亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        飼料中適宜含量鐵對建鯉魚糜凍藏品質(zhì)變化及組織蛋白酶B/L的影響

        2017-09-22 05:43:09李冉鐘海霞李樹紅楊娟胡強柯勤勤白稚子林靈李美良
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2017年8期
        關(guān)鍵詞:魚糜鯉魚蛋白酶

        李冉,鐘海霞,李樹紅,楊娟,胡強,柯勤勤,白稚子,林靈,李美良

        (四川農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品學(xué)院,四川 雅安,625014)

        飼料中適宜含量鐵對建鯉魚糜凍藏品質(zhì)變化及組織蛋白酶B/L的影響

        李冉,鐘海霞,李樹紅*,楊娟,胡強,柯勤勤,白稚子,林靈,李美良

        (四川農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品學(xué)院,四川 雅安,625014)

        對經(jīng)過不同鐵含量的飼料(缺乏組53.9 mg/kg,適宜組146.1 mg/kg)飼喂90 d后的建鯉,取魚肉加工為魚糜,于-20 ℃條件下進行凍藏實驗,取樣點為0、1、2、4、6周,測定魚糜凍藏品質(zhì)指標的變化,包括Ca2+-ATPase活性、總巰基、二硫鍵、表面疏水性、TBA值;魚糜凍藏期間組織蛋白酶B、組織蛋白酶L活性采用熒光合成肽底物法進行測定。結(jié)果表明,適宜含量鐵能極顯著提高魚糜肌動球蛋白初始Ca2+-ATPase活性、總巰基含量(p<0.01),降低二硫鍵含量(0.01

        鐵;建鯉;魚糜;凍藏品質(zhì);組織蛋白酶B/L

        建鯉(CyprlnuscarpiovarJian)是由中國水產(chǎn)科學(xué)研究院淡水漁業(yè)研究中心人工育成的水產(chǎn)良種[1],具有生長快、體型優(yōu)、遺傳性狀穩(wěn)定、肉質(zhì)肉味好、適應(yīng)性和抗病力強等特點,適合全國各地多種方式養(yǎng)殖,目前已成為我國鯉魚養(yǎng)殖的主導(dǎo)品種。建鯉精深加工前景十分看好,是一種理想的水產(chǎn)食品加工原材料。

        冷凍魚糜的加工是提高水產(chǎn)品經(jīng)濟附加值的有效途徑之一,且對于保持魚糜制品原料新鮮度、營養(yǎng)價值也是一種有效的方法。2015年,我國魚糜產(chǎn)量達到了1.45×106t,魚糜及其制品行業(yè)產(chǎn)值規(guī)模已經(jīng)超過了200億元[2],具有較好的發(fā)展前景。肌動球蛋白是形成魚糜凝膠網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)的重要蛋白,然而在魚糜凍藏過程中,其易發(fā)生變性而導(dǎo)致物理、化學(xué)特性發(fā)生改變[3],由此導(dǎo)致魚糜制品的凝膠性能、彈性品質(zhì)的劣變[4]。此外,脂質(zhì)氧化次級產(chǎn)物也可引發(fā)肌動球蛋白氧化變性[4-5]。目前,國內(nèi)外關(guān)于魚肉或魚糜中蛋白質(zhì)在冷凍過程中的變性及防止方法研究較為深入,對凍藏期間物理或生化特性變化的研究也比較充分,但其目的主要集中在凍藏溫度條件的選擇或魚種凍藏穩(wěn)定性的比較方面[6-8],而從調(diào)節(jié)飼料中營養(yǎng)素含量與提高凍藏品質(zhì)的關(guān)系這個角度進行的研究,尚十分缺乏。

        鐵作為生命體必須的一種微量元素,不僅是血紅蛋白和肌紅蛋白的重要組成成分,還參與了機體許多重要的生理[9-11]、病理[12]過程。飼料中適宜的鐵含量,對于維持魚類正常生理代謝同樣必不可少。已有研究表明,飼料中添加適宜含量的鐵,可以促進羅非魚[13]、斑點叉尾鮰[14]、真鯛[15]等魚類的生長發(fā)育,提高經(jīng)濟效益。團隊前期研究工作中,已經(jīng)確定建鯉養(yǎng)殖過程中的最適宜鐵需要量為147.4 mg/kg飼料(以血清鐵為標示)[16]。但飼料中鐵的含量對建鯉魚肉品質(zhì)或魚糜品質(zhì)的影響尚未見報道。魚糜加工制品的品質(zhì)在很大程度上取決于原料魚糜的品質(zhì),探討經(jīng)不同含量鐵處理后的建鯉魚肉加工為魚糜后在凍藏期間的品質(zhì)變化情況,對于實際生產(chǎn)具有一定指導(dǎo)意義。

        研究表明,內(nèi)源性組織蛋白酶B(Cathepsin B,CAT B)及組織蛋白酶L(Cathepsin L,CAT L)是引起魚糜凝膠軟化的關(guān)鍵性蛋白酶,能夠引起肌動球蛋白重鏈的水解[17],導(dǎo)致魚糜制品質(zhì)構(gòu)品質(zhì)劣變。CAT B/L在漂洗后的魚糜[17]及魚糜的凍藏期間[18]仍殘留顯著的活性,這對后續(xù)的魚糜制品加工過程十分不利。因此,如何從魚糜原料角度降低CAT B/L的活性殘留是實際生產(chǎn)中亟待解決的問題之一。

