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        鵝金黃色葡萄球菌感染診斷與治療

        2018-03-14 09:18:00陳永霞徐志偉吳益?zhèn)?/span>經(jīng)圣勇
        中國畜牧獸醫(yī)文摘 2018年2期
        關(guān)鍵詞:氨芐西林金黃色葡萄球菌

        陳永霞 徐志偉 吳益?zhèn)?經(jīng)圣勇 郭 蘋*

        (1.句容市動物疫病預(yù)防控制中心,江蘇句容 212400;2.江蘇丘陵地區(qū)鎮(zhèn)江農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所,江蘇句容 212400;3.句容市郭莊畜牧獸醫(yī)站,江蘇句容 212431)

        2017年4月,句容市郭莊鎮(zhèn)李福祥鵝場購進雛鵝2500只,上午9點運進育雛舍,下午5點發(fā)現(xiàn)死亡36只,原以為是運輸不當(dāng),在飲水中加入青霉素、葡萄糖,任其自由飲水,第2d又死亡一百多只,又在飼料中加入諾氟沙星,雛鵝病狀未見好轉(zhuǎn),到第3d早上,已出現(xiàn)癥狀雛鵝538只,發(fā)病率達到21.52%,臨床癥狀表現(xiàn)為精神沉郁,羽毛粗亂無光,伏地不愿走動,關(guān)節(jié)腫大,腳掌發(fā)燙,手輕觸摸皮膚有時會破皮。翅下有斑點出血,拉稀,眼瞼腫脹,眼半閉呈嗜睡狀態(tài),有大量膿性分泌物玷污眼周,有些鵝鼻流黏液,頭頸高舉伸出,嘴張開,多數(shù)發(fā)病后1~3d死亡,為了確診本病,經(jīng)剖檢及細菌形態(tài)觀察、培養(yǎng)特性、生化及致病性鑒定等試驗,確定為金黃色葡萄球菌感染所致。

        1 材料

        1.1 病鵝

        病理解剖病死鵝10只,瀕死鵝5只,分三個批次,A批4只,B批4只,C批7只。

        1.2 培養(yǎng)基及試劑

        麥康凱培養(yǎng)基、巧克力培養(yǎng)基、LB固體培養(yǎng)基、LB液體培養(yǎng)基(Takala)、氯化鈉、三氯甲烷、3%過氧化氫、藥敏紙片、氧化酶試劑、細菌微量生化發(fā)酵管、生理鹽水。

        2 診斷方法

        2.1 臨床診斷

        2.1.1 病理解剖

        對病死鵝、瀕死鵝進行解剖,檢查病鵝全身器官狀態(tài)找到病變部位觀察病變情況。

        2.1.2 病原分離和培養(yǎng)

        (1)細菌的初代分離

        病料采集與培養(yǎng)[1]

        ①無菌環(huán)境下取病死鵝心血、肝臟、脾臟、腦;

        ②分別接種于麥康凱培養(yǎng)基37℃恒溫培養(yǎng)24h、巧克力培養(yǎng)基37℃恒溫培養(yǎng)24h、巧克力培養(yǎng)基37℃燭缸培養(yǎng)24h,觀察菌落形態(tài);

        ③將不同形態(tài)的菌落在LB培養(yǎng)基上劃線接種,37℃培養(yǎng)24h,觀察細菌的培養(yǎng)特性。

        (2)細菌鑒別制備血清[2]

        ①分別取8只未發(fā)病鵝,20只發(fā)病鵝的血樣,翅靜脈采血,每只采血樣2 ~3ml;

        ②37℃溫育1h,然后再自然放置4℃冰箱里過夜;

        ③析出血清后,將血清移到1ml小塑料離心管中,每管裝量不超過300μl,加一滴氯仿作防腐劑,緊蓋瓶塞,封口,編號并貼好標簽,4℃低溫保存。

        平板凝集試驗[3]

        ①用無菌接種環(huán)取一環(huán)血清,置干凈載玻片一端,另一端取生理鹽水一環(huán)做對照;

