趙冠華,曲敏,胡斯杰,佟長青,李偉
(大連海洋大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,遼寧大連116023)
牡蠣是全球養(yǎng)殖規(guī)模最大的貝類,也是中國重要的經(jīng)濟養(yǎng)殖貝類之一。牡蠣資源豐富、口味宜人,并具有鎮(zhèn)靜安神、滋陰補陽、軟堅散結(jié)、收斂固澀等藥用價值功效,被稱為 “海底牛奶”[1]。多糖廣泛存在于動物、植物和微生物中,是構(gòu)成生命體的基本物質(zhì)。對多糖進行硫酸酯化能使其產(chǎn)生更多的生物活性[2]。硫酸酯化多糖具有抗氧化[3]、抗腫瘤[4]、抗病毒[5]等生物活性。因為多糖保肝的機理主要是清除自由基,防止自由基對肝細胞損傷,通常具有抗氧化活性的多糖均具有保肝作用[6]。Shi等[7]利用熱水浸提法提取的牡蠣多糖,對四氯化碳 (CCl4)致小鼠急性肝損傷和酒精致小鼠慢性肝損傷具有保護作用。侯麗等[8]利用水提醇沉法提取牡蠣多糖,對小鼠急性酒精肝損傷具有保護作用,作用機理可能是提高了肝組織的抗氧化能力。目前尚未見對硫酸酯化牡蠣多糖保肝作用的報道。本研究中,用實驗室前期制備得到的粗牡蠣多糖[7]除蛋白純化后,進行硫酸酯化修飾,制備硫酸酯化牡蠣多糖 (SCGP),研究了SCGP對CCl4致小鼠急性肝損傷的保護作用,以期為牡蠣的開發(fā)利用提供科學(xué)依據(jù)。
粗牡蠣多糖由本實驗室前期制備所得;氯磺酸、吡啶、N,N-二甲基酰胺 (DMF)、硫酸鉀、三氯乙酸、氯化鋇、分子量標(biāo)準(zhǔn)品 (Dextran T-10、 Dextran T-40、 Dextran T-70、 Dextran T-500、Dextran T-2000)均購自美國Sigma公司;SPF級昆明小鼠 (體質(zhì)量18~22 g)購自大連醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心 [SCXK(遼)2008-0002];聯(lián)苯雙脂滴丸 (批號160701)購自北京協(xié)和藥廠;谷丙轉(zhuǎn)氨酶、谷草轉(zhuǎn)氨酶、超氧化物歧化酶、丙二醛和考馬斯亮藍蛋白質(zhì)測定試劑盒購自南京建成生物工程公司;其他試劑均為分析純。
試驗用主要儀器有:L-2130型高效液相色譜儀(日本Hitachi公司);2000ES型蒸發(fā)光檢測器(美國 Alltech公司);MuLTiSJAN MK3酶標(biāo)儀、Microcl 17R離心機 (美國 Thermo公司);DMLLLED型倒置顯微鏡(德國Leica公司);UV-754紫外分光光度計(上海光譜儀器有限公司)。
1.2.1 粗牡蠣多糖的制備 參考Shi等[7]的方法。取去除內(nèi)臟的新鮮牡蠣肉,粉碎勻漿,勻漿液熱水浸提3次,過濾得上清液,上清液冷卻至室溫,用冰醋酸調(diào)節(jié)pH至5.1,等電點沉淀過夜,以8000 r/min離心10 min得上清液,上清液通過相對分子質(zhì)量截留量為10 000的中空纖維聚砜膜得截留液,噴霧干燥得到牡蠣多糖。
1.2.2 粗牡蠣多糖除蛋白質(zhì) 粗牡蠣多糖采用Sevag法[9]除蛋白質(zhì)。將噴霧干燥后的粗牡蠣多糖配制成10%濃度的水溶液,加入Sevag試劑 (正丁醇∶三氯甲烷=1∶5),牡蠣多糖溶液與Sevag試劑的體積比為4∶1,振蕩充分反應(yīng)30 min,靜置后用分液漏斗分液,保留上層清液,重復(fù)5次。在上層清液中加3倍體積乙醇沉淀過夜,以8000 r/min離心10 min,收集沉淀,真空冷凍干燥得純化牡蠣多糖。
1.2.3 多糖、蛋白質(zhì)含量測定 采用苯酚-硫酸法測定多糖含量[10],采用Follin-酚法測定蛋白質(zhì)含量[11]。
1.2.4 硫酸酯化牡蠣多糖的制備 采用氯磺酸-吡啶法制備硫酸酯化牡蠣多糖[12]。
酯化劑的制備:向三頸燒瓶中加入60 mL吡啶,在冰水浴中充分?jǐn)嚢韬螅?0 min內(nèi)逐滴加入10 mL氯磺酸,制得酯化試劑備用。
