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缺血后處理(ischemic postconditioning,IPOC)是在缺血預(yù)處理基礎(chǔ)上提出的新概念,具有重要的內(nèi)源性腦保護作用,可減輕腦缺血再灌注(ischmia/ reperfusion,I/R)損傷。有研究發(fā)現(xiàn),磷脂酸肌醇-3激酶(phosphoinositide-3-kinase,PI3K)/Akt信號途徑參與IPOC的細胞保護,發(fā)揮抑制凋亡或促進增殖等效應(yīng)[1]。藥物后處理是近年研究的另一個熱點,有研究證實其具有與IPOC類似作用[2],但兩者是否具有協(xié)同作用尚待進一步研究。臨床研究及動物實驗均證實,水蛭注射液治療急性腦梗死有確切療效[3],但其后處理效應(yīng)及機制尚不明確。本實驗通過觀察PI3K的表達變化,比較IPOC和聯(lián)合水蛭注射液后處理對腦缺血再灌注損傷的影響,以探討二者的協(xié)同腦保護機制。
1.1 實驗動物和藥物制備 健康雄性SD大鼠40只(SPF級),鼠齡2.0個月~2.2個月,體重250 g±50 g,購于廣西醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心。水蛭注射液由廣西中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院中藥制劑室制備,選用廣西菲牛蛭的干燥全體經(jīng)水煎醇沉法提取,再經(jīng)跨熱處理法制得,每支含1 g原生藥(每支:2 mL)。
1.2 動物分組及處理 將40只大鼠隨機分為4組:假手術(shù)組(SO組)、缺血再灌注(MCAO)組、缺血后處理組(IPOC組)、缺血后處理+水蛭注射液后處理組(P-L組)。SO組:線栓只插入頸內(nèi)動脈9 mm;MCAO組:實施90 min的腦缺血和24 h的再灌注;IPOC組與P-L組:在MCAO組基礎(chǔ)上,在再灌注即刻將線栓從頸總動脈(CCA)內(nèi)抽出30 s后,再將線栓置入30 s,反復(fù)進行3次后進行再灌注24 h。并在再灌注同時給予P-L組水蛭注射液4 mg/kg腹腔注射,其余各組予4 mL生理鹽水腹腔注射。
1.3 造模方式 采用線栓法建立大鼠MCAO模型,之后參照文獻[4]行缺血后處理,即再灌注即刻將尼龍線栓從CCA內(nèi)抽出30 s,再將線栓重新置入30 s,反復(fù)3次后進行再灌注24 h。
1.4 主要試劑 總RNA提取試劑盒購于中國TIANGEN公司;PCR反應(yīng)試劑盒及逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購于日本TaKaRa公司;引物及內(nèi)參均由大連寶生物有限公司提供;兔抗大鼠PI3K多克隆抗體購于美國Santa Cruz;偶聯(lián)有辣根過氧化物(HRP)羊抗兔IgG二抗購于武漢博士德生物有限公司;內(nèi)參甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)購于上??党缮锕?。
1.5 大鼠腦梗死體積測定 采用氯化三苯基四氮唑(TTC)染色法。大鼠處死后取腦后經(jīng)視交叉水平向后行冠狀切片5片,厚度約2 mm,各腦片在同等條件下用數(shù)碼相機正反面拍照,應(yīng)用病理圖像分析儀測量每個腦片的梗死面積及該片總面積,按公式:[(各片正反面梗死面積之和/2)×片厚]/[(各片正反面總面積之和/2)×片厚]×100%計算梗死體積。