        本文擬以適宜鐵含量(146.1 mg/kg)飼料飼喂后的建鯉為研究對象,同時與鐵缺乏含量(53.9 mg/kg)下飼喂的建鯉進行魚糜凍藏品質(zhì)變化、CAT B/L活性變化的比較。結(jié)果從產(chǎn)品品質(zhì)角度,更全面地評價該鐵含量(147.4 mg/kg)對建鯉的適宜性,具有補充意義。以期為實際生產(chǎn)中,合理調(diào)整飼料中鐵的添加量,獲得品質(zhì)更好的水產(chǎn)食品加工原料,提供科學(xué)依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1材料與試劑

        1.1.1 動物性實驗材料

        建鯉及采樣:以鐵含量為146.1 mg/kg(適宜組)及53.9 mg/kg(缺乏組)的半純合飼料飼喂90 d的建鯉(初始體重分別為(11.34±0.94)g及(11.37±0.91)g,采樣時體重分別為(148.10±24.69)g及(222.32±34.52)g),由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動物營養(yǎng)所水生動物飼料與營養(yǎng)實驗室飼養(yǎng)并提供。其飼料配方組成、飼料鐵含量測定及飼養(yǎng)過程參見凌娟[16]的方法。飼養(yǎng)時每個處理組3個重復(fù),每個重復(fù)50尾,即每個處理組150尾。飼養(yǎng)結(jié)束后,每組隨機采樣30尾魚。用3%的烏來糖麻醉后處死,去除內(nèi)臟,10 ℃以下自來水清洗,用于后續(xù)魚糜樣品制備。

        1.1.2 魚糜樣品的制備

        建鯉魚糜的制備參考陳秀華等[19]的方法,在4 ℃條件下進行。采肉:去皮、去除紅肉,取背部的白肉,充分絞碎至3~6 mm3;漂洗:將魚肉糜與5倍體積的4 ℃去離子水混合,緩慢攪拌10 min,使水溶性蛋白等成分充分溶出,靜置8~10 min使魚肉充分沉淀,傾去漂洗液,再用冷卻水先后漂洗兩次,最后一次用0.15%食鹽水漂洗;離心脫水:7 000 r/min,4 ℃離心15 min。

        1.1.3 主要試劑

        烏來糖、馬來酸、尿素、三氯乙酸(TCA),成都科龍化工試劑有限公司;ATP·Na2、8-苯胺基-1-奈磺(ANS)、Z-Arg-Arg-AMC、Z-Phe-Arg-AMC,美國Sigma公司;硫代巴比妥酸(TBA),上海Amresco公司;硫酸P-甲胺酚(Elon試劑),上海創(chuàng)賽科技有限公司;5,5’-二硫代-雙-2-硝基苯甲酸(DTNB),上海源葉生物科技有限公司。

        1.2儀器與設(shè)備

        Sorvall ST 16 ST16R高速冷凍離心機、Varioskan Flash熒光酶標儀,美國Thermo Fisher公司;BT124S萬分之一電子天平,德國Sartorius公司;V-1100可見分光光度計,上海美譜達儀器有限公司;DY89-II電動玻璃勻漿機,寧波新芝生物科技有限公司;Scientz-IID超聲波細胞粉碎機,蘇州江東精密儀器有限公司。

        1.3實驗方法

        1.3.1 魚糜凍藏點設(shè)計及取樣

        設(shè)計凍藏取樣點為0、1、2、4、6周。將已經(jīng)制備好的適宜組和缺乏組魚糜樣品均分成5份,用聚乙烯食品包裝袋分裝后,液氮速凍,然后于-20℃進行凍藏實驗。根據(jù)設(shè)計的取樣時間取樣,于4 ℃下自然解凍,進行凍藏品質(zhì)指標變化、CAT B/L活性變化的測定。

        1.3.2 建鯉魚糜凍藏期間的凍藏品質(zhì)指標測定

        根據(jù)BENJAKUL等[20]的方法,測定凍藏期間2個處理組魚糜肌動球蛋白的穩(wěn)定性指標,主要包括Ca2+-ATPase活性(Ca2+-ATPase activity,CA)、總巰基含量(total sulfhydryl content,TSH content)、二硫鍵含量(disulfide bonds content,DB content)、蛋白表面疏水性(protein surface hydrophobicity,PSH),以及凍藏期間魚糜脂肪氧化指標硫代巴比妥酸值(thiobarbituric acid,TBA),用于判斷魚糜的凍藏品質(zhì)。所有指標均重復(fù)測定3次。

