鄭 靈，肖培村，謝從簡(jiǎn)，曹厚明，趙 鵬，陳 勇

(內(nèi)江農(nóng)業(yè)科學(xué)院雜交水稻科技開發(fā)中心，四川 內(nèi)江 641000)

水稻小孢子發(fā)育過(guò)程中花藥超微結(jié)構(gòu)研究

鄭 靈，肖培村，謝從簡(jiǎn)，曹厚明，趙 鵬，陳 勇*

(內(nèi)江農(nóng)業(yè)科學(xué)院雜交水稻科技開發(fā)中心，四川 內(nèi)江 641000)

【目的】水稻小孢子發(fā)育過(guò)程直接影響成熟花藥的育性，進(jìn)行系統(tǒng)的細(xì)胞學(xué)研究揭示不同發(fā)育時(shí)期的結(jié)構(gòu)特征具有重要意義?！痉椒ā拷Y(jié)合形態(tài)觀察與光鏡分析，運(yùn)用掃描電鏡以及透射電鏡技術(shù)，分別對(duì)小孢子發(fā)育過(guò)程中水稻花藥外表皮角質(zhì)層的發(fā)育過(guò)程以及內(nèi)部細(xì)胞的形態(tài)發(fā)育進(jìn)行了系統(tǒng)觀察和分析?！窘Y(jié)果】①在花粉發(fā)育過(guò)程中，絨氈層細(xì)胞結(jié)構(gòu)變化最為明顯。減數(shù)分裂前期，絨氈層細(xì)胞結(jié)構(gòu)完整，隨著減數(shù)分裂的進(jìn)行，絨氈層細(xì)胞質(zhì)濃縮，細(xì)胞內(nèi)呈現(xiàn)空泡化，內(nèi)質(zhì)網(wǎng)清晰可見(jiàn)，此后逐漸消失。②空泡期早期花藥表皮細(xì)胞外部逐漸增厚，最終形成具有保護(hù)功能且對(duì)花藥正常發(fā)育至關(guān)重要的角質(zhì)層。③烏氏體作為絨氈層細(xì)胞向雄配子體運(yùn)輸物資的直接通道，是在小孢子早期在絨氈層靠近雄配子體側(cè)開始形成，參與絨氈層細(xì)胞內(nèi)脂肪酸以及其他營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的運(yùn)輸。④在烏氏體形成的同時(shí)，小孢子外壁物質(zhì)快速沉積，最后形成小孢子外壁結(jié)構(gòu)。【結(jié)論】本研究觀察了花藥發(fā)育多個(gè)關(guān)鍵時(shí)期的細(xì)胞學(xué)特征，且發(fā)現(xiàn)了不同組織與功能相關(guān)的精細(xì)結(jié)構(gòu)，對(duì)花藥發(fā)育的研究具有指導(dǎo)作用。

水稻；花藥發(fā)育；絨氈層細(xì)胞；角質(zhì)層；烏氏體；小孢子外壁

【研究意義】開花植物的雄性生殖發(fā)育是一個(gè)非常復(fù)雜的生物學(xué)過(guò)程，起始于分化組織形成花藥?；ㄋ幍陌l(fā)育進(jìn)程直接影響最終能否形成成熟的花粉，因此對(duì)其發(fā)育過(guò)程中結(jié)構(gòu)特征的研究尤為重要。 【前人研究進(jìn)展】在花藥形態(tài)建成以后，小孢子母細(xì)胞由四層細(xì)胞包裹，從外到內(nèi)分別是外表皮、藥室內(nèi)壁、中間層以及絨氈層。伴隨小孢子母細(xì)胞的發(fā)育，這四層細(xì)胞在形態(tài)上都隨之而變化，而其中外表皮角質(zhì)層增厚、絨粘層細(xì)胞的降解、烏氏體以及小孢子外壁的形成對(duì)小孢子發(fā)育至關(guān)重要。對(duì)于水稻花藥發(fā)育超微結(jié)構(gòu)研究已經(jīng)積累了很多資料[1-3]，且研究的較為細(xì)致?！颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】本研究運(yùn)用常規(guī)石蠟切片、掃描電鏡與透射電鏡對(duì)水稻花藥發(fā)育進(jìn)行了系統(tǒng)的觀察?！緮M解決的關(guān)鍵問(wèn)題】旨在發(fā)現(xiàn)小孢子發(fā)育階段花藥細(xì)胞的結(jié)構(gòu)特征變化，其結(jié)果進(jìn)一步認(rèn)識(shí)了水稻小孢子發(fā)育過(guò)程中各種細(xì)胞的結(jié)構(gòu)變化，揭示超微結(jié)構(gòu)與組織細(xì)胞功能間的聯(lián)系，有助于開展雄性不育發(fā)育過(guò)程中的比較研究。