        ②用無菌接種環(huán)釣取被檢細菌少許混勻于血清中,將接種環(huán)滅菌后冷卻,釣取被檢菌少許混勻于生理鹽水,經(jīng)10~30s后觀察是否出現(xiàn)肉眼可見的凝集塊;

        ③按同樣的方法依次檢測各血清與不同形態(tài)疑似菌是否出現(xiàn)凝集反應(yīng),記錄陽性率,確定陽性菌。

        2.2 實驗室診斷

        2.2.1 生化試驗[4]

        ①將LB培養(yǎng)基上的純化菌落接種并穿刺明膠培養(yǎng)基,37℃培育24h,靜置冰箱30min,觀察其是否被細菌液化;

        ②挑取分離純化細菌接種乳糖、葡萄糖、麥芽糖、甘露醇、蔗糖微量發(fā)酵管中,置37℃溫箱培育24h觀察結(jié)果。

        2.2.2 血漿凝固酶試驗[5]

        無菌情況下,取肉湯培養(yǎng)物0.3ml和0.5ml兔血漿在試管中充分融合,置37℃培育,定期觀察是否生成凝塊,至少觀察6h,以內(nèi)容物完全凝固,使試管傾斜或倒置時不流動者為陽性。

        3 結(jié)果與分析

        3.1 病理變化

        A批鵝,肝臟暗紅,有出血點,表面覆蓋有黃白色的纖維素性滲出物,心包膜增厚、心臟外包黃色纖維素性滲出物,見圖1-a。B批鵝,腹腔有難聞的腐敗氣味,肝臟腫大,呈紫紅色,腹腔積有少量膠凍狀黃色滲出物,2只鵝氣管內(nèi)黏液增多,見圖1-b、圖1-f。C批鵝,心包膜增厚,肝臟腫大、瘀血、暗紅色,有大量出血點,1只鵝氣囊膜混濁變厚,肺充血,有少量氣泡,見圖1-c、圖1-e。鏡檢肺部病灶,見圖1-d。

        3.2 細菌鑒定

        3.2.1 初代培養(yǎng)特性

        A批鵝,麥康凱培養(yǎng)基不生長,巧克力培養(yǎng)基生長出光滑、圓形、邊緣整齊、針尖大小的暗灰色菌落,見圖2-a。B批鵝,麥康凱培養(yǎng)基不生長,巧克力培養(yǎng)基生長出三種菌落,且三種菌落均在腸道組織接種部位:XJY42呈圓形、凸起、表面光滑、濕潤、微帶淺黃色(菌3),XJY43呈圓形、光滑、濕潤、針尖大小菌落,有溶血現(xiàn)象(菌4),見圖2-b。C批鵝,麥康凱培養(yǎng)基不生長,巧克力培養(yǎng)基生長出光滑、圓形、邊緣整齊、針尖大小的灰白色菌落,見圖2-c。

        圖1 病死鵝病理變化

        圖2 菌落形態(tài)

        3.2.2 凝集試驗

        確定XJY42為陽性菌株。

        3.3 生化試驗

        XJY42能發(fā)酵葡萄糖、乳糖、蔗糖、麥芽糖、甘露醇,產(chǎn)酸不產(chǎn)氣[6];血漿凝固酶試驗、過氧化氫酶試驗均陽性;可液化明膠(表1)。

        表1 XJY42生化特性

        3.4 藥物敏感試驗

        3.4.1 藥敏試驗方法

        對分離菌株進行藥敏試驗,采用紙片法:

        ①取一接種環(huán)被檢菌液,均勻涂在LB培養(yǎng)基上;

        ②稍干后用無菌鑷子貼上藥敏紙片,各紙片中心相距至少24mm,并用鑷子輕壓紙片使之緊貼瓊脂表面;

        ③37℃培育24h后測量抑菌圈直徑,根據(jù)抑菌圈直徑大小判定細菌對藥物的敏感性。

        抗菌效果判定:

