亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        川西高寒土壤酶的動力學(xué)及熱力學(xué)特征研究①

        2018-01-17 06:50:50沈丹杰陳玥希
        土壤 2017年6期
        關(guān)鍵詞:土壤溶液微孔底物

        沈丹杰,陳玥希,孫 輝,姚 建

        (四川大學(xué)建筑與環(huán)境學(xué)院,成都 610065)

        土壤酶作為土壤物質(zhì)的生物地化循環(huán)過程最為重要的參與者,不僅參與土壤物質(zhì)轉(zhuǎn)化與礦化等生態(tài)與生物化學(xué)過程,同時也對土壤中的外源物質(zhì)轉(zhuǎn)化及維持土壤正常生態(tài)功能具有重要作用。因此,土壤酶在土壤生物地化循環(huán)、土壤生態(tài)和土壤環(huán)境方面具有至關(guān)重要的地位[1]。酶按照功能可分為氧化還原酶類、轉(zhuǎn)移酶類、水解酶類、裂合酶類、異構(gòu)酶類和連接酶類等6類,主要作為胞外酶形式存在的土壤酶主要涉及前4類[2]。土壤酶中,磷酸酯酶參與土壤中磷酸酯類物質(zhì)水解酶促反應(yīng),與有機磷酸酯類的礦化與轉(zhuǎn)化密切相關(guān),與土壤有效磷顯著相關(guān);纖維二糖水解酶和 β-葡萄糖苷酶屬于纖維素酶系,纖維二糖水解酶作用于纖維素線狀分子非還原末端的β-1,4糖苷鍵,形成纖維二糖,β-葡萄糖苷酶水解纖維二糖生成葡萄糖,這兩種酶對土壤有機碳的轉(zhuǎn)換過程至關(guān)重要,特別是土壤有機質(zhì)中最重要的碳水化合物纖維素的水解過程;β-N-乙酰氨基葡萄糖酶參與幾丁質(zhì)轉(zhuǎn)化氨基糖的過程,與土壤中有機氮相關(guān)組分轉(zhuǎn)化與礦化密切相關(guān)[3-8]。

        土壤酶傳統(tǒng)的定量分析方法費時費力,重現(xiàn)性較差,以熒光物質(zhì)標(biāo)記底物的微孔板熒光法測定土壤酶活性的方法近年來逐漸發(fā)展起來[9-10],被越來越多的土壤酶相關(guān)研究工作所采用[11-12]。微孔板熒光法的優(yōu)點在于可同時對多樣本的酶活性進行快速分析,獲得足夠的重復(fù)測量數(shù)據(jù),測定時間短而且實驗條件相對穩(wěn)定一致,可有效減小系統(tǒng)誤差[13]。本文對微孔板熒光法測定酶活性的條件進行了一些改進,在此基礎(chǔ)上測定了高山樹線土壤幾種酶的動力學(xué)與熱力學(xué)特征。高山樹線交錯帶被認(rèn)為是對環(huán)境變化敏感的高寒生態(tài)系統(tǒng)之一,研究這些酶動力學(xué)與熱力學(xué)特征,對揭示全球變暖背景下高寒土壤生化過程及變化具有重要意義。

        1 材料與方法

        試驗采用微孔板熒光法測定土壤磷酸單酯酶(Phosphomonoesterase,EC3.1.3.2,PME)、β-葡萄糖苷酶(β-glucosidase,EC 3.2.1.21,BG)、β-N-乙酰氨基葡萄糖酶(β-N-Acetyl-glucosaminidase,EC 3.2.1.52,NAG)、纖維二糖水解酶(Cellobiohydrolase,EC 3.2.1.91,CBH)的活性,所用底物分別為4-甲基傘形酮-磷酸酯(MUF-P)、4-甲基傘形酮-β-D-葡萄糖苷(MUF-G)、4-甲基傘形酮-N-乙酰氨基-β-D-葡萄糖苷(MUF-NAG)和4-甲基傘形酮-纖維二糖苷 (MUF-C)。當(dāng)土壤酶作用于相應(yīng)底物時,熒光物質(zhì) 4-甲基傘形酮(MUF)釋放出來,通過多功能讀數(shù)儀測定溶液熒光值,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算得到相應(yīng)酶的活性與反應(yīng)速率。反應(yīng)方程如下所示。

