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        果膠提取工藝對甜菜粕物化性質(zhì)的修飾作用研究

        2018-03-01 02:36:49劉戰(zhàn)朋郭曉明皮芳于淑娟
        現(xiàn)代食品科技 2018年1期
        關(guān)鍵詞:醛酸半乳糖甜菜

        劉戰(zhàn)朋,郭曉明,2,皮芳,于淑娟,2,3

        (1.華南理工大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,廣東廣州 510640)(2.華南理工大學(xué)廣東省天然產(chǎn)物綠色加工與產(chǎn)品安全實驗室,廣東廣州 510640)(3.華南理工大學(xué)制漿造紙工程國家重點實驗室,廣東廣州 510640)

        甜菜粕含有果膠、半纖維素、纖維素等物質(zhì)[1],是一種潛在價值巨大的加工原料。我國是世界第八大甜菜主產(chǎn)國,甜菜粕資源豐富(590萬噸/年,2012~2013)[1]。長期以來,甜菜粕的加工與開發(fā)受到了廣泛關(guān)注。針對甜菜粕中的有效成分,國內(nèi)外學(xué)者開發(fā)出甜菜果膠、半纖維素、納米纖維和甜菜堿等多種產(chǎn)品[2~4]。盡管上述多種技術(shù)方案利用了甜菜粕中的有效成分,但僅能消化部分甜菜粕,無法徹底解決二次廢粕的堆積問題。

        甜菜粕的全資源化技術(shù)已成為甜菜粕加工的研究熱點。物料的組織結(jié)構(gòu)及物化性質(zhì)是影響甜菜廢粕再利用的關(guān)鍵因素。甜菜粕富含水溶性碳水化合物,具有很強的吸水性[5]。在有效成分萃取過程中,部分細胞壁結(jié)構(gòu)物質(zhì)溶解于提取液中,從而形成粘稠的漿液,降低了傳質(zhì)的效率[6]。另一方面,甜菜粕吸水后體積膨脹,更增加了分離、干燥等單元操作的作業(yè)難度。

        當(dāng)前,甜菜果膠是甜菜粕深加工的熱點[7,8],其副產(chǎn)物的綜合利用也因而備受關(guān)注。甜菜果膠以螯合劑、稀酸、稀堿為提取溶劑[9],在不同溶劑的作用下,最終形成結(jié)構(gòu)各異的二次廢粕[10]。然而,關(guān)于果膠提取工藝如何修飾甜菜粕的物化性質(zhì),卻鮮有報道。

        基于此,本文以甜菜粕為研究對象,研究螯合劑、稀酸對甜菜粕的修飾作用,旨在揭示甜菜粕結(jié)構(gòu)、形貌在果膠提取過程中的變化規(guī)律,并為甜菜廢粕再利用提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 實驗材料及試劑

        甜菜粕;95%乙醇、鹽酸、濃硫酸、草酸銨、三氟乙酸、氫氧化鈉、碳酸鈉、碳酸氫鈉、磷酸為分析純;鼠李糖、半乳糖、木糖、果糖,均為分析純,上海伯奧生物科技有限公司;阿拉伯糖≥98%,美國Sigma-Aldrich Chemical公司;RapidaseC80果膠酶,荷蘭DSM公司產(chǎn)品;牛血清蛋白,上海伯奧生物科技有限公司;考馬斯亮藍G250,上海伯奧生物科技有限公司;三苯基苯酚顯色劑,上海梯希愛化成工業(yè)發(fā)展有限公司。

        1.2 實驗儀器與設(shè)備

        多功能光電子能譜儀,Kratos Axis Ulra DLD,英國Kratos公司;X射線多晶衍射儀,德國Bruker公司;傅里葉變換紅外光譜儀,VERTEX70,德國Bruker公司;ICS-5000陰離子交換色譜系統(tǒng),配備電化學(xué)檢測器(ED50),美國Dionex公司;高效液相色譜,美國沃特世公司;GR22高速冷凍離心機,株式會社日立制作所;數(shù)顯pH計,F(xiàn)E20,瑞士Mettler-toledo公司生產(chǎn);BSA1245-CW分析天平,德國賽多利斯集團生產(chǎn);冷凍干燥機,SeienTZ-18N,寧波斯芝生物科技股份有限公司;高速萬能粉碎機,F(xiàn)W100,天津市泰斯特儀器有限公司;紫外可見分光光度計,TU1901,北京普析通用儀器有限責(zé)任公司。