1 材料與方法

運(yùn)用秈稻品種內(nèi)恢9914，2016年正季種植于內(nèi)江雜交水稻中心實(shí)驗(yàn)基地，常規(guī)方法管理。從幼穗發(fā)育進(jìn)入雌雄蕊原基形成期開始直至開花為止進(jìn)行取樣，根據(jù)小穗不同長(zhǎng)度處于不同發(fā)育時(shí)期的幼穗進(jìn)行固定[4]。

不同發(fā)育時(shí)期的花藥采用戊二醛-鋨酸雙固定，LR white樹脂包埋，半薄切片，在光鏡下觀察確定發(fā)育時(shí)期，從中選出理想的各個(gè)時(shí)期的材料進(jìn)一步制備超薄切片，在Tecnai G2F20型透射電子顯微鏡下觀察、拍照，加速電壓為80kV。

取不同發(fā)育時(shí)期的花藥采用戊二醛-鋨酸雙固定，經(jīng)系列酒精脫水，醋酸異戊酯浸透，液體CO2臨界點(diǎn)干燥(日立HCP-2型)，真空噴鍍金，標(biāo)本置于JEM-1200 EX掃描電鏡觀察，拍照，加速電壓為20 kV。

2 結(jié)果與分析

2.1 小孢子的發(fā)育階段

根據(jù)幼穗不同發(fā)育階段的形態(tài)變化，確定了花藥發(fā)育減數(shù)分裂時(shí)期、小孢子時(shí)期、空泡期、二胞花粉時(shí)期以及成熟花粉時(shí)期相對(duì)應(yīng)的穎花形態(tài)(圖1)。同時(shí)通過(guò)對(duì)相應(yīng)時(shí)期的幼穗進(jìn)行常規(guī)脫水包埋后半薄切片并用光鏡觀察確定花藥的時(shí)期(圖2)。

2.2 絨氈層結(jié)構(gòu)變化

在減數(shù)分裂時(shí)期，絨氈層細(xì)胞體積明顯比表皮細(xì)胞、藥室內(nèi)壁細(xì)胞、中層細(xì)胞都要大，且原生質(zhì)濃，細(xì)胞器豐富，液泡少而小(圖3A)。其中線粒體分布于核的周圍，而質(zhì)體多位于絨氈層的內(nèi)切向壁一側(cè)，表現(xiàn)出極性分布現(xiàn)象。這時(shí)的絨氈層細(xì)胞結(jié)構(gòu)完整，內(nèi)切向壁稍厚。

在四分體時(shí)期到小孢子時(shí)期，絨氈層細(xì)胞中質(zhì)體的數(shù)量增多，原生質(zhì)體進(jìn)一步濃縮，但其內(nèi)細(xì)胞器仍十分豐富，其中以內(nèi)質(zhì)網(wǎng)最為明顯，呈高度發(fā)達(dá)狀態(tài)。絨氈層細(xì)胞在四分體時(shí)期后開始解體，出現(xiàn)單個(gè)或幾個(gè)連在一起隨機(jī)分布的小泡囊，細(xì)胞核開始解體，核膜消失。且這一時(shí)期絨粘層細(xì)胞內(nèi)側(cè)區(qū)域分散著大量染色較深的脂肪體(圖3B)。

A:減數(shù)分裂時(shí)期；B:四分體時(shí)期；C:空泡期；D:二胞花粉時(shí)期；E:成熟花粉時(shí)期。Le外稃；pa內(nèi)桴；gl穎片；st花藥圖1 水稻不同發(fā)育時(shí)期穎花解剖圖Fig.1 Anatomical diagram of rice flowers in different developmental stages

A:減數(shù)分裂(二分體)時(shí)期；B:四分體時(shí)期；C:小孢子時(shí)期；D:空泡期；E:成熟花粉時(shí)期圖2 水稻花藥不同發(fā)育時(shí)期石蠟切片觀察Fig.2 Paraffin serial section analysis of rice anther in different developmental stages