        青霉素G對葡萄球菌的抑菌圈直徑≥29mm為敏感,≤28mm為不敏感;其他藥物抑菌圈直徑〉20mm為高敏,15~20mm為中敏,〈15mm為不敏感[7]。

        3.4.2 實驗結(jié)果

        XJY42對慶大霉素、阿莫西林、呋喃妥因、頭孢菌素VI、頭孢噻肟、奧復(fù)星、萬古霉素、氨芐西林高度敏感(表2)。

        表2 不同抗生素對XJY42菌株藥敏試驗結(jié)果

        經(jīng)病理變化分析、細菌鑒定、生化試驗等方法,鑒定為金黃色葡萄球菌感染。藥敏試驗結(jié)果表明,XJY42株對阿莫西林、頭孢菌素VI、氨芐西林等高度敏感。

        4 治療與預(yù)防

        4.1 治療方法

        ①20%阿莫西林,15-20kg飲水混入25g,連續(xù)3~5d;

        ②氨芐西林,每只雛鵝1萬單位,中鵝3萬~5萬單位,肌肉注射,每天3次。也可以10%氨芐西林拌料或飲水,50g氨芐西林拌料100kg或兌水80-150kg現(xiàn)配現(xiàn)用,每日兩次,連續(xù)3-5d;

        ③呋喃妥因,按0.01%~0.02%的比例拌料服用,每日一次,連續(xù)3~5d;

        ④妥布霉素針劑,0.3~1.1μg/ml,肌肉注射。

        經(jīng)上述藥物綜合治療后,痊愈452只,治愈率達到84%。

        4.2 預(yù)防措施

        ①一定要重視孵化室、種蛋及各種器材用具的衛(wèi)生問題,定期需要消毒殺菌,防止感染;

        ②剛出生的雛鵝需要服用抗菌藥預(yù)防感染,如用氨芐西林飲水,用量為1g藥物加2kg水,連用3d;

        ③飼料內(nèi)加入土霉素,按照0.1%的比例拌飼料,連用3-5d。

        5 討論

        金黃色葡萄球菌無處不在,作為常見病原,大部分存在于呼吸道里和皮膚表面上。金黃色葡萄球菌感染一年四季都可能發(fā)生,尤其是氣候多變季節(jié)和潮濕的下雨季節(jié)更為多發(fā);各種年齡段的禽類都容易感染,但以幼禽[8]更加敏感,多見于40~80日齡中雛。

        金黃色葡萄球菌是禽類化膿性感染中最為多見的病原菌,會導(dǎo)致各種感染,也可能引起肺炎、心包炎、偽膜性腸炎,甚至引起膿毒癥等全身感染。金黃色葡萄球菌是皮膚表面的常在菌,在大部分情況下是不會入侵體內(nèi),但當(dāng)皮膚和黏膜受到損傷,如注射疫苗、網(wǎng)刺、刮傷等可成為本病發(fā)生的因素。

        近年來各種實驗研究發(fā)現(xiàn),金黃色葡萄球菌粘黏在黏膜表面是感染的最先要條件。細菌粘黏是細菌膜上的黏附素蛋白與機體內(nèi)胞外基質(zhì)(互相反應(yīng)作用的結(jié)果。雖然機體內(nèi)胞外基質(zhì)通常不暴露出來,但在組織受到破壞后,機體內(nèi)胞外基質(zhì)就暴露出來,金黃色葡萄球菌就會引起感染。

        感染初期出現(xiàn)癥狀,體熱,關(guān)節(jié)腫脹,精神狀態(tài)低沉,不愿意動。發(fā)病初期食欲正常,之后食欲降低,瘦弱,最后因營養(yǎng)不良死亡。解剖檢驗可以看見關(guān)節(jié)處有漿性到干酪樣的滲出物;肝大,充血。鏡檢下可以看見關(guān)節(jié)滑膜纖維增生壞死;肝臟細胞病變壞死,血管周圍的單核細胞和易染性白細胞數(shù)量增加。