        1.3 實驗方法

        1.3.1 連續(xù)提取方法

        圖1 實驗流程圖Fig.1 The principal flow chart of experiment

        參考Yapo等人[11]的方法,依次采用螯合劑、稀酸溶液處理甜菜粕(如圖1所示)。首先,將甜菜粕浸泡在0.5%的草酸銨溶液中,浸泡參數(shù)為:料液比1:25、溫度80 ℃、浸泡時間1 h、攪拌速度250 r/min;浸泡結(jié)束后,用400目微孔濾布將液渣分離,殘渣標(biāo)記為粕-CSA1,而上清液則依次經(jīng)離心(10000 g×15 min)、醇析、干燥(45 ℃,12 h)處理,所得果膠標(biāo)記為CSA-1;重復(fù)用草酸銨溶液浸提一遍,分別得果膠CSA-2和粕-CSA2。由于粕-CSA2殘留部分草酸銨,故用蒸餾水將粕-CSA2沖洗5遍;隨后,將粕-CSA2分散在蒸餾水中,用H2SO4調(diào)節(jié)pH到1.5,80 ℃處理1 h,得到果膠LS-1和粕-LS1;采用相同工藝參數(shù),重復(fù)用稀硫酸溶液浸提3次,分別得到果膠LS-2和粕-LS2、果膠LS-3和粕-LS3、果膠LS-4和粕-LS4。

        1.3.2 果膠成分測定及其甜菜粕形貌表征

        1.3.2.1 半乳糖醛酸(GalA)的測定

        采用紫外可見分光光度計法[12]測定半乳糖醛酸的含量。

        半乳糖醛酸標(biāo)準曲線:稱取半乳糖醛酸標(biāo)品5 mg溶于去離子水,定容至100 mL,分別取40、120、240、360、400 μL標(biāo)品到10 mL帶塞消化管中,冰水浴條件下加入2.5 mL濃硫酸,混合均勻后置于沸水浴中5 min使其多糖完全水解。隨后加入50 μL顯色劑,空白樣加入50 μL 0.5% NaOH溶液,混合均勻后,靜置一段時間,以兩個空白樣品校零,520 nm波長下測定吸光度。

        繪制標(biāo)準曲線:y=0.0289x+0.0231

        式中:y為吸光度;x為D-半乳糖醛酸的含量(μg),R2=0.9995。

        果膠樣品中GalA的測定:稱取5 mg果膠樣品,溶解并定容至100 mL。取400 μL樣品于10 mL具塞試管中,其余步驟同上,每個樣品做三次平行。

        1.3.2.2 中性糖含量測定

        參照Garna[13]等人的方法:用高效陰離子交換色譜分析。稱取10 mg果膠樣品于密封消化管中,加入2 mL果膠酶溶液(E.C.3.2.1.15.,日本Amano公司),置于45 ℃水浴中24 h。再加入2 mL、4 mol/L的三氟乙酸(TFA),120 ℃油浴酸解2 h,立即冷卻后加7 mol/L氨水調(diào)節(jié)pH至9.0左右,用去離子水定容至100 mL。水水解液過0.22 μm濾膜后,注射入高效陰離子交換色譜(HPAEC)系統(tǒng)(ICS-5000,Dionex Corp,USA)。色譜條件:色譜柱:CarboPac PA1(4×250 mm)和CarboPac PA1保護柱(4×50 mm);檢測器:電化學(xué)檢測器(ED50);流動相:100 mmol/L NaOH;流速:1 mL/min;柱溫:30 ℃;進樣量:25 μL;淋洗條件:0~25 min,16 mmol/L NaOH,25~35 min,500 mmol/L NaOH。數(shù)據(jù)經(jīng)Chromeleon 7.2軟件采集、分析后,繪制色譜曲線。

        1.3.2.3 FT-IR圖譜分析

        凍干后的甜菜粕粉碎后過100目篩,取適量粉末樣品(4 mg)與溴化鉀(200 mg)壓片,采用Vector33測定其紅外吸收圖譜,掃描波數(shù)為4000~400 cm-1,分辨率為4 cm-1。

        1.3.2.4 X射線衍射圖譜分析

        取凍干后的甜菜粕樣品,以未處理甜菜粕為對照,粉碎后過100目篩,用X射線多晶衍射儀掃描0 °~70 °角度范圍的X射線吸收強度。測定甜菜粕內(nèi)部結(jié)晶度的變化。

