蔣彪,王常高,杜馨,林建國(guó),蔡俊*
(湖北工業(yè)大學(xué)發(fā)酵工程教育部重點(diǎn)試驗(yàn)室工業(yè)發(fā)酵湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心,湖北武漢430068)
響應(yīng)面法優(yōu)化芽孢桿菌CJPE209產(chǎn)角蛋白酶發(fā)酵培養(yǎng)基的研究
蔣彪,王常高,杜馨,林建國(guó),蔡俊*
(湖北工業(yè)大學(xué)發(fā)酵工程教育部重點(diǎn)試驗(yàn)室工業(yè)發(fā)酵湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心,湖北武漢430068)
采用響應(yīng)面法對(duì)芽孢桿菌(Bacillussp.)CJPE209產(chǎn)角蛋白酶的發(fā)酵培養(yǎng)基組分進(jìn)行優(yōu)化。在前期單因素優(yōu)化的基礎(chǔ)上利用Plackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計(jì)篩選出影響產(chǎn)酶的2個(gè)顯著性因素:羽毛粉、蔗糖。在此基礎(chǔ)上,采用最陡爬坡試驗(yàn)確定中心復(fù)合試驗(yàn)的中心點(diǎn),然后對(duì)其他不顯著因素進(jìn)行最低添加量試驗(yàn)以降低生產(chǎn)成本和簡(jiǎn)化培養(yǎng)基組分。利用中心復(fù)合試驗(yàn),得到預(yù)測(cè)最佳培養(yǎng)基組成為羽毛粉5.6 g/L、蔗糖13.6 g/L、尿素5.0 g/L、KH2PO40.4 g/L、MgSO41.44 g/L、CaCl21.1 g/L、NaCl 5.0 g/L,預(yù)測(cè)角蛋白酶酶活為501.9 U/mL。用預(yù)測(cè)最佳培養(yǎng)基來(lái)進(jìn)行發(fā)酵驗(yàn)證試驗(yàn),結(jié)果實(shí)際角蛋白酶酶活為503.5 U/mL,表明模型能較好的預(yù)測(cè)發(fā)酵后酶活。
芽孢桿菌;角蛋白酶;響應(yīng)面法;培養(yǎng)基優(yōu)化
JIANG Biao,WANG Changgao,DU Xin,LIN Jianguo,CAI Jun* (Key Laboratory of Fermentation Engineering(Ministry of Education),Hubei Provincial Cooperative Innovation Center of Industrial Fermentation,Hubei University of Technology,Wuhan 430068,China)
角蛋白是一種不溶于水、鹽、稀酸或稀堿,自然界中廣泛存在的硬質(zhì)蛋白,其蛋白結(jié)構(gòu)中的多肽多由二硫鍵、氫鍵和疏水作用的其他化學(xué)鍵高度交聯(lián)形成較為穩(wěn)定的空間結(jié)構(gòu)[1]。角蛋白主要來(lái)源于外胚層細(xì)胞,包括皮膚和皮膚的衍生物(如毛發(fā)、羽毛、鱗、甲、角質(zhì)、喙等),分為α-角蛋白和β-角蛋白兩種[2]。羽毛作為養(yǎng)殖產(chǎn)業(yè)的副產(chǎn)物年產(chǎn)量巨大,其中粗蛋白含量約占羽毛本身的85%以上,且蛋白多為角蛋白[3-5]。通過(guò)角蛋白酶降解羽毛得到小分子多肽和氨基酸,可以運(yùn)用于飼料行業(yè)和醫(yī)療保健產(chǎn)品[6-7]。另外,角蛋白酶廣泛應(yīng)用于肥料、洗滌工業(yè)和皮革行業(yè)等領(lǐng)域[8-10]。
