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(1.昆明理工大學(xué)食品安全研究院,云南昆明 650500;2.昆明市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,云南昆明 650231)

超聲提取食用玫瑰花總酚及其大孔樹脂純化前后抗氧化活性

蔣孟君1,王藝2,任建青2,葉玉2,程桂廣1,趙天瑞1,曹建新1,*

(1.昆明理工大學(xué)食品安全研究院,云南昆明 650500;2.昆明市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,云南昆明 650231)

以昆明安寧八街食用玫瑰為原料,對(duì)其多酚提取工藝及純化前后抗氧化活性進(jìn)行研究。結(jié)果表明,提取溫度是影響食用玫瑰多酚提取效果的主要因素;超聲提取的最佳條件為乙醇體積分?jǐn)?shù)70%、提取溫度40 ℃、料液比1∶25 (g/mL)、提取3次，提取時(shí)間每次40 min,經(jīng)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證此條件下總多酚含量為93.81 mg/g;通過9種樹脂靜態(tài)吸附及解析性能比較,確定XAD-7型樹脂為多酚分離純化的理想樹脂;對(duì)比純化前后玫瑰花多酚對(duì)DPPH自由基、ABTS自由基的氧化能力,純化前對(duì)DPPH自由基和ABTS自由基清除能力IC50值分別為209.27、505.67 μg/mL;純化后分別為96.30、378.09 μg/mL;結(jié)果表明玫瑰花多酚經(jīng)XAD-7型大孔樹脂純化后能提高其抗氧化活性。

食用玫瑰花,多酚,提取工藝,大孔樹脂純化,抗氧化活性

薔薇科植物玫瑰(RosarugosaThunb)是一種具有較高食用價(jià)值和經(jīng)濟(jì)價(jià)值的藥用植物[1],其成分十分豐富,約有300多種,含有多酚、可溶性糖、有機(jī)酸、黃酮類等小分子活性物質(zhì)[2]。其中多酚類化學(xué)成分具有清除自由基、抗炎、抑菌、降血脂和預(yù)防心臟病等生理活性[3]。隨著天然產(chǎn)物開發(fā)的不斷深入,植物多酚已成為最具潛在開發(fā)價(jià)值的天然抗氧化劑來源,其抗氧化活性的研究也備受關(guān)注[4-6]。

利用超聲產(chǎn)生的熱效應(yīng)、機(jī)械作用使植物細(xì)胞內(nèi)可溶性物質(zhì)快速釋放、擴(kuò)散并溶解進(jìn)入溶劑中,同時(shí)可以較好地保持提取物的結(jié)構(gòu)和活性,具有時(shí)間短、提取率高[7],消耗溶劑少、避免高溫對(duì)有效成分的破壞等特點(diǎn),對(duì)酚類等熱敏性物質(zhì),超聲提取優(yōu)勢(shì)尤為明顯[8]。大孔樹脂是一種常用有效的分離純化多酚物質(zhì)的方法[9],這種技術(shù)因?yàn)槌杀镜?、選擇性好、效率高、毒性小等特點(diǎn)而具有很好的應(yīng)用前景[10]。目前對(duì)玫瑰花的研究大多停留在玫瑰花精油[11]、黃酮[12]、多糖[13]、原花青素[14]的提取、生物活性等研究上,對(duì)可食用玫瑰花多酚經(jīng)大孔吸附樹脂純化前后的抗氧化活性研究尚未見報(bào)道。

因此,本文以盛產(chǎn)于云南昆明安寧市八街鎮(zhèn)的食用玫瑰(Rosachinensis‘An Ning Ba Jie’)為原料,采用超聲提取法提取其中的多酚,運(yùn)用正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化提取工藝,通過大孔樹脂作用于玫瑰花多酚類物質(zhì)的靜態(tài)吸附-解析研究,篩選純化多酚的理想樹脂,并對(duì)純化前后玫瑰多酚的抗氧化活性進(jìn)行研究,研究結(jié)果為有效開發(fā)利用食用玫瑰花多酚,發(fā)揮其最大經(jīng)濟(jì)效益提供科學(xué)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