酯化試驗:在40 mL N,N-二甲基甲酰胺中溶解2.0 g前期純化的牡蠣多糖,充分?jǐn)嚢韬蠹尤氲窖b有酯化試劑的三頸燒瓶中,60℃下水浴,攪拌3 h。反應(yīng)結(jié)束后冷卻至室溫,加入質(zhì)量濃度為10%的氫氧化鈉溶液調(diào)至中性。之后加入3倍體積的乙醇 (體積分?jǐn)?shù)95%)過夜,以8000 r/min離心10 min得沉淀。將沉淀溶解于水中,透析3 d,真空冷凍干燥得到硫酸酯化修飾產(chǎn)物[13]。
1.2.5 硫酸根含量及相對分子量的測定
(1)硫酸根含量。采用明膠-比濁法測定SCGP硫酸基含量[14]。稱取樣品3 mg,加入1 mL濃度為1 mol/L的鹽酸,100℃下水解6 h,冷卻后揮發(fā)干燥,殘渣用1 mL蒸餾水溶解。用硫酸鉀溶液制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,以0.2 mL鹽酸溶液作為空白,分別加入三氯乙酸3.8 mL、氯化鋇-明膠溶液1.0 mL,室溫下靜置15 min,在360 nm波長下測定吸光值A(chǔ)1;以1.0 mL明膠溶液代替氯化鋇溶液,同法測定吸光值A(chǔ)2。以硫酸基毫克數(shù)為橫坐標(biāo),吸光值 (A1-A2)為縱坐標(biāo),制作硫酸根含量標(biāo)準(zhǔn)曲線。
取代值(DS)= 162×(S/98)/(100-96×S/98),其中,S為硫酸根含量占多糖百分比。
(2)相對分子質(zhì)量。使用液相色譜法測定相對分子質(zhì)量,采用TSK-Gel G5000PW XL色譜柱(TOSOH)(300 mm×7.8 mm), 流速為0.2 mL/min,用2000ES型蒸發(fā)光檢測器 (Alltec)檢測分析。相對分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)品采用Dextran T-10(10 000)、Dextran T-40(40 000)、 Dextran T-70(70 000)、Dextran T-500(500 000)和Dextran T-2000(2000 000),標(biāo)準(zhǔn)品用超純水配成1 mg/mL溶液,進樣量為20 μL,記錄保留時間,計算洗脫體積。以洗脫體積為橫坐標(biāo),分子量的對數(shù)為縱坐標(biāo),求線性回歸方程。樣品用超純水配制成1 mg/mL溶液,同條件下進行分析,記錄保留時間,算出洗脫體積,代入回歸方法計算相對分子質(zhì)量。
1.2.6 CCl4致小鼠急性肝損傷模型的建立 將72只SPF級昆明小鼠 (雌、雄各半)分為6組,分別為對照組、模型組、聯(lián)苯雙脂 (200 mg/kg)藥物組,以及硫酸酯化牡蠣多糖低濃度 (200 mg/kg)、中濃度 (400 mg/kg)、高濃度 (800 mg/kg)劑量組,各組每日灌胃1次,對照組和模型組給予同體積的生理鹽水,連續(xù)灌胃14 d,于末次給藥2 h后,對照組按0.2 mL/10 g腹腔注射植物油,模型組、藥物組、SCGP灌胃組均腹腔注射含0.2%CCl40.2 mL/10 g植物油溶液,禁食不禁水,18 h后摘眼球取血,離心 (3000 r/min,10 min),取上層血清,置于冰箱 (-20℃)中凍存?zhèn)溆?。處死小鼠后迅速取肝臟,用生理鹽水洗凈,用濾紙吸干血水,稱取肝左葉組織0.3 g,制成10%的勻漿液,離心 (4500 r/min,10 min),取上清液,4℃下保存?zhèn)溆?。稱取肝右葉組織0.3 g,用中性福爾馬林溶液進行固定,石蠟包埋切片。蘇木精-伊紅(H.E)染色,在倒置顯微鏡下觀察肝組織形態(tài)[15]。1.2.7 生化指標(biāo)檢測 按試劑盒說明書方法測定小鼠血清中谷丙轉(zhuǎn)氨酶 (ALT)和谷草轉(zhuǎn)氨酶(AST)活性,以及肝組織勻漿液中超氧化物歧化酶 (SOD)活性和丙二醛 (MDA)含量。
試驗數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差 (mean±S.D.)表示,采用SPSS 11.0軟件進行單因素方差分析,用Duncan法進行組間多重比較,顯著性水平設(shè)為0.05。