        1.3.2.1 魚糜肌動球蛋白的提取

        參考BENJAKUL等[21]的方法提取魚糜中的肌動球蛋白。

        1.3.2.2 肌動球蛋白CA活性測定

        參考BENJAKUL等[20]的方法,有所改動。將提取的肌動球蛋白用0.6 mol/mL KCl(pH=7.0)稀釋至4 mg/mL,按如下10 mL反應(yīng)體系進行酶反應(yīng):1 mL稀釋酶液,0.6 mL緩沖液(含0.5 mol/mL Tris-馬來酸,pH=7.0),7.9 mL 10 mmol/mL CaCl2,加入0.5 mL的20 mmol/mL ATP啟動反應(yīng),25 ℃反應(yīng)5 min后加15% TCA 5 mL終止反應(yīng)。空白先加入TCA,再加ATP。

        各混合液于3 500 g離心5 min。取1 mL上清液加入1 mL硫酸鉬酸,0.5 mL Elon試劑,2.5 mL水,攪拌后在室溫下發(fā)色45 min,640 nm測吸光度。一個CA活力單位定義為25 ℃下每毫克蛋白質(zhì)在1 min內(nèi)水解底物并產(chǎn)生的無機磷的微摩爾數(shù)(μmol Pi/(min·mg)。

        1.3.2.3 肌動球蛋白PSH測定

        參考BENJAKUL等[20]的方法進行PSH測定。將制備的肌動球蛋白用10 mmol/L 磷酸緩沖液(含0.6 mol/mL NaCl,pH=6.0)稀釋成0.025%,0.05%,0.1%,0.15%,0.2%,0.25%(w/v)的濃度。取各濃度下的肌動球蛋白稀釋液1 mL,于20 ℃靜置10 min,然后加入5 μL的8 mmol/mL ANS(溶于0.1 mol/mL磷酸緩沖液,pH=7.0)。用熒光分光光度計測定ANS-蛋白共聚物的相對熒光強度,激發(fā)波長374 nm,發(fā)射波長485 nm。PSH 指數(shù)為測得的熒光強度對蛋白質(zhì)量濃度繪制線性回歸曲線的最初曲線斜率值。

        1.3.2.4 肌動球蛋白TSH含量測定

        參考BENJAKUL等[20]的方法進行TSH含量測定。向1 mL的0.4%的肌動球蛋白中,加入9 mL 0.2 mol/mL Tris-HCl緩沖液(含8 mol/mL尿素,2% SDS,10 mmol/mL EDTA,pH=6.8)。取4 mL該混合液,加入0.4 mL 0.1%的DTNB溶液(含0.2 mol/mL的Tris-HCl緩沖液,pH=8.0溶解),40 ℃水浴25 min。于412 nm下測定吸光值,空白用1 mL的0.6 mol/mL KCl (pH=7.0)替代1 mL的0.4%的肌動球蛋白樣品。

        TSH含量按以下公式計算:

        (1)

        總SH含量/(μmol·g-1protein)=總SH摩爾濃度/ρ

        (2)

        式中:A412,412 nm波長處的吸光度;n稀釋倍數(shù);ε,摩爾吸光系數(shù)13 600 L/(mol·cm);ρ,蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度。

        1.3.2.5 肌動球蛋白DB含量測定

        根據(jù)THANNHAUSER等[22]的方法,制備NTSB溶液,使用時稀釋100倍。根據(jù)BENJAKUL等[20]的方法,將肌動球蛋白稀釋為1 mg/mL,取0.5 mL加入新鮮NTSB溶液3 mL,在25 ℃下暗反應(yīng)25 min后,測定A412吸光值,空白用水代替肌動球蛋白。

        DB含量按以下公式計算:

        (3)

        二硫鍵含量/(μmol·g-1protein)=0.5 mL×二硫鍵摩爾濃度/0.5 mL×ρ

        (4)

        式中:A412,412 nm波長處的吸光度;n,稀釋倍數(shù);ε,摩爾吸光系數(shù)13 900 L/(mol·cm);ρ,蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度。

        1.3.2.6 建鯉魚糜脂肪氧化TBA值測定

        參考陳慧斌等[23]的方法,采用硫代巴比妥酸法測定魚糜中脂肪氧化產(chǎn)生丙二醛量。

        計算公式為:

        (5)

        式中:A,532 nm波長處與600 nm波長吸光值的差值;W,肉樣質(zhì)量。

        1.3.3 建鯉魚糜凍藏期間的CAT B/L活性變化測定

        2個處理組魚糜CAT B/L的粗提液制備參考LI等[24]和BARRETT等[25]的方法。CAT B/L活性的測定基本參照BARRETT等[25]的方法,分別以熒光合成肽Z-Arg-Arg-AMC和Z-Phe-Arg-AMC為底物,采用酶標儀于激發(fā)波長380 nm,發(fā)射波長460 nm下測定粗提液中CAT B/L的活性。

        1個酶活單位定義為在反應(yīng)條件下,能夠在1 min內(nèi)水解底物并釋放出1 nmol AMC產(chǎn)物的酶活性量(1 nmol AMC/min)。

        1.4數(shù)據(jù)處理及統(tǒng)計分析

        采用SPSS 22.0數(shù)學(xué)軟件進行統(tǒng)計分析,計算各指標的平均值和標準差,采用One-Way ANOVA法進行差異顯著性分析。p>0.05表示差異不顯著,0.01