1.6 缺血半暗帶腦皮質(zhì)PI3K mRNA表達測定 ①大腦組織總RNA提?。簠⒖伎俁NA提取試劑盒說明書提取;②總RNA純度濃度測定:采用紫外分光光度法,測定每組RNA樣品260 nm~280 nm的吸光度,并根據(jù)OD260/OD280比值評估RNA的純度;③引物合成:PI3K,上游:GGCTGCTATGCCTGCTCTGTA;下游CATAGCCGGTGGCAGTCTTG產(chǎn)物長度為154 bp;GAPDH上游5’-GACAACTTTGGCATCGTGGA-3’;下游5’-ATGCAGGGATGATGTTCTGG-3’,產(chǎn)物長度133 bp;④比較兩基因擴增效率:通過對照樣品、檢測樣品的目的基因及管家基因的Ct值,之后以管家基因Ct值為依據(jù)對目的基因進行差值校正(ΔCT值),以此表示其mRNA相對表達量;⑤反應(yīng)體系及條件:兩種基因同管擴增,反應(yīng)體系均為20 μL,其中SYBR Premix Ex Taq Ⅱ(2×)10 μL,cDNA模板2.0 μL、兩種基因上下游引物(10 pmol/ μL)各0.8 μL、ROX Reference Dye Ⅱ(50×)*3 0.4 μL,加無RNA酶的水6 μL。在Appllied Blosystem7500 Real PCR System中進行擴增反應(yīng),反應(yīng)條件為:94 ℃預(yù)變性30 s,95 ℃變性5 s,60.2 ℃退火20 s,60.0 ℃延伸20 s,40個循環(huán),4 ℃保存。每例樣品及陰性對照均設(shè)4個平行復(fù)孔,取均值。
1.7 缺血半暗帶腦皮質(zhì)內(nèi)PI3K蛋白表達測定 取缺血側(cè)頂葉大腦皮質(zhì)組織,按比加入RIPA裂解液裂解,低溫離心取上清,BCA法測定蛋白濃度,各樣本提取等量總蛋白(60 μL),經(jīng)100 ℃ 5 min變性后,分別配制分離膠和濃縮膠,80 V電壓電泳2.5 h,300 mA濕轉(zhuǎn)2 h,將凝膠中蛋白轉(zhuǎn)至PVDF膜上。5%脫脂奶粉室溫條件下封閉2 h,洗膜,之后加入一抗兔抗PI3K抗體(1∶1000),37 ℃恒溫箱孵育2 h,4 ℃過夜孵育;次日洗膜,加入二抗偶聯(lián)有辣根過氧化物羊抗兔IgG室溫條件下孵育2 h,洗膜,采用ECL化學(xué)發(fā)光法顯色,經(jīng)顯影、定影后可見特異性條帶。采用Image-J圖像分析軟件測定PI3K和內(nèi)參GAPDH各顯色條帶的平均吸光度(A)值,以PI3K與對應(yīng)的內(nèi)參GAPDH蛋白顯色條帶A的比值表示PI3K蛋白相對表達量。
2.1 各組大鼠腦梗死體積比較 經(jīng)TTC染色后顯示,腦缺血再灌注后IPOC組較MCAO組腦梗死體積明顯減小,P-L組能進一步縮小腦梗死體積,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。詳見表1。
組別梗死體積SO組 0.00±0.00MCAO組36.54±3.56IPOC組28.72±2.481)PL組22.21±2.052) 與MCAO組比較,1)P<0.05;與IPOC組比較,2)P<0.05。
2.2 各組大鼠PI3KmRNA表達比較 實時熒光定量PCR顯示,SO組PI3KmPNA表達量較少;與SO組比較MCAO組PI3KmPNA表達量明顯增高(P<0.01);與MCAO組比較,IPOC組表達量明顯升高(P<0.05);與IPOC組比較,P-L組PI3KmPNA表達量進一步升高(P<0.05)。詳見表2。
組別PI3KCT值GAPDHCT值ΔCT值SO組28.36±0.9821.04±0.637.03±0.79 MCAO組26.56±0.9021.34±0.855.94±0.861)IPOC組25.61±0.9621.99±0.864.83±0.682)PL組24.03±0.8421.76±0.693.39±0.753) 與SO組比較,1)P<0.01;與MCAO組比較,2)P<0.05;與IPOC組比較,3)P<0.05。
