王震 龐妃 顧彩彩 王露蓉 邢永秀 楊麗濤 李楊瑞
摘要:【目的】建立和優(yōu)化固氮鏈霉菌Streptomyces chartreusi WZS021(簡稱菌株WZS021,下同)的接合轉移體系,以豐富固氮鏈霉菌基因片段轉移技術?!痉椒ā恳源竽c桿菌Escherichia coli ET12567(pUZ8002)為供體菌,攜帶整合型質粒pSET152的菌株WZS021為受體菌,進行菌株WZS021接合轉移?!窘Y果】選擇高氏一號培養(yǎng)基為菌株WZS021接合轉移培養(yǎng)基,50 ℃熱激10 min,供受比為1∶10,涂布20.0 mg/L安普霉素、接合轉移12 h后覆蓋抗生素,添加MgCl2終濃度為5.0 mmol/L時接合轉移效率最高,達3.24×10-6?!窘Y論】通過確定適用于菌株WZS021接合轉移條件建立的菌株WZS021遺傳轉化體系,有助于今后插入標記基因確定該菌的固氮定殖位點及導入外源基因的操作。
關鍵詞: 固氮鏈霉菌WZS021;接合轉移;優(yōu)化;pSET152
中圖分類號: Q939.113 文獻標志碼:A 文章編號:2095-1191(2017)04-0581-06
Abstract:【Objective】The present study was conducted to establish and optimize transconjugation system of Streptomyces chartreusis WZS021(hereinafter referred to as strain WZS021),in order to enrich strain WZS021 gene fragment transfer technology. 【Method】As donor strain,Escherichia coli ET12567(pUZ8002) contained integrative plasmid pSET152. Strain WZS021 was recipient. Transconjugation was conducted on strain WZS021. 【Result】The optimal conditions were as follows:Gauzes medium No.1 as the transconjugation medium, heat shock at 50 ℃ for 10 min, donor-recipient ratio 1∶10,20.0 mg/L apramycin coverage 12 h post transconjugation, and adding MgCl2 till final concentration of 5.0 mmol/L. Under these conditions,the transconjugation efficiency was the highest, which was up to 3.24×10-6. 【Conclusion】The suitable transconjugation conditions for strain WZS021 are ascertained, and an effective genetic transformation system for strain WZS021 is established based on it. It is helpful to insert marker genes to detect nitrogen fixation sites of the strain and exogenous gene transfer.
Key words: Streptomyces chartreusi WZS021; transconjugation; optimization; pSET152
0 引言