        1.1 試驗材料

        1.1.1 土壤樣品采集 土壤樣品采集于四川阿壩藏族羌族自治州小金縣夢筆山海拔4 018 m的樹線交錯帶(31°42′15.7″N,102°19′18.7″E),采樣時間為2016年6月中旬。每個樣品取3個重復(fù),采集深度為 0~10 cm。用采樣鏟采集5個點的土壤樣品,混合均勻,各收集約 200g。土壤樣品采回后自然風(fēng)干,除去土壤里面的砂石、根系、植物殘體等,研磨并過篩,密閉保存。

        1.1.2 實驗儀器 加液用八道移液器(Multichannel pipette,0~250 μl);微孔板采用通用的黑色固體聚苯乙烯微孔板(Black solid polystyrene microplate,96- well,360-μl well capacity);樣品培養(yǎng)采用恒溫培養(yǎng)箱;熒光值測定采用全波長掃描式多功能讀數(shù)儀(儀器型號Varionskan Flash,美國Thermo)。

        1.2 試驗方法

        1.2.1 土壤懸濁液的制備 將準(zhǔn)確稱量的 1 g土壤置入150 ml容積燒杯中,加入120 ml去離子水。并且使用攪拌子攪拌30 min使其混合均勻。每個樣品均需制備出兩份土壤懸濁液作為平行樣,分別標(biāo)記為土壤溶液1和土壤溶液2。

        1.2.2 土壤溶液熒光值測定及熒光物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線 土壤酶活性的測定時,采用改性通用緩沖液(modified universal buffer,MUB)保證反應(yīng)溶液pH的持續(xù)穩(wěn)定。每個土壤樣品做3個平行,每個平行測定4個重復(fù)值,測定的激發(fā)和發(fā)射波長分別為365 nm和450 nm。土壤酶活性用每小時每克土壤樣品的底物MUF (μmol) 轉(zhuǎn)化率表示。將土壤溶液置于不同濃度(0、0.04、0.08、0.12、0.16、0.20、0.24、0.28 mmol/L)的底物溶液中,于20 ℃ 恒溫條件下準(zhǔn)確培養(yǎng)10 min,而后加入NaOH終止反應(yīng)并立即測定微孔板的熒光值,即可測得土壤酶的

        動力學(xué)參數(shù)。向土壤溶液中加入相同濃度的底物溶液,分別置于0、5、10、15、20、25、30 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng) 6 h,培養(yǎng)后向微孔板中加入NaOH終止反應(yīng)并立即測定微孔板的熒光值,即可測得土壤酶的熱力學(xué)數(shù)據(jù)。標(biāo)準(zhǔn)溶液采用 4-甲基傘形酮(4-methylumbelliferone)配置,溶液中標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的濃度梯度為 0、5、10、20、30和 50 μmo/L。每一種土壤均需單獨測定其標(biāo)準(zhǔn)曲線,因為不同土壤顆粒對熒光物質(zhì)的抑制作用是不同的。土壤干擾下的標(biāo)準(zhǔn)曲線以及空白樣(底物的自動水解)均做2個平行,每個平行測定4個重復(fù)值。

        1.3 數(shù)據(jù)處理

        1.3.1 土壤酶動力學(xué) 在酶促反應(yīng)中,當(dāng)反應(yīng)體系的溫度、pH和酶濃度恒定時,反應(yīng)初速度(v)隨底物濃度([S])的增加而加速,最后達(dá)到最大反應(yīng)速度(V)。根據(jù)Michaelis-Menten方程式,以1/v對1/[S]作圖,即可得到不同酶促反應(yīng)的各項動力學(xué)參數(shù)。

        式中:Km為米氏常數(shù)。

        1.3.2 土壤酶熱力學(xué) 土壤呼吸的溫度敏感性用Q10來表示,即理論上溫度每增加 10 ℃ 土壤呼吸所增加倍數(shù)[14]。根據(jù)von't Hoff 規(guī)則,土壤酶溫度效應(yīng)以兩個溫度下酶促反應(yīng)的速度常數(shù)之比表示,不過土壤敏感性指標(biāo)在此基礎(chǔ)上多有修改[15]。本文采用以下修正式計算Q10:

        式中:Q10為土壤酶的溫度敏感性指數(shù);R1、R2分別為T1、T2溫度下土壤酶的潛在活性值。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 土壤酶的動力學(xué)特征

        2.1.1 反應(yīng)初速率v0微孔板中各種物質(zhì)的加入量以及各種酶的反應(yīng)初始速率見表1。由表中可以看出,在土壤酶濃度相同時,土壤酶促反應(yīng)初速率v0隨著MUF底物濃度的增加而增加。同時,初速率穩(wěn)定性受到底物濃度影響,當(dāng)?shù)孜餄舛葹?.04 mmol/L時,土壤磷酸單酯酶(PME)的波動量為54.33%,β-葡萄糖苷酶(BG)的波動量為 61.00%;當(dāng)?shù)孜餄舛葹?0.16 mmol/L時,PME、BG波動量分別為11.39%、1.65%;而底物濃度達(dá)到0.28 mmol/L時,4種酶的波動量分別為 9.00%、1.37%、7.80%、21.57%。因此,底物濃度越小,反應(yīng)初速度波動愈大;隨著底物濃度增大,v0變化幅度呈降低趨勢,即酶促反應(yīng)初速率穩(wěn)定性增加。

        表1 川西高寒表層土壤(0~10 cm)4種酶促反應(yīng)的初速度(v0)Table 1 Initial velocities (v0) of four enzymatic reaction of alpine topsoil (0-10 cm) in western Sichuan

        2.1.2 酶促反應(yīng)動力學(xué)參數(shù) 土壤酶動力學(xué)參數(shù)不但表明土壤酶含量的高低,且反映酶與底物結(jié)合的緊密程度及其作用過程,對探索土壤酶存在狀態(tài)以及各種因素對酶催化反應(yīng)不同階段的影響有重要意義。應(yīng)用Michaelies方程對PME、BG、CBH、NAG這4種酶動力學(xué)參數(shù)進行擬合,所得米氏常數(shù)Km、最大反應(yīng)速率V參數(shù)見表2。

        最大反應(yīng)速率V可以反映出土壤中該酶的酶-基質(zhì)復(fù)合體分解形成產(chǎn)物的速度,由表2可以看出,高寒土壤中4種酶最大反應(yīng)速率為PME>BG>NAG>CBH。米氏常數(shù)Km表示酶對底物的親和力大小,Km值越大親和力越小,即酶與底物結(jié)合形成酶-基質(zhì)復(fù)合體越困難,結(jié)果顯示這4種酶與底物結(jié)合的親和力大小為 CBH>BG>NAG>PME。V/Km反映了酶促反應(yīng)初始速率,該值越大酶與底物結(jié)合形成酶-基質(zhì)復(fù)合體和酶-基質(zhì)復(fù)合體分解形成產(chǎn)物的總反應(yīng)速率越快,酶的催化效率越高,本研究中這4種酶的催化效率為PME>BG>CBH>NAG。

        表2 川西高寒表層土壤(0~10 cm)4種酶的動力學(xué)參數(shù)Table 2 Kinetic parameters of PME, BG, CBH and NAG of alpine topsoil (0-10 cm) in western Sichuan

        在土壤溶液酶促反應(yīng)體系中,土壤膠體對底物有一定的吸附能力,從而使酶促反應(yīng)更容易進行。但米氏方程計算土壤酶的動力學(xué)參數(shù)時,沒有考慮到土壤顆粒的吸附性,因此得到的Km值可能略大于真實值。

        2.2 土壤酶熱力學(xué)特征

        2.2.1 土壤酶活性的溫度效應(yīng) 不同土壤酶的溫度效應(yīng)趨勢見圖1。數(shù)據(jù)表明,在0~25 ℃的溫度范圍內(nèi),PME、BG、CBH的活性隨溫度的升高而增加;在25~35 ℃的溫度范圍內(nèi),這3種酶的活性均保持在較穩(wěn)定的范圍內(nèi)。NAG在0~35 ℃區(qū)間內(nèi),活性隨溫度升高而持續(xù)上升。

