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        試述食品中大腸菌群檢測與技巧

        2017-12-18 12:58:18林永潔
        魅力中國 2017年47期
        關鍵詞:大腸菌群技巧檢測

        林永潔

        摘 要:大腸菌群是評價食品衛(wèi)生質量的重要指標之一。檢測結果其定義為:需氧及兼性厭氧、在37℃能分解乳糖產酸產氣的革蘭氏染色陰性無芽孢桿菌。本文闡述了兩個標準版本的大腸菌群檢測中的檢測步驟、方法對比及染色鏡檢技巧。

        關鍵詞:大腸菌群 檢測 技巧

        大腸菌群的測定,在實際工作中存在不同檢測方法。GB/T4289.3-2003、GB4789.3-

        2016版都是現行有效的兩個版本的檢驗標準。盡管方法各異,但乳糖發(fā)酵卻是這些不同方法中的共同點。

        一、大腸菌群檢測

        1、培養(yǎng)基準備:培養(yǎng)基 GB/T4789.03—2003:乳糖膽鹽發(fā)酵培養(yǎng)基,伊紅美蘭瓊脂,乳糖復發(fā)酵培養(yǎng)基。GB 4789.03—2016:月桂基硫酸鹽胰蛋白胨肉湯(LST),煌綠膽鹽肉湯(BGLB)。儀器超凈工作臺、生化培養(yǎng)箱、顯微鏡。

        2、實驗原理和方法

        2.1檢驗步驟

        依據GB/T4789.3—2003(食品衛(wèi)生微生物學檢驗大腸菌群測定,檢驗主要有以下步驟:

        (1)接種:以無菌操作取均勻后檢樣25 mL(g)放于含有 225 mL滅菌生理鹽水的滅菌三角燒瓶中,經充分振搖做成1:l0的均勻稀釋樣液。根據食品衛(wèi)生標準要求和對樣品污染情況的判斷,選擇3個稀釋度,每個稀釋度接種3管,放置36℃±l℃的生化培養(yǎng)箱內培養(yǎng)24±2h。

        (2)平板分離:將產氣的發(fā)酵管分別劃線在伊紅美藍瓊脂平板上,置36℃±l℃的生化培養(yǎng)箱內培養(yǎng)24±2h。

        (3)染色和證實:觀察菌落形態(tài),并做革蘭氏染色鏡檢。革蘭氏染色陰性的無芽胞桿菌的試管接種乳糖發(fā)酵管,置于36℃±1℃的生化培養(yǎng)箱內培養(yǎng)24±2h。

        (4)結果報告:凡是乳糖管產氣、革蘭氏染色陰性的無芽胞桿菌,判定該管為大腸菌群陽性。根據大腸菌群陽性的管數,查 MPN檢索表,乘以稀釋倍數,報告每100 mL(g)樣品中大腸菌群的MPN值。

        2.2測試步驟

        依據GB 4789.3—2016 (食品安全國家標準微生物學檢驗大腸菌群測定》,測試主要有以下步驟:(1)接種:以無菌操作取均勻后檢樣25 mL(g)放入盛有225mL滅菌磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌均質杯中,經充分振搖做成1:10的均勻稀釋樣液。根據食品衛(wèi)生標準要求和對樣品污染情況的判斷,根據污染情況判斷,依次制成十倍遞增系列稀釋樣品勻液,選擇3個稀釋度,每個稀釋度接種3管LST,放置 36±1℃的生化培養(yǎng)箱內培養(yǎng)24±2h。(2)證實:將產氣的發(fā)酵管挑取一環(huán)菌液接種BGLB管,放置36±l℃的生化培養(yǎng)箱內培養(yǎng)48±2h。(3)結果報告:根據大腸菌群陽性的管數,查MPN檢索表,乘以稀釋倍數,報告每l mL(g)樣品中大腸菌群的MPN值。在MPN檢索表第一欄陽性管數下面列出的mL(g),系指原樣品(包括液體和固體)的mL(g)數,并非樣品稀釋后的mL(g)數,對固體樣品理應注意固體樣品的接種量。

        樣品1 g經10倍稀釋后,雖加入1 mL 量,但其實際其中只含有0.1 g樣品,故應按0.1 g記,不應按 1 mL記。接種第一梯度1g×3的樣量是10倍稀釋液的10mL。