目前,在角蛋白酶的發(fā)酵研究中,主要集中在對(duì)發(fā)酵條件和發(fā)酵培養(yǎng)基這兩個(gè)方面進(jìn)行優(yōu)化,研究方法上主要是用到單因素、正交和響應(yīng)面試驗(yàn)對(duì)其進(jìn)行優(yōu)化[11]。由于單因素試驗(yàn)無(wú)法考慮到各因素之間的交互作用,正交試驗(yàn)無(wú)法獲得全面可靠的水平組合,但響應(yīng)面試驗(yàn)法不僅可以同時(shí)對(duì)影響生物量的各因素和各因素的相互作用進(jìn)行比較和優(yōu)化,還可以快速確定出各因素最優(yōu)水平,減少試驗(yàn)次數(shù),節(jié)約時(shí)間。RAMNANI P等[12]采用Plackett-Burman法選出影響地衣芽孢桿菌(Bacillus licheniformis)RG1產(chǎn)角蛋白酶的3個(gè)顯著因素,并進(jìn)一步通過(guò)中心復(fù)合試驗(yàn)得到最優(yōu)產(chǎn)酶培養(yǎng)基,使優(yōu)化后酶活提高3.5倍。THYS R C S等[13]采用響應(yīng)面法對(duì)微桿菌(Microbacteriumsp.)kr10產(chǎn)角蛋白酶的發(fā)酵過(guò)程進(jìn)行優(yōu)化,最高酶活達(dá)到202.7 U/mL。ANBU P等[14]以Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)對(duì)Scopulariopsis brevicaulis產(chǎn)角蛋白酶培養(yǎng)基及條件進(jìn)行優(yōu)化,得到合適的產(chǎn)酶培養(yǎng)基組成及培養(yǎng)條件。
本研究以前期實(shí)驗(yàn)室篩選得到的一株芽孢桿菌(Bacillussp.)CJPE209作為出發(fā)菌株,在前期單因素優(yōu)化的基礎(chǔ)上,采用響應(yīng)面法對(duì)其發(fā)酵培養(yǎng)基組分進(jìn)行優(yōu)化,提高酶活,為后期大規(guī)模生產(chǎn)提供參考。
1.1 材料與試劑
1.1.1 菌株
實(shí)驗(yàn)室自行篩選得到的一株芽孢桿菌(Bacillussp.)CJPE209:保藏于中國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心,菌種保藏編號(hào)為CCTCC M 2015734。
1.1.2 試劑
羽毛粉:市售;50 mg/mL水溶性角蛋白:東京化成工業(yè)株式會(huì)社;福林酚試劑(生物試劑):國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
1.1.3 培養(yǎng)基
斜面培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L,牛肉膏5 g/L,NaCl 5 g/L,瓊脂粉20 g/L;
種子培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L,牛肉膏5 g/L,NaCl 5 g/L;
初始發(fā)酵培養(yǎng)基:羽毛粉10g/L,尿素5g/L,蔗糖10g/L,KH2PO40.5 g/L,K2HPO4·3H2O 1 g/L,CaCl20.55 g/L,MgSO41.8 g/L,NaCl 5 g/L。
1.2 儀器與設(shè)備
SYNERGY2酶標(biāo)儀:Gene Company Limited;3K15冷凍離心機(jī):德國(guó)Sigma公司;TGL-16C臺(tái)式離心機(jī):上海安亭科學(xué)儀器制品廠;SW-CJ-1D型單人凈化工作臺(tái):蘇州凈化設(shè)備有限公司;ZHWY-2102C恒溫培養(yǎng)箱振蕩器:上海智城分析儀器制造有限公司。
1.3 方法
1.3.1 角蛋白酶粗酶液的制備
將保藏的菌種接種到斜面培養(yǎng)基37℃培養(yǎng)24 h以活化菌種。將活化好的菌種接種到種子培養(yǎng)基中37℃搖床振蕩培養(yǎng)14 h,待菌株生長(zhǎng)達(dá)到最大速度。取2%(V/V)種子培養(yǎng)液接種于25 mL發(fā)酵培養(yǎng)基,搖床220 r/min振蕩培養(yǎng)48 h,取發(fā)酵液高速離心,得到上清液即為粗酶液。
1.3.2 角蛋白酶酶活測(cè)定方法
以1%的水溶性角蛋白(用0.01 mol/L的Tris-HCl緩沖液(pH9)稀釋)作為底物,參考YAMAMURA S等[15]的測(cè)定方法,向1mL底物中加入1mL的粗酶液,55℃水浴反應(yīng)20min后,加入2 mL 0.4 mol/L的三氯乙酸終止反應(yīng),高速離心取1 mL上清液加入4 mL 0.4 mol/L的碳酸鈉溶液和1 mL福林酚試劑均勻混合,于40℃水浴反應(yīng)20 min,取反應(yīng)液200 μL于96孔板用酶標(biāo)儀在波長(zhǎng)680 nm處檢測(cè)吸光度值;對(duì)照組使用先加入三氯乙酸滅活的酶液。