        相對結(jié)晶度分析參考Nishiyama[14]等的方法,計算公式如下:

        上式中,I22°為2θ角為22 °處的衍射強度;I18°為2θ角為18 °處的衍射強度。

        1.3.2.5 掃面電鏡(EDS-SEM)分析

        取六種處理方式的甜菜粕,以未處理甜菜粕為對照,將樣品用導(dǎo)電雙面膠固定在載物臺上。樣品鍍金后,在20 kV加速電壓下觀察其表面形貌。

        1.3.2.6 密度指數(shù)測定

        甜菜粕樣品粉碎、過100目篩后,取適量樣品裝入1 mL的離心管,填充至刻度,稱重。每個樣測5次平行,取平均值。

        上式中,m1為樣品與離心管的質(zhì)量,g;m0表示離心管的重量,g;V代表樣品填充的體積,mL。

        1.3.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

        除非另行注明,提取或樣品測試平行操作3次,所有數(shù)據(jù)表示為“平均值±平均偏差”;數(shù)據(jù)采用origin 9.1作圖。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 不同處理方式對甜菜粕FT-IR圖譜的影響

        圖2 不同處理紅外吸收光譜的影響Fig.2 Influence of different treatments on the FTIR spectra

        如圖2所示,甜菜粕能吸收3800~2500 cm-1、1800~400 cm-1內(nèi)的紅外光,這些光譜信號屬于植物多糖的典型紅外光譜特征。甜菜粕在3422、2930、1746、1637 cm-1處的吸收峰分別對應(yīng)于OH-、C-H、C-O及COO-的伸縮振動[15,16]。盡管甜菜果膠與甜菜粕具的紅外光譜極為相似,但甜菜果膠在2930 cm-1的吸收強度相對較弱。甜菜粕在溶劑的處理下,結(jié)構(gòu)發(fā)生不同的變化。依次經(jīng)2次草酸銨處理、1次硫酸處理后,C-H伸縮振動強度未發(fā)生顯著的變化(圖2a)。然而,當(dāng)硫酸提取2次后,甜菜粕在2930 cm-1處的吸收峰強度顯著增強(圖2a)。由于甜菜果膠在2930 cm-1的吸收強度很低,故甜菜粕中果膠的含量的減少反而有助于增強C-H在2930 cm-1處的振動強度。FT-IR分析結(jié)果表明,甜菜果膠的減少可能是引起甜菜粕2930 cm-1處吸收峰增強的原因。

        2.2 甜菜粕的XRD衍射圖譜及相對結(jié)晶度

        圖3 不同處理方式甜菜粕XRD衍射圖譜及相對結(jié)晶度Fig.3 Effects of different treatments on the X-ray diffraction spectra of sugar beet pulp and their relative crystallinity

        纖維素是一類具有晶體結(jié)構(gòu)的多糖,而半纖維素、果膠則為不定形結(jié)構(gòu)。甜菜粕由纖維素、半纖維素、果膠組成,纖維素的相對含量將決定甜菜粕X射線圖譜的特性。如圖3a所示,在衍射角7.5~27.5 °內(nèi),甜菜粕(對照)在16 °、22 °處具有2個衍射峰;22 °處的衍射峰較強,該衍射峰也是纖維素I的衍射特征[13]。圖3a~b中的X衍射圖譜與Li等人[3]報道的結(jié)果一致。依次經(jīng)草酸銨提取2遍、硫酸提取1遍后,不僅X衍射圖譜未發(fā)生顯著變化,甜菜粕的結(jié)晶度也基本保持不變(圖3c)。然而,隨著硫酸提取次數(shù)的增加,甜菜粕在衍射角為12.5~25 °內(nèi)的吸收強度逐漸升高(圖3b),進而導(dǎo)致相對結(jié)晶度也逐漸增大(圖3c)。對照樣品的相對結(jié)晶度為22.5%,而粕-LS4的相對結(jié)晶度升至44.5%,相對于對照樣增加了將近1倍。

        XRD衍射圖譜的變化間接表明,隨著酸提取次數(shù)的增加,甜菜粕中纖維素的相對含量逐漸升高。甜菜粕中纖維素得到富集的原因主要有兩方面:(1)甜菜粕果膠分次溶解于稀酸溶液中;(2)在熱酸作用下,部分半纖維素也可能溶解于提取溶劑中。