(A)到(D)為內(nèi)恢9914 分別在減數(shù)分裂、小孢子時(shí)期、花粉有絲分裂早期、成熟花粉時(shí)期的橫切面；(E)到(H)為(A)到(D)中靠近絨氈層內(nèi)側(cè)區(qū)域的放大分析；(I)到(L)為(A)到(D)中外表皮細(xì)胞外側(cè)區(qū)域的放大分析。Ba,孢子外壁柱狀層；C，角質(zhì)層； En，藥室內(nèi)壁細(xì)胞；Ep，外表皮細(xì)胞； Ex，孢子外壁；He,孢子外壁基層；L，脂肪體；M，中層細(xì)胞；Msp，小孢子細(xì)胞；Nu，細(xì)胞核；Or，烏氏體；P，花粉；Pl，質(zhì)體；PM，質(zhì)膜；PT，絨氈層內(nèi)側(cè)；Se，孢子外壁覆蓋層；T，絨氈層；Ve，空泡圖3 花藥不同發(fā)育時(shí)期透射電鏡觀察Fig.3 Transmission electron microscopy analyses of rice anther in developing stages

在小孢子晚期(空泡期)到花粉有絲分裂早期絨氈層細(xì)胞核消失，核物質(zhì)滲透到細(xì)胞質(zhì)中，細(xì)胞徑向厚度變薄且出現(xiàn)前烏氏體結(jié)構(gòu)，細(xì)胞器降解，整個(gè)絨氈層細(xì)胞幾乎成透明狀，但絨氈層細(xì)胞間界限清晰，質(zhì)膜沒(méi)有降解。同時(shí)絨粘層靠近烏氏體內(nèi)側(cè)區(qū)域脂肪體數(shù)目有所降低(圖3C)。

當(dāng)花粉完全成熟時(shí)，絨氈層細(xì)胞已完全退化解體。僅留一條小而窄的帶狀殘留，中層細(xì)胞此時(shí)也已完全解體，殘留的中層細(xì)胞壁和絨粘層細(xì)胞內(nèi)切壁一起形成疊合的“壁”包裹著花粉。絨粘層細(xì)胞靠近成熟烏氏體一側(cè)脂肪體消失(圖3D、3H)。

2.3 烏氏體的發(fā)育

在小孢子中期絨粘層細(xì)胞開始解體、細(xì)胞徑向壁變薄時(shí)，前烏氏體已部分暴露于藥室腔，前烏氏體表面開始沉積孢粉素物質(zhì)(圖3C、圖3G)，絨氈層細(xì)胞內(nèi)切向面的質(zhì)膜上也有前烏氏體分布，其上孢粉素物質(zhì)同樣有沉積。

隨著花粉的進(jìn)一步發(fā)育，孢粉素物質(zhì)的逐漸積累，烏氏體發(fā)育逐漸成熟，均勻地排列在藥室腔內(nèi)表面上。成熟烏氏體中央著色淺，而四周著色較深，其上不均勻地沉積孢粉素物質(zhì)(圖3D、圖3H)。最終形成類似馬蹄形的結(jié)構(gòu)。

2.4 小孢子外壁的沉積

早在四分體時(shí)期胼胝質(zhì)壁就包裹在四分體細(xì)胞外圍，在此基礎(chǔ)上,隨著發(fā)育的進(jìn)行，小孢子早期小孢子的外壁就形成了可以分辨的帶狀結(jié)構(gòu)，其帶狀結(jié)構(gòu)上附著了很多黑色的顆粒(圖3F)，同時(shí)黑色顆粒也存在于小孢子的周圍。

等到小孢子中期到空泡期時(shí)，孢子外壁胞粉素快速沉積，形成了由兩側(cè)電子致密帶以及中間空隙形成的帶狀柵欄結(jié)構(gòu)，到空泡期后期時(shí)兩邊的電子致密帶明顯加寬，結(jié)果分別形成了孢子外壁的覆蓋層、柱狀層、基層(圖3G)。至此孢子外壁基本形成，即由中間的透明帶和兩邊較寬的電子致密帶組成的帶狀柵欄結(jié)構(gòu)。

花粉發(fā)育的后期，孢子外壁的外形基本保持不變，但壁物質(zhì)沉積增多，而表現(xiàn)為更加致密。中間柱狀層透明帶區(qū)清晰可見(jiàn)且覆蓋層、基層中間有柱狀通道連接(圖3H)。