        2 結(jié)果與分析

        2.1飼料中適宜含量鐵對建鯉魚糜凍藏品質(zhì)的影響

        2.1.1 凍藏期間魚糜肌動球蛋白CA活性變化

        由如圖1可知,凍藏期間CA活性整體呈下降趨勢,且在凍藏開始時適宜組CA活性極顯著(p<0.01)高于缺乏組。適宜組各凍藏點CA活性均極顯著(p<0.01)高于缺乏組,且與凍藏初期相比,6周時適宜組和缺乏組CA活性分別下降了60%、67%,說明飼料中適宜含量的營養(yǎng)素鐵能減緩CA活性下降。

        肌動球蛋白重鏈頭部具有CA活性區(qū)域,包含2個活性巰基,在蛋白氧化時巰基氧化交聯(lián)成二硫鍵,導(dǎo)致活性區(qū)域構(gòu)象改變[26]。因此,在整個貯藏過程中,CA活性下降反映了肌動球蛋白的結(jié)構(gòu)破壞及蛋白氧化程度增加。SCOTTAL[27]和JIANG等[28]研究阿拉斯加狹鱈(Theragrachalcogramma)魚糜和鯖魚(Pneumatophorusjaponicus)魚糜、鰤魚(Seriolaquinqueradiata)魚糜在凍藏中CA活性均呈下降趨勢。劉藝杰等[29]研究發(fā)現(xiàn)鳙魚魚糜在-20 ℃凍藏20周后CA活性下降至新鮮樣品的64.1%。本研究的結(jié)果與此相似,但適宜含量營養(yǎng)素鐵提高了建鯉魚糜的初始CA活性,且在一定程度上減緩了其下降速度,這可能與鐵在動物機體抗氧化方面的顯著作用有關(guān)。前期研究結(jié)果表明,飼料中添加適宜含量的鐵,可增強建鯉抗氧化酶系統(tǒng)及非酶抗氧化系統(tǒng)的防御能力[16],而原料肉被加工成魚糜后,鐵可能在一定程度上對于CA活性區(qū)域的氧化起到了一定的保護作用。ZHANG等[30]研究也發(fā)現(xiàn)飼料中營養(yǎng)素鐵能極顯著降低草魚肌肉中的蛋白羰基(PC)含量,增強機體和組織中主要的抗氧化能力。

        圖1 兩個處理組建鯉魚糜凍藏期間CA活性變化Fig.1 Changes in Ca2+-ATPase activity of Jian carp surimi in each group during frozen storage注:缺乏組和適宜組間進行方差分析,*表示差異顯著(0.010.05);缺乏組內(nèi)、適宜組內(nèi)分別進行方差分析,各數(shù)據(jù)點上標記的小寫和大寫字母分別代表0.05和0.01水平上的差異。下同。

        2.1.2 凍藏期間魚糜TSH含量和DB含量變化

        巰基是蛋白質(zhì)中最具反應(yīng)活性的功能性基團,其在冷藏、凍藏或冷凍解凍過程中易發(fā)生氧化或二硫鍵交換而引起含量下降,因此通過測定TSH在整個凍藏過程中含量的變化可以反映出蛋白質(zhì)的變性程度[31]。此外,魚糜蛋白 TSH 含量與魚糜凝膠強度呈顯著正相關(guān)[4],因此TSH 的含量可作為評定魚糜貯藏品質(zhì)的重要指標之一。研究還發(fā)現(xiàn),TSH含量下降會導(dǎo)致DB含量呈現(xiàn)上升的趨勢[32],兩者存在一定相關(guān)性。

        營養(yǎng)素鐵對建鯉魚糜凍藏期間TSH含量影響如圖2所示,隨著凍藏時間的增加,魚糜蛋白的巰基氧化程度不斷上升,TSH含量逐漸下降,但適宜組含量均極顯著(p<0.01)高于缺乏組。與凍藏初期相比,6周時適宜組和缺乏組TSH含量分別下降了23%、47%。由此可以推斷,適宜含量營養(yǎng)素鐵對于建鯉魚糜凍藏過程中的蛋白巰基氧化損失具有保護作用,這與鐵的抗氧化性對凍藏過程中魚糜蛋白CA活性的作用效果基本一致。綜合兩者結(jié)果,可以得出適宜含量鐵對維持凍藏期間魚糜蛋白的穩(wěn)定性具有正面效果。

        圖2 兩個處理組建鯉魚糜凍藏期間TSH含量變化Fig.2 Changes in total sulfhydryl content of Jian carp surimi in each group during frozen storage

        相應(yīng)地,對應(yīng)TSH含量的降低,2個處理組魚糜凍藏期間DB含量總體呈現(xiàn)上升趨勢(圖3),除0周、2周外(0.01

        圖3 兩個處理組建鯉魚糜凍藏期間DB含量的變化Fig.3 Changes in disulfide bond content of Jian carp surimi in each group during frozen storage