食用玫瑰花 采自安寧市八街鎮(zhèn),經(jīng)冷凍干燥48 h,粉碎過40目篩后保存于-80 ℃冰箱備用;LSD-296、NKA-2、LSD-762、AB-8、HPD-TSD、XAD-7、HPD-100、XAD-16、NKA-9型大孔吸附樹脂 天津海光化工有限公司;DPPH、ABTS、TPTZ 美國Sigma公司;無水乙醇、甲醇 均為國產(chǎn)分析純;實(shí)驗(yàn)用水 均為超純水。

ZD-F12真空冷凍干燥機(jī) 南京載智自動(dòng)化設(shè)備有限公司;AL204型電子天平 梅特勒-托利多(上海)有限公司;SpectraMax M5 多功能酶標(biāo)儀 美國Molecular Devices公司;TDL-40B型離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;SCQ-數(shù)控加熱超聲波清洗機(jī) 上海聲彥超聲波儀器有限公司;UPHW-I-90T優(yōu)普系列超純水機(jī) 成都超純科技有限公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立 參照Folin-Ciocalteu法[15],在波長765 nm處使用多功能酶標(biāo)儀測(cè)定吸光值,以沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度為橫坐標(biāo)(X),對(duì)應(yīng)的吸光值為縱坐標(biāo)(Y),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

1.2.2 玫瑰花多酚的提取與測(cè)定 準(zhǔn)確稱取玫瑰花粉末1.00 g于燒杯中,在各因素考察條件下提取玫瑰花多酚,于50 Hz超聲波清洗機(jī)中,重復(fù)提取三次。將提取液在5000 r/min的離心機(jī)中離心分離15 min后取上清液定容至50 mL,即為玫瑰花多酚提取液。然后按照繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線步驟操作,測(cè)定樣品中的吸光值,按下式計(jì)算樣品:

式中:C:樣液中多酚的含量 μg/mL;V:樣液的體積 mL;W:玫瑰粉末質(zhì)量 g;N:稀釋倍數(shù)。

1.2.3 玫瑰花多酚提取的單因素實(shí)驗(yàn)

1.2.3.1 提取溶劑對(duì)多酚提取量的影響 在提取時(shí)間30 min,料液比1∶25 (g/mL),超聲溫度40 ℃條件下,考察不同溶劑乙醇、超純水、甲醇、丙酮對(duì)總多酚含量的影響。

1.2.3.2 乙醇濃度對(duì)多酚提取量的影響 在提取時(shí)間30 min,料液比1∶25 (g/mL),超聲溫度40 ℃條件下,考察乙醇濃度40%、50%、60%、70%、80%、90%對(duì)總多酚含量的影響。

1.2.3.3 提取次數(shù)對(duì)多酚提取量的影響 用70%乙醇在提取時(shí)間30 min,料液比1∶25 (g/mL),超聲溫度40 ℃條件下,分別考察提取次數(shù)1、2、3、4次對(duì)總多酚含量的影響。

1.2.3.4 料液比對(duì)多酚提取量的影響 在乙醇體積分?jǐn)?shù)70%,超聲溫度40 ℃、時(shí)間30 min條件下,分別考察料液比1∶15、1∶20、1∶25、1∶30、1∶35 (g/mL)對(duì)總多酚含量的影響。

1.2.3.5 提取溫度對(duì)多酚提取量的影響 在乙醇體積分?jǐn)?shù)70%,超聲30 min,料液比1∶25 (g/mL)條件下,分別考察溫度30、35、40、45、50 ℃對(duì)總多酚含量的影響。

1.2.3.6 提取時(shí)間對(duì)多酚提取量的影響 在乙醇體積分?jǐn)?shù)70%、料液比為1∶25 (g/mL)、超聲溫度40 ℃條件下,分別考察超聲10、20、30、40、50 min對(duì)總多酚含量的影響。

1.2.4 正交實(shí)驗(yàn) 在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選取提取次數(shù)、料液比、溫度、提取時(shí)間為影響因素,選用正交表L9(34)進(jìn)行實(shí)驗(yàn),正交實(shí)驗(yàn)因素與水平見表1。

表1 正交實(shí)驗(yàn)因素與水平Table 1 Factors and levels table of orthogonal experiment

1.2.5 大孔樹脂對(duì)多酚的純化工藝

1.2.5.1 大孔吸附樹脂預(yù)處理 取9種不同型號(hào)的適量大孔樹脂用95%乙醇浸泡24 h,待其充分溶脹后,用70%乙醇反復(fù)淋洗,至加超純水不渾濁后。用超純水沖洗至無乙醇味,將樹脂過濾,備用[16]。