2.5 角質(zhì)層的形成

在絨氈層細(xì)胞通過(guò)前烏氏體往藥室腔供給胞粉素以形成外孢壁的同時(shí)，外表皮細(xì)胞細(xì)胞壁外也逐漸形成一層著色較淺的結(jié)構(gòu)(圖3I-J)，該結(jié)構(gòu)就是角質(zhì)層。在四分體時(shí)期角質(zhì)層還只是薄薄的覆蓋在細(xì)胞壁外，但到了小孢子時(shí)期、空泡期早期就逐漸加厚，形成靠近內(nèi)側(cè)著色較深的角質(zhì)、靠近外側(cè)的蠟質(zhì)結(jié)構(gòu)，而且外部的蠟質(zhì)堆積成脊?fàn)罱Y(jié)構(gòu)(圖3K)。到了成熟期角質(zhì)隨著積累的過(guò)程著色更深，而蠟質(zhì)則由脊?fàn)罱Y(jié)構(gòu)發(fā)育成棘狀突起(圖3L)。為進(jìn)一步直觀的觀察花藥發(fā)育過(guò)程外表皮細(xì)胞壁的形態(tài)變化過(guò)程，筆者對(duì)處于3個(gè)重要發(fā)育時(shí)期的花藥進(jìn)行掃描電鏡觀察，其結(jié)果驗(yàn)證的透射電鏡的結(jié)果：在減數(shù)分裂以及四分體時(shí)期花藥的表皮細(xì)胞壁上未完全形成，細(xì)胞小且分界不明顯；待花藥發(fā)育到小孢子時(shí)期，細(xì)胞脹大、輪廓清晰可見(jiàn)但仍然很小、且表面光滑無(wú)物質(zhì)堆積；當(dāng)進(jìn)入空泡期，表皮細(xì)胞充分伸長(zhǎng)、表面形成致密的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)；在成熟花粉中網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)更加致密(圖4)。

(A)到(C)為內(nèi)恢9914 外表皮細(xì)胞角質(zhì)層分別在減數(shù)分裂、小孢子時(shí)期、空泡期后期的掃描圖片圖4 花藥發(fā)育各個(gè)時(shí)期掃描電鏡觀察Fig.4 Scanningelectron microscopy analyses of rice anther in developing stages

3 討 論

3.1 絨氈層細(xì)胞在花藥的發(fā)育過(guò)程中具有重要功能

處于花藥壁四層體細(xì)胞中最里層，絨氈層直接與花藥藥室中的花粉母細(xì)胞及以后發(fā)育中的花粉接觸，在小孢子到成熟花粉發(fā)育的過(guò)程中扮演重要的角色[5]，是將孢子體組織的物質(zhì)輸往雄配子體的中轉(zhuǎn)站。作為分泌性細(xì)胞，絨氈層提供四分體胼胝質(zhì)降解釋放小孢子細(xì)胞所必須的酶類、花粉發(fā)育所需要的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)、以及花藥壁發(fā)育所需要的胞粉素等長(zhǎng)鏈脂肪酸[6]。本研究觀察到四分體時(shí)期脂肪粒大量存在于絨氈層細(xì)胞內(nèi)切向壁，到花藥有絲分裂早期數(shù)目明顯下降，直至最終消失。從而直接從形態(tài)上驗(yàn)證了絨粘層細(xì)胞在合成大量脂肪類物質(zhì)的同時(shí)會(huì)伴隨小孢子的發(fā)育過(guò)程而變化。絨粘層細(xì)胞在花粉發(fā)育晚期啟動(dòng)細(xì)胞程序性死亡，在細(xì)胞降解的過(guò)程中，細(xì)胞內(nèi)結(jié)構(gòu)相繼消失。在已報(bào)道的有關(guān)雄性不育研究中，常因?yàn)榻q氈層的提前降解[7-8]、延遲降解[9]或不降解而導(dǎo)致雄性敗育。

3.2 烏氏體可能是絨氈層細(xì)胞內(nèi)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)運(yùn)往藥室腔的直接通道