        2.1.3 凍藏期間魚糜蛋白PSH變化

        由于凍藏期間魚糜蛋白發(fā)生變性,可引起蛋白質(zhì)PSH增加的連鎖效應(yīng),這是由于蛋白質(zhì)變性使蛋白質(zhì)分子內(nèi)部的疏水性基團暴露,導(dǎo)致表面疏水性增加[4]。而疏水基團的相互作用是維持蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性的重要作用力,疏水作用對蛋白質(zhì)穩(wěn)定性、構(gòu)象和蛋白質(zhì)功能特性具有重要意義[33]。

        建鯉魚糜凍藏過程中適宜組及缺乏組PSH 變化如圖 4 所示,BENJAKUL等[20-21]研究發(fā)現(xiàn),在-18 ℃凍藏過程中,魚肉蛋白的PSH均隨著凍藏時間的延長而顯著增加。本研究中,得到相似的PSH增加趨勢,即相對于凍藏初始點,6周時適宜組、缺乏組的PSH分別上升了254%、124%,但0周、2周、6周時,適宜組PSH均極顯著(p<0.01)低于缺乏組。魚糜蛋白凍藏期間PSH的上升,會導(dǎo)致魚糜制品保水性下降,從而導(dǎo)致彈性和凝膠強度下降[24]。飼料中添加適宜含量鐵有效降低了魚糜的初始PSH,并在一定程度上減緩了蛋白質(zhì)PSH的增加,說明其對改善建鯉魚糜的凍藏品質(zhì)具有促進作用。

        圖4 兩個處理組建鯉魚糜凍藏期間PSH的變化Fig.4 Changes in protein surface hydrophobicity of Jian carp surimi in each group during frozen storage

        2.1.4 凍藏期間魚糜TBA值變化

        如圖5所示,凍藏0周、1周時,適宜組TBA值稍高于缺乏組。而凍藏2、4、6周時,適宜組TBA值均極顯著(p<0.01)低于缺乏組,缺乏組TBA值呈現(xiàn)極顯著(p<0.01)上升。凍藏6周后,缺乏組和適宜組TBA值分別上升264%、143%。TBA值是測定脂肪氧化的主要指標之一,在凍藏過程中會逐漸增大,陳慧斌等[23]、包建強等[34]分別報道了牡蠣、金槍魚在凍藏期間TBA值呈上升趨勢。而脂肪氧化次級產(chǎn)物可引發(fā)肌原纖維蛋白或肌動球蛋白的氧化,進而導(dǎo)致結(jié)構(gòu)和功能改變[35],同時ARMENTEROS等[36]研究發(fā)現(xiàn),脂質(zhì)氧化和蛋白氧化之間呈正相關(guān),二者適時的相互作用。因此,脂質(zhì)氧化亦可能影響魚糜蛋白的穩(wěn)定性,進而會加速貯藏過程中魚糜品質(zhì)的下降。因此推測,由于適宜組建鯉魚糜TBA值較低,因此其魚糜蛋白的氧化速度會相應(yīng)減弱,更有利魚糜加工制品的品質(zhì)。

        圖5 兩個處理組建鯉魚糜凍藏期間TBA值的變化Fig.5 Changes in TBA value of Jian carp surimi in each group during frozen storage

        本研究表明,飼料中適宜含量營養(yǎng)素鐵在降低凍藏過程中魚糜脂肪氧化程度方面具有一定作用,凍藏后期,由于鐵的抗氧化作用,使得適宜組魚糜TBA值與缺乏組差異越來越大。該結(jié)果與凌娟[16]的前期研究結(jié)果一致,即:鐵能夠極顯著地降低幼建鯉肌肉組織中丙二醛(MDA)含量,其能通過減少幼建鯉脂質(zhì)過氧化毒性產(chǎn)物丙二醛的含量來提高細胞的抗氧化能力。

        2.2飼料中適宜含量鐵對建鯉魚糜凍藏期間CATB/L活性變化的影響

        飼料中適宜含量鐵對建鯉魚糜在凍藏期間,CAT B與CAT L活性的影響分別見圖6-A、圖6-B。由圖可知,在凍藏0周即凍藏開始之前,CAT B/L活性在漂洗后的魚糜中仍存在殘留,且適宜組CAT B和CAT L初始活性均極顯著地低于缺乏組(p<0.01)。隨著凍藏時間的延長,組織蛋白酶發(fā)生不同程度的降解,表現(xiàn)為適宜組和缺乏組CAT B/L活性均總體呈現(xiàn)下降趨勢。通過各凍藏點活性的差異顯著性比較,可較為直觀地看出,CAT L的下降趨勢更為劇烈,而CAT B的下降趨勢更為平緩。凍藏6周后,適宜組與缺乏組CAT B的活性分別下降了62%、78%,且最終的活性差異不顯著(p>0.05);而適宜組與缺乏組CAT L的活性則分別下降了61%、45%,最終的活性差異極顯著(p<0.01)。以上結(jié)果表明,飼料中添加適宜含量鐵能有效降低魚糜的初始CAT B/L活性,且能夠促進魚糜凍藏期間CAT L活性的迅速下降,而對CAT B活性下降的促進作用不明顯。