        金黃色葡萄球菌所導(dǎo)致感染的疾病病死率高、耐藥性強,治療困難。植入疫苗是預(yù)防感染的方法,目前疫苗主要分為四種:以金黃色葡萄球菌全菌或部分菌體為疫苗、針對莢膜和黏附因子的疫苗、針對毒素和酶的疫苗、針對毒力因子的疫苗[9]。金黃色葡萄球菌為兼性厭氧菌,對于營養(yǎng)方面的需求不高,在普通培養(yǎng)基上就可以生長繁殖,革蘭氏陽性。

        金黃色葡萄球菌的耐藥性逐日增強,所以應(yīng)該采集病樣快速分析出病菌種類,通過藥物敏感試驗后,選取最適宜的藥物,拌在飼料和日常飲用水中,對全部禽類進行治療,這是大量飼養(yǎng)禽類下發(fā)病之后的首要控制治療措施。金黃色葡萄球菌感染發(fā)病率與所在環(huán)境中球菌的含量成正比,病死鵝的排泄物加大了環(huán)境中金黃色葡萄球菌的含量,更加加速了病情的惡化。在飼養(yǎng)管理過程中,應(yīng)完善防疫設(shè)施,注意環(huán)境衛(wèi)生,并進行定期消毒。由于抗生素的大量使用,金黃色葡萄球菌出現(xiàn)大量耐藥菌株,特別是耐甲氧西林葡萄球菌的出現(xiàn)使得金黃色葡萄球菌成為世界感染頑疾之一。

        微生物的檢測正向著更迅速、更簡單、更精確的趨勢發(fā)展,法國梅里埃公司和美國3M公司的2種快速鑒別金黃色葡萄球菌的培養(yǎng)基??梢员热涨捌毡榈臋z測方式減短一半的時間,完全適合用在實驗室的快速檢測,尤其是在設(shè)施缺乏的實驗室中,更加能顯示出操作使用的方便性。聚合酶鏈式反應(yīng)法是檢測耐甲氧西林菌株的最適宜方法,雖然存在容易引起污染、假性陰性等困擾,但是因為可快捷擴增DNA片段和目的基因,因此在檢測行業(yè)有著不可小覷的實用價值。多種檢測方式[10]相互結(jié)合可以相較以往很大的提升檢測金黃色葡萄球菌的敏感度[11],是檢測病菌的發(fā)展趨勢。

        [1] 王紅寧,朱慶.養(yǎng)禽與禽病防治新進展[M].中國農(nóng)業(yè)出版社,1997:207-211.

        [2] 張生勇.淺談畜禽采血與血清制備[J].畜牧市場,2005,(3):68.

        [3] 姚火春.獸醫(yī)微生物學(xué)實驗指導(dǎo)[M].中國農(nóng)業(yè)出版社,2002:36-37.

        [4] 廖延雄.獸醫(yī)微生物實驗室診斷手冊[M].中國農(nóng)業(yè)出版社,1995:81-93.

        [5] 盤寶進,謝永平,汪文龍,等.鵝金黃色葡萄球菌的分離與鑒定[J].廣西畜牧獸醫(yī),2004,20(1):6-8.

        [6] Buchanan R,Gibbons N.伯杰細菌鑒定手冊[M].科學(xué)出版社,1984:598-599,667-672.

        [7] 羅君毅,程池.酶制劑抗菌活性檢測標準菌株的藥敏性分析[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2009,(1):17-22.

        [8] 梁毅珊.金黃色葡萄球菌腸毒素及其檢測方法的研究進展[J].中國熱帶醫(yī)學(xué),2008,8(9):1658-1659.

        [9] 李毅.金黃色葡萄球菌及其腸毒素研究進展[J].中國衛(wèi)生檢驗雜志,2004,(4):86-88.

        [10] 龍軍,陳清,俞守義.PCR-ELISA法檢測葡萄球菌腸毒素A[J].中國公共衛(wèi)生,2004,20(11):1340-1341.

        [11] 黃韜睿,李玉鋒,王鑫.PCR和ELISA在食源性致病菌檢測中的應(yīng)用[J].現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技,2008,(9):182-184.

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