在絕大多數(shù)植物中球形或馬蹄形的烏氏體是分泌性絨粘層細(xì)胞的標(biāo)志，早在1865年烏氏體就被Rosanoff發(fā)現(xiàn)[10]，但對(duì)于其功能的研究至今尚不清楚，有人認(rèn)為烏氏體只是絨粘層代謝的副產(chǎn)物，但也有人證明烏氏體參與到胞粉素、脂肪酸衍生復(fù)合物、以及苯丙酯類從絨粘層運(yùn)輸?shù)交ㄋ幫獗谛纬苫ㄋ幈诘倪^(guò)程[11]。由于結(jié)構(gòu)太小，又和絨粘層細(xì)胞緊密結(jié)合，烏氏體一直不能被分離，所以其生化性質(zhì)一直沒(méi)能被研究，直到RAFTIN蛋白的發(fā)現(xiàn)以及編碼基因功能研究才直接證明烏氏體的運(yùn)輸功能[12]。在小麥中RAFTIN蛋白存在于前烏氏體中，并且在烏氏體中聚集，最后轉(zhuǎn)移到小孢子壁上參與外孢壁的形成。伴隨著花藥絨粘層的濃縮與降解過(guò)程，本研究發(fā)現(xiàn)前烏氏體到成熟烏氏體的發(fā)育過(guò)程中大量脂肪體分散在其周圍，從而間接證明了烏氏體可能參與到營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)從絨粘層到藥室腔的運(yùn)輸。

3.3 角質(zhì)層和外孢壁對(duì)花藥起到保護(hù)作用

高等植物具有高效和有效的繁殖能力，在不斷的進(jìn)化過(guò)程中，形成了兩道屏障，用以保護(hù)小孢子和花粉細(xì)胞抵御各種環(huán)境脅迫和生物壓迫。首先是花藥壁的四層細(xì)胞，特別是覆蓋有角質(zhì)層的外表皮；其次是由外孢壁構(gòu)成的花粉外壁，在花粉釋放后抵抗環(huán)境脅迫中起到重要的作用[13]。

角質(zhì)層是覆蓋在植物地上部分最表層的保護(hù)層，直接與外界環(huán)境接觸。角質(zhì)層由最外層的上表皮蠟質(zhì)和角質(zhì)組成，上表皮蠟質(zhì)主要由可溶性的脂肪酸、烷烴、脂肪醇、酮類和酯類組成，作為連續(xù)的網(wǎng)狀分布于植物體的最表面。角質(zhì)主要由羥基脂肪酸聚合形成的不可溶性多聚酯組成。角質(zhì)層的重要功能是降低通過(guò)植物表面的水分散失，此外，角質(zhì)層還在防止紫外線輻射傷害、抵抗病蟲害的侵入方面起重要作用，也有研究報(bào)道角質(zhì)層的蠟質(zhì)含量與花粉育性和其他農(nóng)藝性狀有關(guān)[14-15]。

4 小 結(jié)

在水稻花藥不同發(fā)育時(shí)期，花藥各組織細(xì)胞具有特定的發(fā)育進(jìn)程，同時(shí)表現(xiàn)出與之相對(duì)應(yīng)的精細(xì)結(jié)構(gòu)，本研究通過(guò)解剖、石蠟切片、掃描電鏡以及透射電鏡分別在器官發(fā)育的關(guān)鍵時(shí)期從整體結(jié)構(gòu)特征到細(xì)胞形態(tài)進(jìn)行了詳細(xì)的觀察和描述，發(fā)現(xiàn)了絨氈層細(xì)胞、上表皮細(xì)胞以及烏氏體等多種細(xì)胞組織的超微結(jié)構(gòu)特征，對(duì)花藥的發(fā)育系統(tǒng)研究具有重要意義。

[1]Sun J,Zhu Y G. The ultrastructure of pollen and anther wall in the development of Hubei photoperiod-sensitive genic male sterile rice[J]. ActaAgron Sin, 1995, 21(3): 364-367.

[2]傅建華，劉志玲，陳良碧，等. 水稻花藥絨氈層及烏氏體的超微結(jié)構(gòu)觀察[J]. 生命科學(xué)研究，1999，3(2)：155-160.

[3]馮九煥，盧永根，劉向東，等. 水稻花粉發(fā)育過(guò)程及其分期[J]. 中國(guó)水稻科學(xué)，2001，15(1)： 21-28.

[4]Ming-Der Huang,Fu-Jin Wei. Analyses of Advanced Rice Anther Transcriptomes Reveal Global Tapetum Secretory Functions and Potential Proteins for Lipid ExineFormation[J]. Plant Physiology, 2009, 149: 694-707.

[5]ShivannaK R, Cresti M, Ciampolini F. Pollen Biotechnology for Crop Production and Improvement[M]. Cambridge, UK:Cambridge University Press,1997:15-39.

[6]Pacini E, Franch G G, Hesse M. The tapetum:Itsform,function,and possible phylogeny in Embryophyta[J]. Plant Syst. Evol., 1985, 149: 155-185.