        2.3 不同處理方式對甜菜粕形貌的影響

        圖4 不同處理方式甜菜粕掃面電鏡圖Fig.4 Morphologies of sugar beet pulp with different treatments

        如圖4所示,提取溶劑對甜菜粕的結(jié)構(gòu)、形貌具有顯著的影響。初始甜菜粕(圖4a)具有致密的結(jié)構(gòu),表面為不規(guī)則的粗糙褶皺。甜菜粕具有一定的持水性[5],其吸水后體積發(fā)生溶脹。為了防止熱風(fēng)干燥對甜菜粕形貌及結(jié)構(gòu)的影響,本文將吸水后的甜菜粕進行冷凍干燥,再觀察甜菜粕吸水后的質(zhì)地及形貌特征。如所示圖4b,凍干甜菜粕導(dǎo)致密度下降,表面轉(zhuǎn)變?yōu)楦叩筒黄健⑹杷?、不?guī)則的形貌。經(jīng)草酸銨溶液浸泡1遍后,甜菜粕質(zhì)地更加疏松,其表面具有類似于“中空”的結(jié)構(gòu)(圖4c)。這些孔洞可能是水分升華后形成的“通道”,其為提取溶劑滲透到甜菜粕內(nèi)部創(chuàng)造了有利條件。從圖4b與4c可以看出,草酸銨對甜菜粕質(zhì)地產(chǎn)生實質(zhì)的影響。草酸銨第2次提取后,甜菜粕表明的孔洞變大(圖4d)。再經(jīng)硫酸浸泡1次數(shù)后,與原先的甜菜粕相比(圖4d),甜菜粕表面的孔洞變淺,同時也更趨向于橢圓形(圖4e);這種形貌變化可能與甜菜粕表面的果膠被溶解有關(guān)。隨著硫酸浸泡的次數(shù)的增加,甜菜粕形貌未發(fā)生更顯著的變化。

        2.4 不同處理方式甜菜粕能譜分析

        圖5 不同提取溶劑對甜菜粕能譜圖的影響Fig.5 Effects of different extractants on the energy dispersive Spectra of sugar beet pulp

        不同甜菜粕的能譜圖如圖5所示。本小節(jié)重點分析提取溶劑對甜菜粕Ca2+含量的影響。初始甜菜粕的Ca2+含量為1.28%。如圖5中的Ca2+分布圖所示,Ca2+在甜菜粕中具有隨機分布的特點,沒有表現(xiàn)出特定的規(guī)律。經(jīng)草酸銨提取2遍后,Ca2+含量下降為0.81%,表明草酸銨能螯合甜菜粕中的部分Ca2+。Ca2+是細胞壁的結(jié)構(gòu)物質(zhì)之一,其含量下降也表明甜菜粕細胞壁遭受到一定程度的破壞。再經(jīng)硫酸提取1遍后,甜菜粕中未能檢出Ca2+,表明稀酸溶液對Ca2+具有很強的溶解能力。雖然Ca2+已經(jīng)去除,但甜菜粕中仍殘留部分果膠(表1),這表明部分甜菜果膠與Ca2+不存在相互作用。

        2.5 密度指數(shù)

        圖6 不同甜菜粕的密度指數(shù)Fig.6 Density indexes of different sugar beet pulps

        不同提取溶劑、提取次數(shù)對甜菜粕的密度指數(shù)具有顯著的影響(圖6)。在本文中,密度指數(shù)與甜菜粕的持水力成正比;甜菜粕的吸水性越強,質(zhì)地越疏松,密度也相應(yīng)越小。初始甜菜粕的密度指數(shù)最大,這與SEM分析結(jié)果一致(圖4a)。經(jīng)草酸銨處理后,甜菜粕密度指數(shù)開始下降,下降的幅度與草酸銨浸泡次數(shù)成正比。隨后,再經(jīng)硫酸提取1遍后,甜菜粕的密度指數(shù)降至最低(0.173 g/mL)。該結(jié)果表明,經(jīng)硫酸1次浸泡后,甜菜粕的體積充分溶脹。然而,經(jīng)硫酸提取次數(shù)2遍后,甜菜粕密度指數(shù)開始升高至0.286 g/mL。進一步增加硫酸提取次數(shù)至4時,甜菜粕的密度指數(shù)略微上升(0.299 g/mL)。纖維素不僅能形成致密的結(jié)晶結(jié)構(gòu),其分子量也較果膠、半纖維素大。因此,在硫酸分步提取過程中,甜菜粕密度指數(shù)的升高主要是纖維素比重的升高所致。