1.2.5.2 樹脂的篩選 參照文獻(xiàn)[17]的方法,略有改動(dòng)。分別稱取不同型號(hào)濾干樹脂2.00 g置于30 mL錐形瓶中,分別加入20 mL多酚粗提液,置于120 r/min搖床,靜態(tài)吸附24 h,取上清液測(cè)定多酚含量,計(jì)算吸附率。取吸附飽和的樹脂,吸干其表面水分,加入70%乙醇溶液20 mL,靜態(tài)解析24 h,取上清液測(cè)定多酚含量,計(jì)算解析率。吸附率和解析率計(jì)算公式如下[18]:

式中:C0:提取液中玫瑰多酚的初始濃度(mg/g);C1:吸附平衡時(shí)多酚濃度(mg/g);C2:解析后乙醇洗脫液中的多酚濃度(mg/g);V1:上樣前體積(mL);V2:解析后體積(mL)。

1.2.5.3 吸附動(dòng)力學(xué)實(shí)驗(yàn) 取2.00 g濾干樹脂于20 mL玫瑰多酚提取液中,避光振蕩吸附(25 ℃、120 r/min),每1 h取溶液,測(cè)其多酚含量,計(jì)算吸附量。以時(shí)間為橫坐標(biāo),吸附量為縱坐標(biāo)繪制吸附動(dòng)力學(xué)曲線。吸附量公式如下:

式中:C0:提取液中玫瑰多酚的初始濃度(mg/g);C1:吸附平衡時(shí)多酚濃度(mg/g);V1:上樣前體積(mL)。

1.2.6 玫瑰多酚純化前后抗氧化實(shí)驗(yàn)

1.2.6.1 DPPH自由基清除實(shí)驗(yàn) 參照文獻(xiàn)[19]的方法,略作改動(dòng)。精確吸取0.4 mL不同濃度待測(cè)樣品,于5 mL離心管中,加入2.0 mL 0.1 mmol/L DPPH·反應(yīng)液,混勻,避光反應(yīng)30 min,在波長為517 nm處測(cè)吸光值,以無水乙醇做試劑空白,測(cè)定空白樣吸光值。玫瑰花多酚對(duì)DPPH自由基清除率按下式計(jì)算:

式中:A0:0.4 mL 無水乙醇+2.0 mL DPPH·溶液;A1:0.4 mL 樣品+2.0 mL 無水乙醇;A2:0.4 mL 樣品+2.0 mL DPPH·溶液。

1.2.6.2 ABTS自由基清除實(shí)驗(yàn) 參照文獻(xiàn)[20]的方法,略做改動(dòng)。取0.5 mL不同濃度的樣品與4.0 mL ABTS+工作液混勻,30 ℃水浴6 min,在波長734 nm處測(cè)吸光值,以無水乙醇做試劑空白,測(cè)定空白樣吸光值。ABTS自由基清除率按下式計(jì)算:

式中:A0:0.5 mL超純水+4.0 mL ABTS+·工作液;A1:0.5 mL樣品+4.0 mL乙醇;A2:0.5 mL樣品+4.0 mL ABTS+·工作液。

1.3 數(shù)據(jù)處理

2 結(jié)果與分析

2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線

以沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度為橫坐標(biāo)(X),對(duì)應(yīng)的吸光值為縱坐標(biāo)(Y),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得回歸方程為Y=56.438X+0.054,R2=0.9985。

2.2 單因素實(shí)驗(yàn)

2.2.1 提取溶劑對(duì)多酚提取量的影響 由圖1可知,不同溶劑對(duì)玫瑰花多酚含量有影響,用乙醇或甲醇提取玫瑰花多酚含量與用水或丙酮提取的含量差異顯著(p<0.05)。提取溶劑為乙醇時(shí),玫瑰多酚的提取率最高,其次是甲醇,從實(shí)際生產(chǎn)考慮乙醇毒性較小,廉價(jià),故選取乙醇作為提取溶劑。