2.3 PI3K蛋白表達的變化 Western blot顯示,SO組PI3K蛋白表達較少,與SO組比較,MCAO組PI3K蛋白表達量明顯增高(0.903±0.061 vs 1.156±0.065,P<0.01);與MCAO組比較,IPOC組PI3K蛋白表達量明顯升高(1.381±0.083 vs 1.156±0.065,P<0.01);與IPOC組比較,P-L組的表達量進一步升高(1.449±0.176 vs 1.381±0.083,P<0.05)。詳見圖1。
圖1各組PI3K蛋白的表達
缺血后處理是指長時間缺血后,于再灌注前短時間內(nèi)進行反復(fù)短暫的再灌注和停灌注,這可對后續(xù)的長時間缺血損傷產(chǎn)生保護。有研究表明,IPOC主要是通過激活細胞內(nèi)的再灌注損傷救援激酶(reperfusion injury salvage kinase,RISK)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,并最終抑制再灌注初期線粒體通透性轉(zhuǎn)換孔的開放而使細胞獲得保護作用[5-6]。RISK是指對于器官的I/R損傷具有保護作用的一系列激酶,主要包括PI3K/Akt和細胞外信號調(diào)節(jié)激酶1/2(ERK1/2)2條通路。
PI3K/Akt是細胞內(nèi)重要的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,能抑制細胞的凋亡,從而起到保護腦組織的作用。PI3K下游有多種效應(yīng)分子,Akt處于這一通路的中心環(huán)節(jié),后處理激活的Akt通過磷酸化激活其下游靶點,最后在線粒體水平,發(fā)揮抑制凋亡或促進增殖等效應(yīng),從而起到保護腦組織作用[7-8]。本課題前期研究證實IPOC后和水蛭注射液干預(yù)后能增加磷酸化蛋白激酶B(p-Akt)的表達而發(fā)揮神經(jīng)保護作用[9]。因此提出假設(shè),水蛭注射液可能通過PI3K/Akt信號途徑發(fā)揮腦保護功效。
藥物后處理是指在長時間缺血后,于再灌注前或再灌注開始的幾分鐘內(nèi)用藥,通過藥物干預(yù)保護再灌注所導(dǎo)器官損傷[10]。與IPOC比較兩者作用機制相似,但藥物后處理更具臨床應(yīng)用價值,為治療器官再灌注損傷提供新策略。目前關(guān)于藥物后處理主要集中在心臟、腎臟等方面[11-12],在腦缺血方面研究甚少藥物方面主局限在吸入麻醉藥物,如異氟烷和七氟烷等,通常稱為“麻醉藥物后處理”[13]。Ye等[14]研究發(fā)現(xiàn)七氟烷通過激活PI3K/AKT信號通路,促進線粒體上的GSK-3β磷酸化,減少凋亡,保護缺血再灌注損傷大鼠神經(jīng)功能。
中藥后處理具有療效顯著、副作用小、作用靶點多、價格便宜受到關(guān)注。水蛭是活血化瘀的良藥,具有破血逐瘀消瘤,可用于癥瘕痞塊,血癖經(jīng)閉,跌打損傷等。而中風(fēng)主要病機為氣血逆亂、瘀血阻絡(luò),淤血貫穿中風(fēng)病的整個病理過程[15]。針對該病機,20世紀90年代我院在國內(nèi)率先研制出水蛭注射液,經(jīng)臨床及動物實驗證實其對腦缺血損傷療效確切[16-18]。但聯(lián)合水蛭注射液后處理尚未涉及神經(jīng)保護領(lǐng)域,是一個新的研究方向。
本研究發(fā)現(xiàn),再灌注24 h后,IPOC組較單純MCAO組的PI3KmRNA及其蛋白的表達較明顯升高,推測IPOC可能通過促進PI3K表達相關(guān)而縮小腦梗死體積而起到腦保護作用,這與文獻報道一致[1]。P-L組的PI3KmRNA及其蛋白進一步增加,提示水蛭注射液后處理與缺血后處理具有協(xié)同作用,為缺血性中風(fēng)的防治提供新思路和新方法,其作用機制值得進一步探討。
[1] 曹陽月,朱雨嵐.腦缺血后處理與P13K/Akt信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的研究進展[J].卒中與神經(jīng)疾病,2015,22(3):179-181.