角蛋白酶酶活定義:在上述反應(yīng)體系中,吸光度值每增加0.01為一個(gè)酶活單位(U/mL)。酶活計(jì)算公式如下:
D=(A-B)×C×100
式中:A為試驗(yàn)組吸光度值;B為對(duì)照組吸光度值;C為粗酶液稀釋倍數(shù);D為角蛋白酶酶活,U/mL。
1.3.3 Plackett-Burman(PB)試驗(yàn)設(shè)計(jì)
本研究選取N=12的試驗(yàn)設(shè)計(jì),選取前期單因素試驗(yàn)中對(duì)酶活影響較大的7個(gè)因素,每個(gè)因素分為高(+)、低(-)兩水平,按照設(shè)計(jì)方案進(jìn)行12次試驗(yàn),以角蛋白酶酶活為響應(yīng)值,挑選出置信度>95%的因素作為影響酶活的顯著因素。PB設(shè)計(jì)因素與水平見(jiàn)表1。
表1Plackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素與水平Table 1 Factors and levels of Plackett-Burman experiments design g/L
1.3.4 最陡爬坡試驗(yàn)
通過(guò)PB試驗(yàn)得到影響角蛋白酶酶活的顯著因素,依據(jù)各因素的效應(yīng)值來(lái)選擇適當(dāng)步長(zhǎng),通過(guò)最陡爬坡試驗(yàn)找到拐點(diǎn),為下一步中心復(fù)合設(shè)計(jì)(central composite design,CCD)提供中心點(diǎn)數(shù)據(jù)。
1.3.5 最低添加量試驗(yàn)
經(jīng)PB試驗(yàn)得到影響粗酶液酶活的顯著因素和不顯著因素。為了降低成本、簡(jiǎn)化培養(yǎng)基組分,選擇不顯著因素進(jìn)行合理步長(zhǎng)的單因素試驗(yàn),確定不顯著因素組分的最小添加量。1.3.6中心復(fù)合設(shè)計(jì)(CCD)試驗(yàn)
根據(jù)PB試驗(yàn)和最陡爬坡試驗(yàn)結(jié)果,通過(guò)2因素5水平的試驗(yàn)來(lái)確定芽孢桿菌CJPE209產(chǎn)角蛋白酶的最佳培養(yǎng)基組分。CCD利用13組試驗(yàn),用軟件對(duì)試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行回歸分析、方差分析和分析兩因素之間的相互作用,同時(shí)通過(guò)對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)分析得到模型的多元函數(shù)和響應(yīng)面三維立體圖。然后用預(yù)測(cè)最佳培養(yǎng)基組分進(jìn)行發(fā)酵驗(yàn)證試驗(yàn)。試驗(yàn)自變量水平的編碼值和實(shí)際值見(jiàn)表2。
表2 中心組合設(shè)計(jì)試驗(yàn)因素與水平Table 2 Factors and levels of central composite design experiments
2.1 PB試驗(yàn)
PB試驗(yàn)結(jié)果如表3所示。對(duì)PB試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行回歸分析和方差分析,結(jié)果見(jiàn)表4和表5。
表3Plackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 3 Design and results of Plackett-Burman experiments
表4Plackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計(jì)回歸分析Table 4 Regression analysis of the Plackett-Burman design