圖1 溶劑種類對(duì)玫瑰花總多酚含量的影響Fig.1 Effect of solvent type on total polyphenol content from rose注:小寫字母不同表示總多酚含量差異顯著(p<0.05),圖2～圖6同。

2.2.2 乙醇濃度對(duì)多酚提取量的影響 由圖2可知,隨乙醇體積分?jǐn)?shù)的升高,多酚含量先增加后趨于平緩,這可能由于乙醇濃度低時(shí),無法破壞樣品中多酚類物質(zhì)與蛋白、多糖或其他物質(zhì)的連接,多酚得率低;隨著乙醇濃度的增加,多酚類物質(zhì)在乙醇溶液中的溶解度增加,但是乙醇體積分?jǐn)?shù)過高時(shí),脂溶性成分浸出較多,不利于多酚類物質(zhì)的提取[21]。再結(jié)合統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,乙醇濃度從70%往上增加,多酚提取量差異不顯著,故選擇70%乙醇作為提取劑。

圖2 乙醇濃度對(duì)玫瑰花總多酚含量的影響Fig.2 Effect of ethanol volume fraction on total polyphenol content from rose

2.2.3 提取次數(shù)對(duì)多酚提取量的影響 由圖3可知,隨著提取次數(shù)的增加,玫瑰多酚的提取率逐漸增加,多酚含量經(jīng)1、2、3次提取有顯著差異(p<0.05),但提取4次與提取3次差異不顯著(p>0.05)。從節(jié)省時(shí)間、溶劑、能源方面考慮,選取2次提取為正交實(shí)驗(yàn)的提取次數(shù)中心值。

圖3 提取次數(shù)對(duì)玫瑰花總多酚含量的影響Fig.3 Effect of extraction times on total polyphenol content from rose

2.2.4 料液比對(duì)多酚提取量的影響 由圖4可知,玫瑰花多酚含量隨料液比降低而升高。料液比為1∶15 (g/mL)時(shí),總酚含量為59.13 mg/g;當(dāng)料液比達(dá)到1∶30 (g/mL)時(shí),總酚含量為79.80 mg/g,顯著高于料液比1∶15 (g/mL)(p<0.05);此后再降低料液比,總酚含量增加不顯著(p>0.05),且料液比過小會(huì)為后續(xù)的濃縮操作帶來不便,故選取1∶30 (g/mL)為正交實(shí)驗(yàn)的料液比中心值。

圖4 料液比對(duì)玫瑰花總多酚含量的影響Fig.4 Effect of solid-to-liquid ratio on total polyphenol content from rose

2.2.5 提取溫度對(duì)多酚提取量的影響 由圖5可知,在30～45 ℃之間時(shí),隨著提取溫度的升高,多酚含量逐漸增加,差異顯著(p<0.05),這是因?yàn)樵黾訙囟瓤杉涌烊苜|(zhì)中多酚的擴(kuò)散速率,酚類物質(zhì)更容易從原料中提取出來[19]。在45 ℃以后,多酚含量降低,無顯著差異,這可能是由于溫度過高,熱不穩(wěn)定性、揮發(fā)性成分易被破壞、揮發(fā),使得提取量降低。故選取45 ℃為正交實(shí)驗(yàn)的提取溫度中心值。

圖5 溫度對(duì)玫瑰花總多酚含量的影響Fig.5 Effect of temperature on total polyphenol content from rose

圖6 提取時(shí)間對(duì)玫瑰花總多酚含量的影響Fig.6 Effect of extraction time on total polyphenol content from rose

2.2.6 提取時(shí)間對(duì)多酚提取量的影響 由圖6可知,當(dāng)提取時(shí)間為10～30 min,總酚含量隨時(shí)間延長而提高,差異極顯著(p<0.01),此后再延長提取時(shí)間,總酚含量有所減少,差異顯著(p<0.05),這可能是玫瑰中的其他醇溶性成分溶出,多酚可能會(huì)分解掉。故選取30 min為正交實(shí)驗(yàn)的提取時(shí)間中心值。

2.3 玫瑰多酚提取工藝的正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析

在單因素分析的基礎(chǔ)上,提取次數(shù)、料液比、溫度、時(shí)間4個(gè)因素,選用正交表L9(34)進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn),實(shí)驗(yàn)結(jié)果如表2所示。