        圖6 兩個處理組建鯉魚糜凍藏期間CAT B/L活性的變化Fig.6 Changes in CAT B/L activities of Jian carp surimi in each group during frozen storage

        CAT B/L活性、表達量可影響魚類胚胎發(fā)育[37]、免疫功能[38],進而影響到魚類生長及肉質(zhì)形成。在食品方面,魚肉質(zhì)地柔軟,且魚死后的自溶速度明顯快于畜禽動物。而魚類肌肉中組織蛋白酶是參與死后自溶,破壞肌肉結(jié)構(gòu)完整性的主要蛋白酶類[39]。不同于畜禽肉類,魚肉及其制品保持原有的硬度質(zhì)構(gòu)特性是十分重要,在加工過程中的“嫩化”對于生產(chǎn)者和消費者都是不需要的。對鯉魚魚糜的研究表明,魚糜中添加CAT L后魚糜凝膠強度顯著下降了24.33%[40]。鯖魚魚糜于-40 ℃凍藏8周后,CAT B和CAT L仍然均殘留80%左右的活性[18]。因此,降低或抑制魚糜中組織蛋白酶的殘留活性,有利于魚糜制品貯藏穩(wěn)定性及質(zhì)構(gòu)品質(zhì)的保持。本研究中,建鯉魚糜在漂洗后仍然存在不同程度地CAT B/L活性殘留,在凍藏過程中,飼料中添加適宜含量的鐵又對CAT B/L的活性降低具有一定促進、調(diào)節(jié)作用,這對于建鯉魚糜凍藏品質(zhì)具有正面效果,但該調(diào)節(jié)機制尚需進一步研究。

        綜上所述,組織蛋白酶活性與魚糜制品品質(zhì)及魚死后肉質(zhì)軟化密切相關(guān),會影響魚類死后及貯藏過程中的魚肉及魚糜品質(zhì)。而通過營養(yǎng)素調(diào)控,調(diào)節(jié)魚肌肉組織中組織蛋白酶的活性,對從飼養(yǎng)源頭控制魚肉及加工制品品質(zhì),具有重要的研究意義。

        3 結(jié)論

        相對于缺乏組(53.9 mg/kg),飼料中添加適宜含量的營養(yǎng)素鐵(146.1 mg/kg),可在建鯉魚糜凍藏期間,保持與魚糜凍藏品質(zhì)、質(zhì)構(gòu)品質(zhì)緊密相關(guān)的肌動球蛋白穩(wěn)定性,并能有效降低凍藏期間脂肪氧化產(chǎn)物的生成,以上作用對于減緩凍藏期間魚糜的蛋白質(zhì)變性,提升凍藏穩(wěn)定性具有正面效果。此外,適宜含量的營養(yǎng)素鐵可極顯著降低建鯉魚糜的初始CAT B/L活性,并且可促進CAT L在凍藏過程的中的活性降低,有利于防止CAT B/L的高活性殘留造成的魚糜質(zhì)構(gòu)品質(zhì)劣變。

        [1] 張建森,孫小異.建鯉綜合育種技術(shù)的公開和分析[J].中國水產(chǎn),2006(9):69-72.

        [2] 中國漁業(yè)統(tǒng)計年鑒[M].北京: 中國農(nóng)業(yè)出版社,2016.

        [3] 周愛梅,曾慶孝,劉欣,等.冷凍魚糜蛋白在凍藏中的物理化學(xué)變化及其影響因素[J].食品科學(xué),2003,24(3):153-157.

        [4] ERASTO M.冷凍儲藏與氧化對鰱魚肌原纖維蛋白功能性質(zhì)的影響[D].無錫: 江南大學(xué),2010.

        [5] LI S J,KING A J.Structural changes of rabbit myosin subfragment 1 altered by malonaldehyde,a byproduct of lipid oxidation[J].Journal of Agricultural & Food Chemistry,1999,47(8):3 124-3 129.

        [6] AZUMA Y,KONNO K.Freeze denaturation of carp myofibrils compared with thermal denaturation[J].Fisheries Science,1998,64(2):287-290.

        [7] KATO S,KOSEKI H,KONNO K.Oligomerization of carp myosin which retains its atpase activity[J].Fisheries Science,1996,62(6):985-989.

        [8] YOSHIKAWA K,INOUE N,KAWAI Y,et al.Changes of the solubility and ATPase activity of carp myofibrils during frozen storage at different temperatures[J].Fisheries Science,1995,61(5):804-812.

        [9] COAD J,STEWART R,PEDLEY K.Iron: Physiology of iron[J].Encyclopedia of Food & Health,2016:461-467.

        [10] DHUR A,GALAN P,HERCBERG S.Iron status,immune capacity and resistance to infections[J].Comparative Biochemistry & Physiology Part A Physiology,1989,94(1):11-19.

        [11] ROBBINS E,PEDERSON T.Iron: its intracellular localization and possible role in cell division[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1970,66(4):1 244-1 251.

        [12] COATES T D.Physiology and pathophysiology of iron in hemoglobin-associated diseases[J].Free Radical Biology & Medicine,2014,72:23-40.

