the human blastocyst is exceedingly rare[J]. Fertil Steril,2014,101: 232-236.
[27] Munne S,Grifo J,Wells D. Mosaicism: “survival of the fittest” versus “no embryo left behind”[J]. Fertil Steril,2016,105: 1146-1149.
[28] Capalbo A,Rienzi L. Mosaicism between trophectoderm and inner cell mass[J]. Fertil Steril,2017,107: 1098-1106.
[29] Harton GL,Cinnioglu C,F(xiàn)iorentino F. Current experience concerning mosaic embryos diagnosed during preimplantation genetic screening[J]. Fertil Steril,2017,107: 1113-1119.
[30] Besser AG,Mounts EL. Counselling considerations for chromosomal mosaicism detected by preimplantation genetic screening[J/OL]. Reprod Biomed Online,2017,34: 369-374.