用苯酚-硫酸法測得粗牡蠣多糖含量為57.4%,用Follin-酚法測得粗牡蠣多糖中蛋白質(zhì)含量為28.7%。其中蛋白質(zhì)含量仍然較高,故采用Sevag法脫除蛋白質(zhì),經(jīng)Sevag法脫除蛋白質(zhì)后,測得多糖含量為97.8%,蛋白質(zhì)含量為1.8%,這表明蛋白質(zhì)脫除效果較好。
用明膠-比濁法測得SCGP的硫酸根含量為28.96%,取代值 (DS)為 0.66。如圖 1所示,SCGP純度良好、分子量組成均一。經(jīng)分子量標(biāo)準(zhǔn)品制作相對分子量標(biāo)準(zhǔn)曲線,方程為y=-0.2441 x+8.7011(R2=0.9973),代入標(biāo)準(zhǔn)回歸方程得到SCGP的相對分子質(zhì)量聚集度大于2 000 000,表明SCGP是大分子多聚糖。
圖1 SCGP的高效液相色譜分子量鑒定Fig.1 Molecular mass identification of SCGP by HPLC
SCGP對CCl4致小鼠急性肝損傷生化指標(biāo)結(jié)果如表1所示,模型組各項指標(biāo)均顯著區(qū)別于對照組(P<0.05),表明建模成功。模型組小鼠血清中ALT、AST活性顯著高于對照組 (P<0.05),肝組織中SOD活性顯著低于對照組 (P<0.05),肝組織中MDA含量顯著高于對照組 (P<0.05)。藥物組與模型組相比,所檢測指標(biāo)均有顯著性差異(P<0.05),說明聯(lián)苯雙脂滴丸具有治療效果。灌胃SCGP各劑量組的小鼠血清中ALT和AST活性,肝組織中MDA含量均顯著低于模型組 (P<0.05),SCGP高劑量組SOD活性與模型組相比顯著上升(P<0.05),說明低、中、高劑量組的SCGP均可顯著抑制由CCl4導(dǎo)致的小鼠血清ALT、AST活性的升高,并可以降低小鼠肝組織中MDA含量。灌胃SCGP高劑量組可顯著提高肝損傷小鼠肝組織中SOD活性,但低、中SCGP劑量組無顯著性差異。
肝組織切片顯示 (圖2),正常組小鼠肝細胞排列規(guī)則,模型組肝細胞出現(xiàn)空泡變性,細胞無規(guī)律性,并有炎癥、壞死現(xiàn)象,主要原因是CCl4致細胞膜和細胞器膜損壞,組織液外流。SCGP灌胃組和藥物組肝細胞病變較模型組明顯減少,這表明SCGP能明顯減輕CCl4對肝組織的急性損傷。
表1 SCGP對CCl4致肝損傷小鼠血清和肝組織中酶活性的影響 (平均值±標(biāo)準(zhǔn)差,n=10)Tab.1 Effects of SCGP on activities of serum and hepatic enzymes in mice with liver injury induced by CCl4(mean±S.D.,n=10)
CCl4經(jīng)肝臟細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)代謝,導(dǎo)致自由基增加,影響生物結(jié)構(gòu)或通過氧激活產(chǎn)生的三線態(tài)氧,對肝臟產(chǎn)生損傷作用。CCl4致小鼠急性肝損傷模型的建立主要用來篩選和評價保肝藥物[16-17]。多糖護肝原理主要是其能有效清除自由基,減少CCl4在肝組織中產(chǎn)生的自由基,防止肝組織病變,達到對肝組織的保護目的,此類多糖有山藥硒多糖[18]、蟲茶多糖[19]、藥桑多糖[20]、金線蓮多糖[21]等;其次,多糖能改善肝損傷小鼠的生化指標(biāo),降低小鼠ALT、AST和MDA含量,提高SOD活性,達到減輕肝損傷的作用,原因可能是多糖提高了肝臟線粒體呼吸復(fù)合酶活性,并通過清除自由基來減少過氧化程度,恢復(fù)正常功能[22];三是,多糖能促進免疫細胞DNA合成,使脾細胞和T細胞大量增殖,提高機體免疫能力[23],如西洋參多糖能顯著促進機體免疫細胞增殖,增強機體免疫能力[24]。