        2.6 六種果膠成分分析

        如表1所示,因提取條件而異,甜菜果膠的得率介于0.6~4.7%之間。CSA-1、CSA-2的提取率分別為2.0、0.6%,兩者占總果膠得率的16.6%。張海燕等[1]研究甜菜果膠的螯合劑法提取工藝,發(fā)現(xiàn)甜菜果膠的提取率為9.5~20.9%。但在本文中,CSA-1、CSA-2的得率之和僅為2.6%,這種差異可能與螯合劑的種類有關(guān)。酸溶性甜菜果膠占總果膠得率的83.4%,隨著硫酸提取次數(shù)的增加,果膠得率從4.7%逐漸下降為2.4%。

        盡管提取溶劑、提取次數(shù)不同,但所有甜菜果膠均富含半乳糖醛酸、中性單糖(表1)。以草酸銨為提取試劑時,甜菜果膠半乳糖醛酸、中性糖分別為75.2~78.5%、21.5~24.5%。CSA-1與CSA-2的中性糖組成相似,兩者的阿拉伯糖(10.8~10.9%)、鼠李糖(1.8~2.0%)、木糖(0.8~1.1%)含量接近,但CSA-1的半乳糖(8.0%)及葡萄糖(3.2%)含量較高。與溶解于草酸銨的甜菜果膠相比,酸溶性甜菜果膠的半乳糖醛酸含量較低,而中性糖含量性對較高。以硫酸為提取溶劑時,不同成分隨提取次數(shù)表現(xiàn)出不同變化趨勢。隨著提取次數(shù)的增加,鼠李糖(4.4~7.8%)、半乳糖(11~14.4%)、木糖(0.9~1.6%)總體呈上升趨勢,而阿拉伯糖(13.1~5.4%)卻逐漸下降。由于阿拉伯糖單元間的糖苷鍵在酸性條件下容易水解[17],故阿拉伯糖的下降可能與長時間熱酸處理有關(guān)。另一方面,半乳糖醛酸、葡萄糖含量與提取次數(shù)間沒有顯著的相關(guān)性,其含量分別為69.7~71%、0.3~1.0%。

        研究證實,草酸銨、稀酸溶液對甜菜果膠的品質(zhì)具有顯著的影響[18]。為了解釋草酸銨與稀酸處理對甜菜果膠的影響,本文還分析了不同甜菜果膠中半乳糖醛酸與鼠李糖的摩爾比(表1)。半乳糖醛酸與鼠李糖的摩爾比越低,表明甜菜果膠側(cè)鏈相對含量越高;反之亦然[19]。如表1所示,對于草酸銨提取的果膠而言,其半乳糖醛酸/鼠李糖摩爾比為38.4~43.3,顯著高于稀酸提取的果膠(9.0~15.9)。可見,稀酸更有利于溶解富含側(cè)鏈的甜菜果膠。

        另一方面,隨著稀酸提取次數(shù)的增加,半乳糖醛酸/鼠李糖摩爾比逐漸下降;從而間接表明“甜菜果膠側(cè)鏈越豐富,其對稀酸的耐受能力越高”。這可能是由于部分甜菜果膠(富含側(cè)鏈)與纖維素等細胞壁結(jié)構(gòu)物質(zhì)間存在強作用關(guān)系,需要稀酸反復(fù)浸泡才足以將這部分甜菜果膠從甜菜粕中釋放出來。

        表1 不同甜菜果膠的得率及化學(xué)組成Table 1 Extraction yields and chemical compositions of different sugar beet pectins

        3 結(jié)論

        本文研究草酸銨、稀硫酸對甜菜粕結(jié)構(gòu)的修飾作用。草酸銨能螯合甜菜粕中的部分Ca2+,并釋放部分甜菜果膠,導(dǎo)致甜菜粕形成疏松多孔狀的表面,但并未改變甜菜粕的相對結(jié)晶度。硫酸對Ca2+及甜菜果膠具有更強的溶解能力,隨著硫酸浸泡次數(shù)的增加,甜菜粕的密度指數(shù)先下降后升高,而相對結(jié)晶度則逐漸升高。以上研究結(jié)果表明,草酸銨對甜菜粕的修飾作用有限,而稀酸處理能使甜菜粕發(fā)生實質(zhì)性的結(jié)構(gòu)變化。甜菜果膠產(chǎn)生的二次廢粕富含纖維素,其可作為一種潛在的纖維素基材料。

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