[2] 李艷芳,費麗萍,劉云江.阿托伐他汀及尼可地爾后處理對兔缺血再灌注損傷心肌的保護作用[J].中國醫(yī)藥指南,2016,14(11):5-7.
[3] 梁健芬,李桂賢,黃選華.水蛭注射液對急性腦梗死患者血液流變學(xué)、SOD的影響及臨床療效觀察[J].廣西中醫(yī)藥,2000,23(1):1-3.
[4] Zhao H,Sapolsky RM,Steinberg GK.Interrupting reperfusion as a stroke therapy:ischemic postconditioning reduces infarct size after focal ischemia in rats[J].Cereb Blood Flow Metab,2006,26(9):1114-1121.
[5] Hausenloy DJ,Yellon DM.Preconditioning and postconditioning:united at reperfusion[J].Pharmacol Ther,2007,116(2):173-191.
[6] Hausenloy DJ,Yellon DM.Reperfusion injury salvage kinasc signalling:taking a risk for cardioprotection[J].Heart Fail Rev,2007,12(3-4):217-234.
[7] Duan Q,Madan ND,Wu J,et al.Role of phosphoinositide 3-kinase IA (PI3K-IA) activation in cardioprotection induced by ouabain preconditioning[J].Mol Cell Cardiol,2015,80(2):114-125.
[8] Zhou C,Tu J,Zhang Q,et al.Delayed ischemic postconditioning protects hippocampal CA1 neurons by preserving mitochondrial integrity via Akt/GSK3β signaling[J].Neurochem Int,2011,59(6):749-758.
[9] 胡躍強,唐農(nóng),吳林,等.聯(lián)合應(yīng)用水蛭注射液后處理對腦缺血損傷大鼠磷酸化蛋白激酶B表達的影響[J].中華老年心腦血管病雜志,2013,15(12):1321-1323.
[10] Tsang A,Hausenloy DJ,Mocanu MM,et al.Postconditioning:a form of “modified reperfusion” protects the myocardium by activating the phosphatidylinositol 3-kinase-Akt pathway [J].Circ Res,2004,95(3):230-232.
[11] 趙林靜,崔柳蘇,張金盈,等.脂聯(lián)素后處理對大鼠心肌缺血/再灌注損傷的影響及ADP/PI3K/Akt信號通路的作用[J].中國應(yīng)用生理學(xué)雜志,2017,33(4):308-313.
[12] 劉洋,劉修恒,王磊,等.芹黃素聯(lián)合缺血后處理對大鼠腎缺血再灌注損傷的影響[J].中國醫(yī)藥導(dǎo)報,2017,14(15):22-26.
[13] Liu HG,Hua Z,Zhang Y,et al.Effect of Sevoflurane postconditioning on gene expression in brain tissue of the middle cerebral artery occlusion rat model[J].Mol Biol Rep,2012,39(12):10505-10513.
[14] Ye Z,Xia P,Cheng ZG,et al.Neuroprotection induced by sevoflurane-delayed post- conditioning is attributable to increased phosphorylation of mitochondrial GSK-3β through the PI3K/Akt survival pathway[J].J Neurol Sci,2015,348(1-2):216-225.
[15] 胡龍濤,蔡芳妮,王亞麗.中風(fēng)病病因病機探析[J].中西醫(yī)結(jié)合心腦血管病雜志,2017,15(7):883-885.
[16] 董少龍,喬麗.水蛭注射液治療中風(fēng)先兆證188例[J].實用中醫(yī)內(nèi)科雜志,1998(2):29-30.
[17] 董少龍,刁麗梅,竇維華.水蛭注射液對大鼠腦缺血再灌注損傷的防治作用及其機制[J].廣西中醫(yī)藥,2004,27(1):47-50.
[18] 梁健芬,董少龍,胡躍強,等.水蛭注射液對大鼠腦缺血再灌注TNF-α、IL-1β和ICAM-1蛋白表達的影響[J].陜西中醫(yī)雜志,2006,35(12):1605-1607.