小鼠肝損傷時,體內(nèi)會產(chǎn)生大量ALT、AST,并進入血液中,導(dǎo)致兩種轉(zhuǎn)氨酶在小鼠血清中大量升高,只要有1%的肝細胞損傷,就能使血清酶活性升高一倍,故這兩種酶是檢測肝細胞受損的靈敏指標(biāo)[25]。CCl4損傷小鼠肝細胞是其在體內(nèi)產(chǎn)生大量自由基,干擾蛋白質(zhì)合成,影響生物體的結(jié)構(gòu)和功能[6]。SOD是保護細胞內(nèi)抗氧化酶的主要成分,其可以保護細胞免受自由基損害,同時SOD也是衡量機體抗氧化能力的指標(biāo)[26]。MDA是細胞過氧化作用最終產(chǎn)生的小分子代謝產(chǎn)物,其含量可以間接表明機體組織的過氧化程度,反映肝臟細胞損傷情況[27]。本研究表明,較高濃度的SCGP對CCl4導(dǎo)致的小鼠急性肝損傷具有明顯的減輕作用。
圖2 各組小鼠肝組織切片對比 (H.E,×100)Fig.2 Histopathological comparison of liver in mice invarious groups(H.E,×100)
同時,根據(jù)SCGP肝損傷生化指標(biāo)結(jié)果,對比之前Shi等[7]等研究的牡蠣多糖對CCl4致小鼠急性肝損傷的保肝試驗結(jié)果,發(fā)現(xiàn)經(jīng)硫酸酯化的牡蠣多糖的保肝能力得到了提升。經(jīng)過SCGP灌胃的小鼠ALT、MDA指標(biāo)可分別降低31%~74%和24%~59%,而灌胃牡蠣多糖兩指標(biāo)只能降低12%~17%和6%~11%[7],并且灌胃SCGP后AST和SOD指標(biāo)均能恢復(fù)至接近正常水平,表明經(jīng)過硫酸酯化后牡蠣多糖的保肝能力確實得到了提升。
本研究中用牡蠣多糖通過硫酸酯化制備得到SCGP,并用其對由CCl4致急性肝損傷小鼠進行了灌胃試驗,研究了SCGP對CCl4導(dǎo)致小鼠急性肝損傷的保護作用。結(jié)果表明,SCGP低、中、高劑量組可顯著降低血清中 ALT、AST活性 (P<0.05),明顯降低肝組織中MDA含量 (P<0.05),SCGP高劑量組可顯著提高肝組織中SOD活性(P<0.05)。肝組織切片觀察,SCGP組能減輕肝細胞損傷狀況。本研究表明,SCGP能有效保護受損的肝組織,減輕CCl4對小鼠肝組織的急性損傷。
[1] 徐靜.牡蠣提取物的降血糖活性研究[D].濟南:山東大學(xué),2005.
[2] Wang Li,Li Xiaoxuan,Chen Zhengxing.Sulfated modification of the polysaccharides obtained from defatted rice bran and their antitumor activities[J].International Journal of Biological Macromolecules,2009,44(2):211-214.
[3] Wang Junlong,Niu Shengfan,Zhao Baotang,et al.Catalytic synthesis of sulfated polysaccharides.Ⅱ:comparative studies of solution conformation and antioxidant activities[J].Carbohydrate Polymers,2014,107(17):221-231.
[4] Ji Chenfeng,Ji Yubin,Meng Deyou.Sulfated modification and antitumor activity of laminarin[J].Experimental and Therapeutic Medicine,2013,6(5):1259-1264.
[5] Ghosh T,Chattopadhyay K,Marschall M,et al.Focus on antivirally active sulfated polysaccharides:from structure-activity analysis to clinical evaluation[J].Glycobiology,2009,19(1):2-15.
[6] 曲敏,田麗冉,佟長青,等.大鯢低聚糖肽對四氯化碳致小鼠急性肝損傷的保護作用[J].食品工業(yè)科技,2013,34(14):350-352,369.