        2.2.2 土壤酶活性的溫度敏感性 不同溫度下土壤酶活性敏感性指標(biāo)Q10見表3。在0~35 ℃ 范圍內(nèi),4種酶對溫度的敏感性為:CBH>NAG>BG>PME。從表中看出,在10~20 ℃ 范圍內(nèi)PME、BG、CBH、NAG的Q10均達(dá)到最大值,分別為3.25、3.80、10.22和6.31。結(jié)果表明,隨著土壤溫度的上升,土壤酶的溫度敏感性是先升高后降低,在 10 ~20 ℃達(dá)到最大值。在高溫區(qū)間(20~35 ℃),4種酶的溫度敏感性較低溫區(qū)間(0~20 ℃)有顯著降低。

        圖1 不同溫度下川西高寒表層土壤(0~10 cm)的酶活性變化趨勢Fig. 1 Changes in enzyme activities of alpine topsoil (0-10 cm) with temperature in western Sichuan

        表3 川西高寒表層土壤(0~10 cm)中4種酶在不同溫度段的Q10值Table 3 Q10 values of four enzymes of alpine soil (0-10 cm) in different temperature intervals in western Sichuan

        3 討論

        3.1 酶的動力學(xué)特征

        本文以 4-甲基傘形酮衍生物為底物測量了磷酸單酯酶(PME)、β-葡萄糖苷酶(BG)、纖維二糖水解酶(CBH)和 β-N-乙酰氨基葡萄糖酶(NAG)的動力學(xué)參數(shù),結(jié)果與Stemmer[16]以及Parham和Deng[17]的結(jié)果范圍一致。與已報道文獻的平均值相比,本文 PME和BG的Km偏小,而NAG的Km偏大。這可能是由于在以土壤為代表的非均相系中,Km值受到酶構(gòu)象的改變、酶活性位點對底物或抑制物的可接近性、產(chǎn)物與底物的擴散效應(yīng)和微環(huán)境效應(yīng)等多項因素的影響。

        在酶活性測量的過程中,底物的選擇會對結(jié)果的準(zhǔn)確性造成影響。國際上沒有規(guī)定土壤酶測定的標(biāo)準(zhǔn)化底物,目前較為常用的示蹤底物主要為對硝基酚(p-Nitrophenyl, pNP)類衍生物和甲基傘形酮(MUF)類衍生物兩大類。對硝基酚測量方法的研究起源較早,早在 1969年就有文獻報道利用對硝基苯磷酸鹽(p-nitrophenyl phosphate)測量土壤磷酸酶的活性[18]。由于對硝基酚類衍生物的種類豐富,目前已廣泛用于水解酶和酯酶的研究[17,19-22],不過對硝基酚易被土壤膠體吸附,土壤顆粒本身帶有的顏色也會影響測定結(jié)果,并且該方法靈敏度較低,不能用于低活性土壤酶的測定[23]。同時,對硝基酚衍生物在土壤溶液中的擴散性不如4-甲基傘形酮衍生物[10],故以4-甲基傘形酮衍生物為底物的測定會導(dǎo)致Km值偏小。以 4-甲基傘形酮為底物的熒光法,憑借其高靈敏性、高準(zhǔn)確度和受土壤顆粒顏色影響小的特點,在測量酶活性的研究中發(fā)展迅速。但無論是哪種方法,都不能忽略土壤對底物的吸附作用,而土壤對底物的吸附作用往往很難測定與計算。因此,研究中往往選擇稀釋倍數(shù)高的土壤溶液測量酶活性,以忽略土壤對底物的吸附作用。Marx等[10]和 Stemmer[16]也選擇 MUF作為底物測量多種酶的活性,但本文PME和BG的Km值均比相關(guān)文獻低。原因可能在于本研究是將1 g土壤稀釋成120 ml的土壤溶液作為酶測定的背景溶液,Marx等是將1 g土壤稀釋成100 ml的土壤溶液,而Stemmer則僅將0.5 g的土壤稀釋成2 ml的土壤溶液,本研究中的土壤溶液稀釋度較大導(dǎo)致土壤對底物的吸附作用減弱,短時間內(nèi)MUF底物擴散不良,從而引起相應(yīng)酶的Km值降低。