        [13] SHIAU S Y,SU L W.Ferric citrate is half as effective as ferrous sulfate in meeting the iron requirement of juvenile tilapia,Oreochromis niloticus x O.aureus.[J].Journal of Nutrition,2003,133(2):483-488.

        [14] III D M G,WILSON R P.Characterization of iron deficiency and the dietary iron requirement of fingerling channel catfish[J].Aquaculture,1986,52(3):191-198.

        [15] SAKAMOTO S,YONE Y.Requirement of red sea bream for dietary iron II[J].Nihon-Suisan-Gakkai-Shi,1978,44(3):223-225.

        [16] LING Juan,FENG Lin,LIU Yang,et al.Effect of dietary iron levels on growth,body composition and intestinal enzyme activities of juvenile Jian carp (Cyprinuscarpiovar.Jian)[J].Aquaculture Nutrition,2010,16(6):616-624.

        [17] LIU Huan,YIN Li-jun,ZHANG Nan,et al.Isolation of cathepsin B from the muscle of silver carp (Hypophthalmichthysmolitrix) and comparison of cathepsins B and L actions on surimi gel softening[J].Food Chemistry,2008,110(2):310-318.

        [18] JIANG S T,LEE B L,TSAO C Y,et al.Mackerel cathepsins B and L effects on thermal degradation of surimi[J].Journal of Food Science,1997,62(2):310-315.

        [19] 陳秀華,李松,李冉,等.漂洗水中不同質(zhì)量分數(shù)VB1對鰱魚魚糜冷藏品質(zhì)的影響[J].食品科學(xué),2014,35(18):236-240.

        [20] BENJAKUL S,VISESSANGUAN W,THONGKAEW C,et al.Comparative study on physicochemical changes of muscle proteins from some tropical fish during frozen storage[J].Food Research International,2003,36(8):787-795.

        [21] BENJAKUL S,SEYMOUR T A,MORRISSEY M T,et al.Physicochemical changes in pacific whiting muscle proteins during iced storage[J].Journal of Food Science,1997,62(4):729-733.

        [22] THANNHAUSER T W,KONISHI Y,SCHERAGA H A.Analysis for disulfide bonds in peptides and proteins[J].Methods in Enzymology,1987,143(1):115-119.

        [23] 陳慧斌,王梅英,王則金,等.牡蠣凍藏期間脂肪氧化影響因素研究[J].西南大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2008,30(8):96-101.

        [24] LI Shu-hong,ZHOU Xiao-qiu,ZHANG Nan,et al.Purification and characterisation of cathepsin L2 from dorsal muscle of silver carp (Hypophthalmichthysmolitrix)[J].Food Chemistry,2008,111(4):879-886.

        [25] BARRETT A J,KIRSCHKE H.Cathepsin B,cathepsin H,and cathepsin L[J].Methods in Enzymology,1981,80 Pt C(Pt C):535-561.

        [26] WELLS J A,WERBER M M,LEGG J I,et al.Inactivation of myosin subfragment one by cobalt(II)/cobalt(III) phenanthroline complexes.I.Incorporation of Co(III) by in situ oxidation of Co(II)[J].Biochemistry,1979,18(22):4 800-4 805.

        [27] SCOTT D N,PORTER R W,KUDO G,et al.Effect of freezing and frozen storage of alaska pollock on the chemical and gel-forming properties of surimi[J].Journal of Food Science,1988,53(2):353-358.

        [28] JIANG S T,MING-Lang H O,LEE T C.Optimization of the freezing conditions on mackerel and amberfish for manufacturing minced fish[J].Journal of Food Science,1985,50(3):727-732.

        [29] 劉藝杰,薛長湖,李兆杰.鳙魚魚糜在凍藏過程中理化性質(zhì)變化的研究[J].食品工業(yè)科技,2006,27(6):70-72.

        [30] ZHANG Li,FENG Lin,JIANG Wei-dan,et al.The impaired flesh quality by iron deficiency and excess is associated with increasing oxidative damage and decreasing antioxidant capacity in the muscle of young grass carp (Ctenopharyngodonidellus)[J].2016(1):191-201.

        [31] 秦輝.中華絨螯蟹凍藏品質(zhì)的研究[D].無錫: 江南大學(xué),2008.

        [32] BADII F,HOWELL N K.Changes in the texture and structure of cod and haddock fillets during frozen storage[J].Food Hydrocolloids,2002,16(4):313-319.

        [33] SUN Wei-zheng,ZHOU Fei-bai,SUN Da-wen,et al.Effect of oxidation on the emulsifying properties of myofibrillar proteins[J].Food and Bioprocess Technology,2013,6(7):1 703-1 712.

        [34] 包建強,路昊,岳曉華,等.凍藏期間金槍魚的TVB-N、脂肪氧化、pH值的變化[C].上海市制冷學(xué)會二○○五年學(xué)術(shù)年會論文集,2005:246-248.

        [35] 章銀良,安巧云,楊慧.脂肪氧化對蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的影響[J].食品科學(xué),2012,33(1):25-30.