[7] Shi Xuan, Ma Huihui, Tong Changqing, et al.Hepatoprotectiveeffect of a polysaccharide from Crassostrea gigas on acute and chronic models of liver injury[J].International Journal of Biological Macromolecules,2015,78:142-148.
[8] 侯麗,汪秋寬,何云海,等.牡蠣多糖提取及其對小鼠急性酒精肝損傷的保護作用[J].食品工業(yè)科技,2014,35(22):356-358,370.
[9] Staub A M.Removal of proteins:sevag method[M]//Whistler R L.Methods in Carbohydrate Chemistry.New York, USA:Academic Press, Inc,1965:5-6.
[10] DuBois M,Gilles K A,Hamilton J K,et al.Colorimetric method for determination of sugars and related substances[J].Anal Chem,1956,28(3):350-356.
[11] 張龍翔,張庭芳,李令媛.生化實驗方法和技術(shù)[M].2版.北京:高等教育出版社,1997.
[12] Strydom D J.Chromatographic separation of 1-phenyl-3-methyl-5-pyrazolone-derivatized neutral,acidic and basic aldoses[J].Journal of Chromatography A,1994,678(1):17-23.
[13] 趙冠華,佟長青,李偉,等.硫酸酯化牡蠣多糖對3種腫瘤細胞抑制及凋亡的影響[J].食品工業(yè)科技,2017,38(13):302-306.
[14] Yang Jingfeng,Zhu Beiwei,Zheng Jie,et al.Stimulation of lymphocyte proliferation by oyster glycogen sulfated at C-6 position[J].Carbohydrate Polymers,2013,94(1):301-308.
[15] 郭國麗,陳悅,佟長青,等.水溶性黑木耳根多糖對四氯化碳所致小鼠肝損傷的保護作用[J].食品工業(yè)科技,2015,36(24):341-344.
[16] Kuriakose G C,Kurup M G.Antioxidant and antihepatotoxic effect of Spirulina laxissima against carbon tetrachloride induced hepatotoxicity in rats[J].Food & Function,2011,2(3-4):190-196.
[17] Tomasi A,Albano E,Banni S,et al.Free-radical metabolism of carbon tetrachloride in rat liver mitochondria.A study of the mechanism of activation[J].Biochemical Journal,1987,246(2):313-317.
[18] 滕楊,谷娜,羅時旋,等.山藥硒多糖對CCl4誘導(dǎo)小鼠急性肝損傷的保護作用[J].食品工業(yè)科技,2015,36(15):362-364.
[19] 王睿,孫鵬,趙欣.蟲茶粗多糖對四氯化碳誘導(dǎo)小鼠肝損傷預(yù)防效果研究[J].現(xiàn)代食品科技,2015,31(5):6-11.
[20] 夏娜,陳義磊,陶海燕,等.藥桑多糖對四氯化碳所致大鼠肝損傷的保護作用[J].食品科學(xué),2015,36(13):247-251.
[21] Zeng Biyu,Su Minghua,Chen Qingxi,et al.Protective effect of a polysaccharide from Anoectochilus roxburghii against carbon tetrachloride-induced acute liver injury in mice[J].Journal of Ethnopharmacology,2017,200:124-135.
[22] 耿廣琴,楊志軍,楊秀娟,等.黃芩水煎液對CCl4肝損傷小鼠肝線粒體的影響[J].中國中醫(yī)藥科技,2015,22(6):641-643.
[23] 高峰,趙龍鳳.干擾素聯(lián)合薄芝糖肽治療慢性乙型肝炎30例觀察[J].醫(yī)學(xué)信息,2011,24(1):214.
[24] 楊修仕,周閑容,王麗君 ,等.西洋參多糖的超濾分離及其免疫增強活性研究[J].食品工業(yè)科技,2014,35(5):49-52,57.
[25] Comporti M.Lipid peroxidation and cellular damage in toxic liver injury[J].Lab Invest,1985,53(6):599-623.
[26] 王吉橋,樊瑩瑩,徐振祥,等.飼料中β-胡蘿卜素和蝦青素添加量對仿刺參幼參生長及抗氧化能力的影響[J].大連海洋大學(xué)學(xué)報,2012,27(3):215-220.
[27] 欒學(xué)斌,王荻,劉紅柏.恩諾沙星誘導(dǎo)施氏鱘藥物性肝損傷模型的建立及復(fù)方中草藥保肝作用研究[J].大連海洋大學(xué)學(xué)報,2017,32(1):13-19.