表2 正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 2 Results of the orthogonal experiment

由表2可知,經(jīng)過均值和極差分析與比較,在選定范圍內(nèi),玫瑰花總多酚提取影響因素的主次關(guān)系分別為C(溫度)>D(時(shí)間)>A(次數(shù))>B(料液比)。最優(yōu)因素組合為C1D3A3B1,即溫度40 ℃、提取時(shí)間40 min、提取3次、料液比1∶25 (g/mL)時(shí)為最佳提取條件。進(jìn)一步由表3的方差分析結(jié)果可知,溫度對(duì)玫瑰花總多酚含量有顯著性影響,而時(shí)間、提取次數(shù)和料液比對(duì)該過程無顯著性影響。

表3 正交實(shí)驗(yàn)方差分析表Table 3 Variance analysis of the orthogonal experiment

注:F0.01(2,8)=19.37,F0.05(2,8)=9.37;當(dāng)F>F0.05時(shí),差異顯著,用*表示。

2.4 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)

因最佳因素組合為C1D3A3B1,不在正交表中,所以需要對(duì)最佳因素進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),即精確稱取玫瑰花粉末1.00 g,以1∶25 (g/mL)的料液比加入70%乙醇、40 ℃條件下超聲提取3次,每次40 min,得到玫瑰花多酚的含量為92.38、95.42、93.63 mg/g,平均多酚含量為93.81 mg/g,RSD值為1.53 mg/g,可以看出該工藝比較穩(wěn)定,可達(dá)到優(yōu)化的目的,結(jié)果與文獻(xiàn)[22]報(bào)道的接近。

2.5 純化工藝

大孔吸附樹脂被廣泛用于多酚類物質(zhì)的分離與富集[23],但其吸附性能及其解析、純化條件參數(shù)因所分離物質(zhì)的理化性質(zhì)不同而不同[24]。由圖7可知,通過9種樹脂靜態(tài)吸附及解析性能比較,XAD-7和XAD-16型樹脂對(duì)玫瑰多酚均具有較高的吸附率和解析率,且無顯著差異。還需通過吸附動(dòng)力學(xué)實(shí)驗(yàn),進(jìn)一步篩選理想的樹脂。

圖7 大孔樹脂的吸附及解析性能Fig.7 Macroporous resin adsorption and analytical properties注:大寫字母不同表示吸附率差異顯著(p<0.05);小寫字母不同表示解析率差異顯著(p<0.05)。

由圖8可知,XAD-16型樹脂在起始階段吸附量較小,在8 h達(dá)到吸附平衡;XAD-7型樹脂在1～7 h內(nèi),隨著時(shí)間增加,樹脂對(duì)玫瑰多酚的吸附量逐漸增大,差異顯著(p<0.05),在5 h達(dá)到吸附平衡,無顯著差異。綜上,對(duì)比XAD-7和XAD-16型樹脂的吸附量性能,選擇XAD-7型樹脂對(duì)玫瑰花多酚進(jìn)行純化。

圖8 大孔樹脂靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線Fig.8 Static adsorption kinetics curve of macroporous resin

2.6 純化前后玫瑰花多酚抗氧化活性的測(cè)定

2.6.1 純化前后玫瑰花多酚對(duì)DPPH自由基的清除效果 DPPH自由基是一種穩(wěn)定的自由基,能接受電子或氫自由基,形成穩(wěn)定的反磁性分子,抗氧化劑對(duì)DPPH自由基的清除原理,是基于它的供氫能力[25]。由圖9可知,隨著多酚濃度的增加,其DPPH自由基清除率不斷升高,差異顯著(p<0.05)。在相同濃度下,純化后多酚較純化前對(duì)DPPH自由基的清除能力強(qiáng)。純化前后玫瑰花多酚對(duì)DPPH自由基清除能力IC50值分別為209.27 μg/mL和96.30 μg/mL,說明經(jīng)XAD-7大孔樹脂純化后的玫瑰花多酚對(duì)DPPH自由基的清除能力強(qiáng)于粗多酚,這可能是因?yàn)榻?jīng)XAD-7大孔樹脂處理后玫瑰花多酚得到純化和富集[22]。

圖9 多酚純化前后對(duì)DPPH自由基的清除效果Fig.9 Removal of DPPH free radicals before and after polyphenol purification