表5Plackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計(jì)方差分析Table 5 Variance analysis of Plackett-Burman design
由表4可知,α=0.05時(shí)羽毛粉和蔗糖的P值在95%的置信區(qū)間內(nèi)都<0.05,表明羽毛粉和蔗糖都是影響CJPE209產(chǎn)角蛋白酶的顯著因素。通過(guò)效應(yīng)值知道蔗糖為正效應(yīng),羽毛粉為負(fù)效應(yīng)。
由表5可知,此模型在95%的置信區(qū)間內(nèi)顯著,其決定系數(shù)R2=87.60%,說(shuō)明回歸方程能解釋87.60%的試驗(yàn)數(shù)據(jù),同時(shí)證明此模型合理。
2.2 最陡爬坡試驗(yàn)
根據(jù)PB試驗(yàn)得到的結(jié)果,按照各因素的效應(yīng)值合理設(shè)計(jì)試驗(yàn)的變化步長(zhǎng)和最陡爬坡試驗(yàn),其步長(zhǎng)及試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表6。
表6 最陡爬坡試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 6 Design and results of the steepest ascent tests
由表6可知,第1組到第3組角蛋白酶或逐漸升高,而從第4組酶活就開(kāi)始下降,即第3組試驗(yàn)為最陡爬坡的拐點(diǎn),因此選擇第3組(蔗糖和羽毛粉的添加量分別為蔗糖12g/L、羽毛粉6 g/L)作為下一步中心復(fù)合試驗(yàn)的中心點(diǎn)。
2.3 最低添加量試驗(yàn)
由PB試驗(yàn)結(jié)果可知,所選取的7個(gè)因素中尿素、KH2PO4、K2HPO4·3H2O、CaCl2和MgSO4為不顯著因素。將這5個(gè)因素做最低添加量試驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)圖1。
由圖1a可知,酶活隨著尿素添加量的增加而升高,在尿素添加量為4 g/L時(shí)酶活達(dá)到最高為417 U/mL,當(dāng)尿素添加量繼續(xù)增加時(shí)粗酶液酶活開(kāi)始下降,因此尿素的最佳添加量為4g/L;由圖1b可知,當(dāng)磷酸二氫鉀的添加量從0~0.4g/L逐漸增加時(shí),粗酶液酶活隨磷酸二氫鉀的添加量的增加而提高,但磷酸二氫鉀的添加量繼續(xù)增加時(shí),粗酶液酶活變化很小,因此磷酸二氫鉀的最佳添加量為0.4 g/L;由圖1c可知,磷酸氫二鉀的添加量從0~1 g/L逐漸增加時(shí),粗酶液的酶活變化不大,為節(jié)約成本和簡(jiǎn)化培養(yǎng)基,故磷酸氫二鉀選擇不添加到培養(yǎng)基;由圖1d可知,硫酸鎂的添加量在0~1.44 g/L的范圍內(nèi)逐漸增加,粗酶液的酶活在硫酸鎂添加量為1.44g/L達(dá)到最高為416g/L,因此硫酸鎂的最佳添加量為1.44 g/L;由圖1e可知,粗酶液的酶活隨氯化鈣的添加量的增加而增加,當(dāng)氯化鈣的添加量為1.1 g/L時(shí),酶活達(dá)到最高為447U/mL。故選擇尿素、磷酸二氫鉀、磷酸氫二鉀、硫酸鎂和氯化鈣的添加量分別為4 g/L、0.4 g/L、0 g/L、1.44g/L和1.1 g/L。
圖1 最低添加量試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Fig.1 Design and results of the minimum addition experiments
2.4 中心復(fù)合設(shè)計(jì)(CCD)試驗(yàn)
通過(guò)最陡爬坡試驗(yàn)得到兩個(gè)影響酶活的顯著因素(蔗糖和羽毛粉)的中心復(fù)合試驗(yàn)的中心點(diǎn):蔗糖12 g/L、羽毛粉6 g/L。以這兩種顯著因素的濃度為自變量,角蛋白酶酶活為響應(yīng)值,進(jìn)行2因素5水平的中心復(fù)合設(shè)計(jì)試驗(yàn),試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表7。固定培養(yǎng)基其他組分為:尿素4 g/L、磷酸二氫鉀0.4g/L、硫酸鎂1.44g/L、氯化鈣1.1 g/L和氯化鈉5 g/L。