[7]Loukides C A, Broadwater A H, B edinger P A. Two new malesterile mutants ofZeamays(Poaceae) with abnormal tapetal cell morphology[J]. Amer J Bot, 1995, 82(8): 1017-1023.

[8]MassariME,MurreC.Helix-loop-helix proteins:Regulators of transcription in eukaryotic organisms[J]. Mol. Cell. Biol., 2000, 20: 429-440.

[9]Li N, Zhang D S, Liu H S, et al. The rice tapetum degeneration retardation gene is required for tapetum degradation and anther development[J]. Plant Cell, 2006, 18: 2999-3014.

[10]Heslop-Harrison J. Anther carotenoids and the synthesis of sporopollenin[J]. Nature, 1968, 220: 605.

[11]Huysmans S, El-Ghazaly, G.Smets E. Orbicules in angiosperms: morphology, function,distribution and relation with tapetum types[J]. Bot.Rev.,1998, 64: 240-272.

[12]Aiming Wang, Qun Xia, Wenshuang Xie. The classical Ubisch bodies carry a sporophytically produced structural protein(RAFTIN)that is essential for pollen development[J]. PNAS., 2003, 24: 14487-14492.

[13]PiffanelliP, Ross J H, Murphy D J. Biogenesis and function of the lipidic structures of pollen grain Sex[J].Plant Reprod.,1998,11:65-80.

[14]Jung K H, Han M J, Lee D Y, et al. Wax-deficient anther1 is involved in cuticle and wax production in rice anther walls and is required for pollen development[J]. Plant Cell, 2006, 18:3015-3032.

[15]Li H, Pinot F, Sauveplane V, et al. Cytochrome P450 family member CYP704B2 catalyzes the v-hydroxylation of fatty acids and is required for anther cutin biosynthesis and pollen exine formation in rice[J]. Plant Cell, 2010, 22: 173-190.

UltrastructuralObservationsofRicePollenDevelopments

ZHENG Ling, XIAO Pei-cun, XIE Cong-jian, CAO Hou-ming, ZHAO Peng, CHEN Yong*

(Hybrid Rice Research Center, Neijiang Academy of Agricultural Science, Sichuan Neijiang 641000, China)

【Objective】The development of microspores directly affected the fertility of mature anthers, and it is critical important to carry out the systematic cytological study which reveals the structural characteristics of different developmental stages.【Method】In combination with morphology observation and light microscope analysis, by using scanning electron microscopy (SEM) and transmission electron microscopy (TEM) observation, an extensively cytological study of rice anther outer epidermis cutin layer and the internal cells was conducted on the pollen development of SI HUI 498, an indica cultivar. 【Result】(i) During pollen development process, ultrastructural change of tapetum was most dramatic: Tapetum cells had complete structure before meiosis; Following meiosis, tapetum cytoplasm condensed and vacuoles formed; The endoplasmic reticulums population rapidly increased and were clearly visible. These changes mean that endoplasmic reticulum may play a major role in the pollen development. (ii) From early vacuolated pollen stage, cell wall of anther outer epidermis gradually thickened, and finally cuticle formed protecting the microspore from various environmental and biological stresses. (iii)Orbicule, as nutrition direct access from tapetum cells to male gametophytes, was not visible until early spore pollen stage, participating in transportation of fatty acids and protein from tapetum cells. (iv)At the same time of orbicule formation, sporopollenins begin to deposit on the surface of spores and finally produced the structure of exine. 【Conclusion】Our results uncovered the cytological characteristics of anther development of several key development stages and found that the fine structure associated with their distinct functions in different tissues, which could guide the study of anther development.

Rice; Pollen development; Tapetum cells; Cuticle; Orbicule; Exine

1001-4829(2017)12-2624-05

10.16213/j.cnki.scjas.2017.12.002

2017-01-20

四川省十三五水稻育種攻關(guān)項(xiàng)目“引領(lǐng)性水稻育種材料與方法創(chuàng)新”(2016NYZ0028)

鄭 靈(1986-) ，女，四川內(nèi)江人，碩士，農(nóng)藝師，主要從事分子生物輔助育種及優(yōu)質(zhì)多抗恢復(fù)系選育工作，Tel: 13890539812，E-mail: zl86311@163.com，*為通訊作者， E-mail: chengyongnj@163.com。

S511

A

(責(zé)任編輯陳 虹)