        3.2 土壤酶的溫度敏感性

        土壤溶液的培養(yǎng)時間和培養(yǎng)溫度均會對酶的溫度敏感性的測定結(jié)果產(chǎn)生影響。培養(yǎng)溫度對酶活性的影響最為直接,就PME而言,Q10在10~20 ℃ 時大約為3.25,即培養(yǎng)過程1 ℃ 的溫差將導(dǎo)致結(jié)果出現(xiàn) 22.5% 的變異。因此,要獲得準(zhǔn)確結(jié)果就需要精確地控制培養(yǎng)溫度。

        由圖2可以看出,研究區(qū)域春夏日均溫為0~13 ℃,其中晝間的土壤溫度大多在10~20℃,少數(shù)時間段會升至20 ℃以上,但持續(xù)時間都較短,春夏夜間僅0 ~9 ℃;秋季均溫在 0~5 ℃;而冬季均溫大多在 0 ℃ 以下。因為這4種土壤酶在10~20 ℃的溫度敏感性最高,故該溫度區(qū)間的酶活性變化能最大程度反映全球變暖對該區(qū)域酶活性的影響。有研究表明,青藏高原地區(qū)未來的升溫幅度約0.6℃/10a,這一結(jié)果與ICPP在2013年發(fā)布的第五次報告中的 PCR8.5情景大體一致。高山地區(qū)的溫度變化往往伴隨著光照、水分等多種環(huán)境因子的變化,其實質(zhì)是通過改變山地區(qū)域小氣候、土壤理化特征等環(huán)境系統(tǒng),對土壤微生物生物量、群落結(jié)構(gòu)以及土壤酶活性造成影響[24-25]。研究區(qū)域土壤0~10 cm深度的日均溫在10 ℃以下,未來可預(yù)見升溫情形下,高寒土壤表層均溫也在20 ℃以內(nèi),因此本文對未來50 a升溫條件下表層土壤酶活性及增幅進行了預(yù)測,結(jié)果如圖3所示。

        圖2 研究區(qū)域土壤表層(0~10 cm)年均溫度(2011—2015)Fig. 2 Changes of daily average temperature of topsoil(0-10 cm) in study area from 2011 to 2015

        圖3 預(yù)期升溫情形下(2017—2070)川西高寒土壤表層的酶活性及增加幅度Fig. 3 Estimated activities of four enzymes of alpine topsoil(0-10 cm) from 2017 to 2070 under soil warming scenariosin western Sichuan

        按照 0.6℃/10a的增溫幅度計算,到 2070年P(guān)ME、BG、CBH和NAG的春夏晝間酶活性將增加約 0.678、0.427、0.066 和 0.114 μmol/(g·h),增幅達(dá)到46.50%,54.12%,112.35% 和81.64%,這期間春夏夜間以及秋季晝夜 4種酶的活性增加約 0.177、0.102、0.018 和 0.064 μmol/(g·h)。因此,持續(xù)升溫可能會對高寒土壤相關(guān)生化過程產(chǎn)生明顯影響,特別是在春夏季節(jié)影響更為顯著。

        4 結(jié)論

        1) 在動力學(xué)方面,磷酸單酯酶(PME)和 β-葡萄糖苷酶(BG)的活性及催化效率均顯著大于纖維二糖水解酶(CBH)和β-N-乙酰氨基葡萄糖酶(NAG),有機磷循環(huán)比有機碳、氮循環(huán)活躍。在底物濃度為0~0.28 mmol/L時,高寒土壤PME,BG,CBH,NAG 4種酶的活性隨著底物濃度的增加而上升。酶對底物的親和力(Km)和初始反應(yīng)速度(Km/Vm)共同決定著酶促的反應(yīng)速率和酶對底物的催化效率。

        2) 在熱力學(xué)方面,亞高山森林土壤酶的溫度敏感性在高溫區(qū)間反而較低。高寒土壤 PME,BG,CBH,NAG 4種酶的活性隨著溫度升高呈現(xiàn)出兩種變化趨勢,即持續(xù)增長型(NAG)和先升高后穩(wěn)定型(PME、BG、CBH)。溫度變化時,土壤酶的溫度敏感性先升高后降低,在10~20 ℃ 時達(dá)到最高。川西高寒土壤4種酶在低溫區(qū)間(0~20 ℃)具有較高的溫度敏感性。