表7 中心復(fù)合試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 7 Design and results of central composite design
表8 響應(yīng)面二次模型方差分析Table 8 Variance analysis of response surface quadratic model
由表8可知,模型的P值遠(yuǎn)小于0.05,并且模型多元相關(guān)系數(shù)R2=99.41%,表明預(yù)測(cè)僅有0.59%的數(shù)據(jù)不能由該模型解釋。失擬項(xiàng)P>0.05,不顯著,說(shuō)明該模型無(wú)失擬現(xiàn)象。
通過(guò)Designexpert8.0.6對(duì)二次回歸系數(shù)的分析和計(jì)算得到A蔗糖和B羽毛粉對(duì)角蛋白酶酶活力影響的模型方程:
Y=493.9+38.75A-2.85B+24.37AB-20.98A2-17.73B2
通過(guò)軟件分析得到蔗糖和羽毛粉交互作用的三維立體圖見(jiàn)圖2。
圖2 蔗糖和羽毛粉交互作用對(duì)角蛋白酶酶活影響的響應(yīng)面和等高線Fig.2 Response surface plots and contour line of effects of interaction between sucrose and feather meal on keratinase activity
由圖2可知,當(dāng)羽毛粉添加量不變時(shí),蔗糖添加量對(duì)酶活存在二次效應(yīng),曲面呈拋物面,此響應(yīng)面圖呈典型的鐘罩狀,說(shuō)明蔗糖和羽毛粉的交互作用比較明顯。根據(jù)上述分析及軟件計(jì)算,預(yù)測(cè)最佳組合為:蔗糖13.6 g/L和羽毛粉5.6 g/L。最終預(yù)測(cè)的最佳培養(yǎng)基為:蔗糖13.6 g/L、羽毛粉5.6 g/L、尿素4 g/L、磷酸二氫鉀0.4 g/L、硫酸鎂1.44 g/L、氯化鈣1.1g/L和氯化鈉5g/L。預(yù)測(cè)最高酶活為501.9U/mL。
為驗(yàn)證模型預(yù)測(cè)的可靠性,在用預(yù)測(cè)得到的最佳培養(yǎng)基的條件下進(jìn)行3次發(fā)酵試驗(yàn),結(jié)果角蛋白酶酶活平均值為503.5 U/mL。預(yù)測(cè)值與實(shí)際值較吻合,說(shuō)明該模型是比較合理的。
本研究以試驗(yàn)室篩選、保存的一株芽孢桿菌(Bacillus sp.)CJPE209為出發(fā)菌株,采用響應(yīng)面法對(duì)其發(fā)酵培養(yǎng)基進(jìn)行優(yōu)化,得到最終培養(yǎng)基:蔗糖13.6 g/L、羽毛粉5.6 g/L、尿素4 g/L、磷酸二氫鉀0.4 g/L、硫酸鎂1.44 g/L、氯化鈣1.1 g/L和氯化鈉5 g/L,此條件下角蛋白酶酶活為503.5 U/mL。通過(guò)驗(yàn)證試驗(yàn)確定其預(yù)測(cè)值和實(shí)際值較吻合,說(shuō)明響應(yīng)面法優(yōu)化是合理的、可靠的。并且相較于響應(yīng)面優(yōu)化前的酶活417U/mL提高了20.74%。同時(shí)本研究對(duì)后期酶的規(guī)模生產(chǎn)提供參考和鋪墊。
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Q815
0254-5071(2017)05-0076-05
10.11882/j.issn.0254-5071.2017.05.016
2017-02-23
國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31401807)
蔣彪(1989-),男,碩士研究生,研究方向?yàn)榘l(fā)酵過(guò)程優(yōu)化與放大。
*通訊作者:蔡?。?968-),男,教授,博士,研究方向?yàn)槲⑸锇l(fā)酵工程。