2.6.2 純化前后玫瑰花多酚對(duì)ABTS+自由基的清除效果 藍(lán)綠色的ABTS+自由基穩(wěn)定性高,當(dāng)存在具有供氫能力的抗氧化劑時(shí),可使其還原成無色的ABTS,根據(jù)ABTS+自由基溶液前后吸光度的變化可測(cè)定樣品的抗氧化能力[26]。由圖10可知,隨著多酚濃度的增加,其ABTS+自由基清除率不斷升高,差異顯著(p<0.05)。在相同濃度下,純化后多酚對(duì)ABTS+自由基的清除能力均強(qiáng)于粗多酚,與DPPH自由基的清除結(jié)果一致。純化前后玫瑰花多酚對(duì)ABTS自由基清除能力IC50值分別為505.67 μg/mL和378.09 μg/mL,說明純化后的玫瑰花多酚具有較強(qiáng)的清除ABTS自由基的能力。

圖10 多酚純化前后對(duì)ABTS+自由基的清除效果Fig.10 Removal of ABTS+ free radicals before and after polyphenol purification

3 結(jié)論

通過單因素實(shí)驗(yàn)和正交實(shí)驗(yàn),確定提取玫瑰花總酚的最佳工藝條件為:70%乙醇超聲提取,提取時(shí)間40 min,提取3次,料液比1∶25 (g/mL),溫度40 ℃,在此條件下總酚含量為93.81 mg/g。利用XAD-7型樹脂對(duì)玫瑰花總酚進(jìn)行分離純化,再對(duì)純化前后多酚提取液進(jìn)行抗氧化實(shí)驗(yàn)。結(jié)果表明:純化前對(duì)DPPH自由基和ABTS自由基清除能力IC50值分別為209.27 μg/mL和505.67 μg/mL;純化后分別為96.30 μg/mL和378.09 μg/mL,說明超聲提取的玫瑰花多酚經(jīng)XAD-7型大孔樹脂處理后,對(duì)DPPH、ABTS自由基清除能力均有所提高。這將為可食用玫瑰花在食品、保健品行業(yè)的深入開發(fā)提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。

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Studyonultrasonicextractionoftotalphenolfromedibleroseandantioxidantactivityofmacroporousresinbeforeandafterpurification

JIANGMeng-jun1,WANGYi2,RENJian-qing2,YEYu2,CHENGGui-guang1,ZHAOTian-rui1,CAOJian-xin1,*

(1.Yunnan Institute of Food Safety,Kunming University of Science and Technology,Kunming 650500,China;2.Kunming Academy of Agricultural Sciences,Kunming 650231,China)

Rosachinensis‘An Ning Ba Jie’ as the raw material,the extraction process of polyphenol and the antioxidant activity before and after purification were studied. The extraction temperature were identified as main factor that influence extraction efficiency. The optimum conditions for the ultrasonic extraction of polyphenols from rose were found to be with 70% ethanol at solid-to-liquid ratio 1∶25 (g/mL)for 40 min with ultrasonic temperature 40 ℃with extraction three times. Under these conditions,the extraction of total phenol was 93.81 mg/g. The XAD-7 resin was found to be the ideal resin for the purification of phenolics from rose by comparing the static adsorption and analytical properties of nine resins. Before purification of DPPH and ABTS free radical scavengingIC50values were 209.27 μg/mL and 505.67 μg/mL,after purification,they were 96.30 μg/mL and 378.09 μg/mL,respectively. The results showed that rose polyphenols could enhance their antioxidant activity after purification by XAD-7 macroporous resin.

edible rose;polyphenols;extraction technology;macroporous resin purification;antioxidative activity

2017-06-03

蔣孟君(1994-)，女，碩士研究生，研究方向：天然藥物化學(xué)，E-mail:jiangmj0327@163.com。

*通訊作者:曹建新(1969-)，女，博士，教授，研究方向：天然藥物化學(xué)，E-mail:jxcao321@hotmail.com。

國家自然科學(xué)基金( 31600274，31460083)；昆明安寧八街食用玫瑰成分分析(KKF0201562034)。

TS201.1

B

1002-0306(2017)23-0164-06

10.13386/j.issn1002-0306.2017.23.031