        [36] ARMENTEROS M,HEINONEN M,OLLILAINEN V,et al.Analysis of protein carbonyls in meat products by using the DNPH-method,fluorescence spectroscopy and liquid chromatography-electrospray ionisation-mass spectrometry (LC-ESI-MS)[J].Meat Science,2009,83(1):104-112.

        [37] ARANISHI F.Differential expression of ovarian cathepsins B,D and L during oocyte growth in scad[J].Journal of Reproduction & Development,2000,46(46):287-291.

        [38] WATTS C.The endosome-lysosome pathway and information generation in the immune system[J].Biochimica Et Biophysica Acta,2012,1 824(1):14-21.

        [39] GODIKSEN H,MORZEL M,HYLDIG G,et al.Contribution of cathepsins B,L and D to muscle protein profiles correlated with texture in rainbow trout (Oncorhynchusmykiss)[J].Food Chemistry,2009,113(4):889-896.

        [40] AN H,PETERS M Y,SEYMOUR T A,et al.Isolation and activation of cathepsin L-inhibitor complex from Pacific whiting (Merlucciusproductus)[J].Journal of Agricultural & Food Chemistry,1995,43(2):327-330.

        EffectofironsupplementonthechangesofJiancarp(cyprlnuscarpiovarJian)surimiqualityduringfrozenstorageandcathepsinB/L

        LI Ran,ZHONG Hai-xia,LI Shu-hong*,YANG Juan,HU Qiang,KE Qin-qin,BAI Zhi-zi,LIN Ling,LI Mei-liang

        (College of Food Science,Sichuan Agricultural University,Ya’an 625014,China)

        Jian carp (cyprlnuscarpiovarJian) fed for 90 days were compared with different iron content (146.1 mg/kg and 53.9 mg/kg) in their diet.Fish meats were collected and processed into surimi.After frozen storage at -20 ℃,the sample was collected at 0,1st,2nd,4th,6thweek respectively.Indexes including Ca2+-ATPase activity (CA),total sulfhydryl (TSH) content,disulfide bonds (DB) content,protein surface hydrophobicity (PSH),and thiobarbituric acid (TBA) value were detected.Meanwhile,the activities of Cathepsin B/L of Jian carp surimi were detected by fluorescent synthesis of peptide substrate method.The results indicated that the initial CA and TSH content in suitable group was improved extremely significantly (p<0.01),while the initial DB content (0.01

        iron; Jian carp; surimi; quality during frozen storage; cathepsin B/L

        10.13995/j.cnki.11-1802/ts.013793

        碩士研究生(李樹紅副教授為通訊作者,E-mail:lish@sicau.edu.cn)。

        四川省教育廳自然科學(xué)重點基金項目(10ZA052);四川省科技支撐計劃項目(2014NZ0003)

        2017-01-10,改回日期:2017-02-06

        猜你喜歡
        魚糜鯉魚蛋白酶
        檢測金屬離子營養(yǎng)強化劑對磁場輔助冷凍魚糜品質(zhì)的影響
        讀《鯉魚跳龍門》有感
        快樂語文(2021年36期)2022-01-18 05:49:04
        鯉魚旗裝飾墜
        魚糜及魚糜制品中水分研究進展
        思鄉(xiāng)與蛋白酶
        文苑(2018年22期)2018-11-19 02:54:30
        鯉魚跳龍門
        新技術(shù)對魚糜凝膠特性的影響
        常溫魚豆腐制品研究與開發(fā)
        多胚蛋白酶 高效養(yǎng)畜禽
        IgA蛋白酶在IgA腎病治療中的潛在價值
        免费a级毛片又大又粗又黑| 亚洲国产精品一区二区久久恐怖片| 99久久久无码国产精品动漫| 免费观看又色又爽又湿的视频| 丝袜美腿福利视频在线| 中文字幕日本熟妇少妇 | 国产精品三级在线不卡| 成人在线免费电影| 一区二区三区四区亚洲免费| 伊人一道本| 色一情一乱一伦一区二区三区日本| 成年美女黄网站色大免费视频 | 欧美精品久久久久久久久| 欧美极品色午夜在线视频| 人妻 丝袜美腿 中文字幕| 久久伊人精品色婷婷国产| 黄色网页在线观看一区二区三区| 欧美在线专区| 毛茸茸的中国女bbw| 日韩精品久久无码中文字幕| 成人av在线久色播放| 亚洲欧美v国产蜜芽tv| 国产一级农村无码| 欧美精品中文字幕亚洲专区| 中国无码人妻丰满熟妇啪啪软件 | 国产喷白浆精品一区二区豆腐 | 91伊人久久| 亚洲综合久久成人a片| 麻豆精品久久久久久中文字幕无码| 亚洲国产中文字幕在线视频综合| 91热久久免费频精品99| 亚洲嫩模一区二区三区视频| 亚洲另在线日韩综合色| 99国产精品99久久久久久| 国产成人午夜精华液| 亚洲精品无码久久久影院相关影片| 国精产品一区一区三区| 久久女人精品天堂av影院麻| 国产视频一区二区三区久久亚洲 | 亚洲精品无码高潮喷水在线| 欧洲熟妇色xxxxx欧美老妇伦|