        因此,川西高寒土壤酶在低溫階段對氣溫變暖響應(yīng)敏感,高寒土壤升溫會引起相關(guān)酶參與的土壤生態(tài)與生化過程的急劇變化,這對揭示增溫背景下高寒土壤生態(tài)系統(tǒng)生物地化循環(huán)的效應(yīng)特征具有重要理論意義。

        [1] 孫波, 趙其國. 土壤質(zhì)量與持續(xù)環(huán)境:Ⅲ.土壤質(zhì)量評價的生物學(xué)指標(biāo)[J]. 土壤, 1997, 29(5): 225-234

        [2] 曹慧, 孫輝, 楊浩, 等. 土壤酶活性及其對土壤質(zhì)量的指示研究進展[J]. 應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報, 2003, 9(1):105-109

        [3] Taylor J P, Wilson B, Mills M S, et al. Comparison of microbial numbers and enzymatic activities in surface soils and subsoils using various techniques[J]. Soil Biology &Biochemistry, 2002, 34(3): 387-401

        [4] 魚海霞, 何忠俊, 洪常青. 玉龍雪山土壤酶活性特征及其與土壤養(yǎng)分的關(guān)系[J]. 云南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué),2013, 28(5): 668-675

        [5] 尤彩霞, 陳清, 任華中,等. 不同有機肥及有機無機配施對日光溫室黃瓜土壤酶活性的影響[J]. 土壤學(xué)報, 2006,43(3): 521-523

        [6] 邊雪廉, 岳中輝, 焦浩,等. 土壤酶對土壤環(huán)境質(zhì)量指示作用的研究進展[J]. 土壤, 2015, 47(4): 634-640

        [7] Ilyina A V, Tatarinova N Y, Varlamov V P. The preparation of low-molecular-weight chitosan using chitinolyticcomplex from Streptomyces kurssanovii[J]. Process Biochemistry, 1999, 34(9): 875-878

        [8] 耿玉清, 王冬梅. 土壤水解酶活性測定方法的研究進展[J]. 中國生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報, 2012, 20(4): 387-394

        [9] Sinsabaugh R L, Reynolds H, Long T M. Rapid assay for amidohydrolase (urease) activity in environmental samples[J]. Soil Biology & Biochemistry, 2001, 32(14):2095-2097

        [10] Marx M C, Wood M, Jarvis S C. A microplate fluorimetric assay for the study of enzyme diversity in soils[J]. Soil Biology & Biochemistry, 2001, 33(12/13): 1633-1640

        [11] 馬延霞, 吳清平, 張菊梅, 等. 大腸菌群特異性檢測熒光底物 MUGal的合成及應(yīng)用[J]. 現(xiàn)代食品科技, 2014,30(8): 251-257

        [12] Giacometti C, Cavani L, Baldoni G, et al. Microplate-scale fluorometric soil enzyme assays as tools to assess soil quality in a long-term agricultural field experiment[J].Applied Soil Ecology, 2014, 75(2): 80-85

        [13] Dick R P. Methods of soil enzymology[M]. Msdison,Wisconsin: Soil Science Society of America, 2011

        [14] 楊慶朋, 徐明, 劉洪升, 等. 土壤呼吸溫度敏感性的影響因素和不確定性[J]. 生態(tài)學(xué)報, 2011, 31(8): 2301-2311

        [15] 秦紀(jì)洪, 張文宣, 王琴, 等. 亞高山森林土壤酶活性的溫度敏感性特征[J]. 土壤學(xué)報, 2013, 50(6): 1241-1245

        [16] Stemmer M. Multiple-substrate enzyme assays: A useful approach for profiling enzyme activity in soils?[J]. Soil Biology & Biochemistry, 2004, 36(3): 519-527

        [17] Parham J A, Deng S P. Detection, quantification and characterization of β-glucosaminidase activity in soil[J].Soil Biology & Biochemistry, 2000, 32(8/9): 1183-1190

        [18] Tabatabai M A, BremnerJ M. Use of p-nitrophenyl phosphate for assay of soil phosphatase activity[J]. Soil Biology & Biochemistry, 1969, 1(4): 301-307