        二、2003版與2016版的大腸菌群檢測新方法對比

        2003版大腸菌群檢驗步驟檢驗采用三步(即乳糖發(fā)酵試驗、分離培養(yǎng)和證實試驗).在食品檢驗上,除個別情況外,一般來說,如果平板上有較多典型大腸菌群菌落,革蘭氏染色為陰性桿菌,即可做出判定。如平板上典型菌落甚少或均不夠典型,則應多挑菌落做證實試驗,以免出現假陰性。只作一步初發(fā)酵,對某些食品來說,誤差是比較大的。這樣做,會有相當部分的合格樣品被作為不合格樣品處理,應予注意。

        2016版大腸菌群檢測新方法與國際接軌,檢驗新技術進入國標行列,它釆用了LST一BGLB進行發(fā)酵培養(yǎng)。接種LST肉湯初發(fā)酵培養(yǎng),如產酸、產氣將培養(yǎng)物轉種于BGLB肉湯培養(yǎng),根據其陽性管數查閱MPN檢索表即可得到檢測結果。2003版大腸菌群檢測方法為經典方法,類似實驗中仲裁法;2016版方法簡便易行便于初學者(企業(yè)出廠檢驗人員)操作。類似實驗中的快速測定,省時省力可提高速度與效率。在實際工作的檢測中比對,兩種方法并存結果不存在明顯差異。

        三、大腸菌群實驗技巧

        革蘭氏染色鏡檢依據GB/T4789.3—2003標準。

        典型菌落挑選→革蘭氏染色鏡檢

        3.1菌落挑選:在EMB平板上挑選典型菌落進行鏡檢

        大腸桿菌菌落呈黑紫色有光澤或無光澤時,檢出率最高;紅色、粉紅色菌落檢出率較低。

        挑取菌落數與大腸桿菌的檢出率密切相關。

        3.2革蘭氏染色鏡檢

        實際操作步驟技巧關鍵點在脫色。

        (1)涂片:均勻而薄。

        (2)固定:火焰固定時溫度適宜,把涂片在酒精燈火焰上方、左右或以旋轉方式快速通過,將涂片觸碰手握拳頭時虎口處,以不熾熱為度,過熱則鏡檢時菌體變形,不利于觀察及判定。

        (3)初染:滴加結晶染液1分鐘完成,傾斜用細水流沖洗待干。

        (4)媒染:滴加碘液媒染,水洗。

        (5)脫色:掌握脫色度是染色成敗的關鍵,G-菌細胞壁含有較多被乙醇溶解的類脂質,而且肽聚糖質較薄,交聯度低,用95%的乙醇脫色溶解了類脂質增加細胞通透性,使被染的結晶紫和碘復合物易于滲出,結果G-菌脫去初染的紫色,復染上蕃花花紅的顏色,所以菌體呈紅色。在實際操作中薄而均勻的涂片上滴加95%的乙醇約20至30秒,流出液體無色時終止脫色,否則脫色過度會造成G+誤判為G-菌。

        (6)沙黃復染液(番紅花紅)復染。

        (7)沖洗:玻片傾斜,用穩(wěn)定的細流沖洗。

        (8)涂片宜挑取培養(yǎng)18~24h菌落,老齡化的G-菌呈G+菌,工作中注意避免出現假陽性和假陰性。

        (9)鏡檢用10 ×100 油鏡進行鏡檢,香柏油與載玻片的折射率相近,滴加香柏油會使通透性增加,在鏡檢中可觀察到清晰的物象。在載玻片所要觀察部位滴上一滴香柏油,換上油鏡,小心調節(jié)粗準焦螺旋,使油鏡慢慢下降或慢慢上升載合物臺,從側面觀察油鏡下端與標本之間的距離,當油鏡下端開始觸及油滴時即可停止。從目鏡觀察,用手調節(jié)粗準焦螺旋,即可觀察到清晰的標本物像。

        參考文獻

        [1]中華人民共和國國家標準GB 4789.3-2016《食品安全國家標準食品微生物學檢驗大腸菌群計數》.

        [2]《食品微生物檢測工作指南》中國標準出版社 2012年.

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