        [19] Verchot LV, Borelli T. Application of para-nitrophenol(pNP) enzyme assays indegraded tropical soils[J]. Soil Biology & Biochemistry, 2005, 37(4): 625-633

        [20] Rui X, Liang D. Responses of soil β-glucosidaseactivities to simulated increased precipitation in a semi-arid temperate grasslands[J].Polish Journal of Ecology, 2013,61(2): 401-404

        [21] Stege P W, Messina G A, Bianchi G, et al. Determination of the β-glucosidase activity in different soils by pre capillary enzyme assay using capillary electrophoresis with laser-induced fluorescence detection[J]. Journal of Fluorescence, 2010, 20(2): 517-523

        [22] Elsgaard L, Andersen G H, Eriksen J. Measurement of arylsulphatase activity in agricultural soils using a simplified assay[J]. Soil Biology & Biochemistry, 2002,34(1): 79-82

        [23] Nannipieri P, Smalla K. Nucleic acids and proteins in soil[M]. Berlin Heidelberg: Springer Berlin Heidelberg,2006

        [24] Fierer N, Mccain C M, Meir P, et al. Microbes do not follow the elevational diversity patterns of plants and animals[J]. Ecology, 2011, 92(4): 797-804

        [25] 曹瑞, 吳福忠, 楊萬勤, 等. 海拔對高山峽谷區(qū)土壤微生物生物量和酶活性的影響[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報, 2016,27(4): 1257-1264

        猜你喜歡
        土壤溶液微孔底物
        氮添加對亞熱帶常綠闊葉林土壤溶液化學(xué)特性的影響
        兩種品牌大腸菌群酶底物法檢測試劑性能的比較
        云南化工(2021年6期)2021-12-21 07:30:56
        解析參與植物脅迫應(yīng)答的蛋白激酶—底物網(wǎng)絡(luò)
        科學(xué)(2020年2期)2020-08-24 07:57:00
        臨桂區(qū)土壤溶液的水化學(xué)特征及其溶蝕能力淺析
        強疏水性PDMS/PVDF微孔膜的制備及其性能研究
        中國塑料(2016年4期)2016-06-27 06:33:34
        膜蒸餾用PDMS/PVDF/PTFE三元共混微孔膜制備
        中國塑料(2015年3期)2015-11-27 03:42:12
        微孔發(fā)泡塑料中成核劑的研究
        中國塑料(2015年7期)2015-10-14 01:02:44
        泛素連接酶-底物選擇關(guān)系的研究進展
        土壤增溫對杉木幼林不同深度土壤溶液N03-濃度的影響
        土壤增溫對杉木幼林不同深度土壤溶液DOM的影響
        日本成年一区久久综合| 一出一进一爽一粗一大视频免费的| 国产资源在线视频| 国产性感主播一区二区| 亚洲国产成人av二区| 亚洲国产天堂一区二区三区| 久久永久免费视频| 日韩高清av一区二区| 色婷婷精品久久二区二区蜜臀av| 日本入室强伦姧bd在线观看| 北条麻妃在线视频观看| 亚洲精品熟女乱色一区| av免费在线免费观看| 看黄a大片日本真人视频直播| 久热这里只有精品99国产| 国产黄色污一区二区三区| 精品女同一区二区三区| 国产精品久久久久久久妇| 特级黄色毛片视频| 蜜桃av噜噜噜一区二区三区| 国产av无码专区亚洲av麻豆| 性色av无码久久一区二区三区| 欧美性一区| 蓝蓝的天空,白白的云| 国产欧美一区二区精品久久久| 久久亚洲av成人无码国产| 青青草极品视频在线播放| 久久99热只有频精品8国语| 久激情内射婷内射蜜桃| 色综合另类小说图片区| 羞涩色进入亚洲一区二区av | 国产一女三男3p免费视频| 国产女奸网站在线观看| 国产一区二区三区四区在线视频| 中国无码人妻丰满熟妇啪啪软件| 四虎影院在线观看| 亚洲妇女av一区二区| 国产极品少妇一区二区| 人妻少妇邻居少妇好多水在线| 国产精品久久久久亚洲| 国产自拍在线观看视频|