【研究意義】固氮微生物是近年來生物固氮研究的熱點,有效利用固氮微生物可減少化肥使用量,改善土壤和生態(tài)環(huán)境質量,提高農作物產量和品質,有利于農業(yè)結構調整,提高經濟效益、生態(tài)效益和社會效益(李楊瑞,2010;李劍鋒等,2015)。鏈霉菌是一種放線菌,全世界約2/3的抗生素產自該菌屬(莫宏波等,2004),在醫(yī)學和農業(yè)等領域均有突出地位。固氮鏈霉菌Streptomyces chartreusi WZS021(簡稱菌株WZS021,下同)是一株具有高固氮能力的鏈霉菌(Wang et al.,2016),目前對該菌種接合轉移研究方面鮮有報道,其接合轉移的具體條件尚不清楚。因此,掌握固氮微生物的生物技術,建立并優(yōu)化固氮鏈霉菌S. chartreusi WZS021的接合轉移體系,對今后開展菌株WZS021在農業(yè)上的應用研究具有重要意義?!厩叭搜芯窟M展】鏈霉菌的遺傳轉化主要采用原生質體轉化法、接合轉移法和電轉化法等(Veal et al.,1992;Christensen et al.,1996;吳勝和夏煥章,2002)。赫衛(wèi)清和王以光(2006)研究發(fā)現(xiàn),鏈霉菌高度分化,遺傳背景復雜,不同菌株的接合轉移條件不完全相同。王航等(2014)研究表明,接合轉移法以其操作程序簡單、時間成本小、轉化效率可觀和能使外源DNA避開胞外核酸酶降解等優(yōu)點成為鏈霉菌轉化的主要遺傳技術?!颈狙芯壳腥朦c】前人對鏈霉菌屬的接合轉移研究主要集中在抗生素產生菌上,如產雷帕霉素的吸水鏈霉菌NRRL5491(楊旻和陶美鳳,2007)、產放線紫紅素的阿維鏈霉菌NRRL8165(余姣姣和陶美鳳,2010)和產達托霉素的玫瑰孢鏈霉菌NRRL11379(王航等,2014)等,而關于固氮功能型鏈霉菌遺傳轉化體系的研究鮮見報道。【擬解決的關鍵問題】在不同培養(yǎng)基、熱激溫度、供受比、抗生素使用濃度和時間及Mg+濃度等條件下對菌株WZS021的接合轉移系統(tǒng)進行優(yōu)化,以期獲得高效、便捷的接合轉移方法,以豐富菌株WZS021的基因片段轉移技術。
1 材料與方法
1. 1 試驗材料
1. 1. 1 培養(yǎng)基 LB和高氏一號培養(yǎng)基購自廣東環(huán)凱生物科技有限公司,MS、M10、YEME和2CM培養(yǎng)基參考Kieser等(2000)的方法使用,2×YT培養(yǎng)基參考Sambrook等(1989)的方法使用。
1. 1. 2 質粒及菌種 質粒pSET152(Bierman et al.,1992)、大腸桿菌Escherichia coli DH5α、E. coli ET12567(pUZ8002)和固氮鏈霉菌S. chartreusi WZS021(16S rRNA基因GenBank登錄號KX775948)均由亞熱帶農業(yè)生物資源保護和利用國家重點實驗室保存提供。
1. 1. 3 試劑及抗生素 所有抗生素均購自北京索萊寶科技有限公司,PCR相關產品購自北京康為世紀生物科技有限公司,其余試劑購自國藥集團。
1. 2 試驗方法
1. 2. 1 鏈霉菌培養(yǎng)及DNA提取 參照劉志恒和姜成林(2004)的方法進行鏈霉菌培養(yǎng)及總DNA和質粒提取。
1. 2. 2 抗生素最小抑菌濃度測定 制備含0~10.0 mg/L(梯度為1.0 mg/L)安普霉素的高氏一號培養(yǎng)基,將約108個菌株WZS021的孢子均勻涂布在每個培養(yǎng)基上,28 ℃培養(yǎng)10 d,期間每天觀察,根據(jù)鏈霉菌的生長情況確定最小抑菌濃度為3.0 mg/L。
1. 2. 3 大腸桿菌與鏈霉菌屬間接合轉移 參照Flett等(1997)的方法進行大腸桿菌與鏈霉菌屬間的接合轉移。將質粒pSET152轉入大腸桿菌ET12567(pUZ8002),得到轉化子ET12567(pUZ8002/pSET152),菌株保存于-80 ℃冰箱。使用時將轉化子ET12567(pUZ8002/pSET152)取出培養(yǎng)過夜,再將培養(yǎng)物轉接至新鮮的100.0 mL LB培養(yǎng)基(含50.0 mg/L卡那霉素、25.0 mg/L氯霉素和50.0 mg/L安普霉素)中,37 ℃培養(yǎng)至OD600為0.4~0.6時收集菌體。用等體積的新鮮LB洗滌菌體兩次以去除抗生素,再以10.0 mL LB懸浮備用。取新鮮的鏈霉菌孢子,使其懸浮于5.0 mL 0.05 mol/L TES(pH=8.0)中,50 ℃水浴熱激10 min,冷卻至室溫后加入等體積2×YT培養(yǎng)基,37 ℃搖床分別培養(yǎng)2~3 h,離心收集孢子并重新懸浮于適量水或TES中,在振蕩器上打散孢子后與收集到的轉化子ET12567(pUZ8002/pSET152)混合并涂布,于28 ℃培養(yǎng)10~20 h,用適當濃度的安普霉素和萘啶酮酸覆蓋,再于28 ℃培養(yǎng)6~8 d可得到接合轉移子。受體孢子數(shù)采用平板計數(shù)法(趙斌和何紹江,2002)計數(shù),接合轉移頻率為接合子數(shù)目除以受體孢子數(shù),取3次平行試驗的平均值。
1. 2. 4 接合轉移子驗證 將1.2.3獲得的接合轉移子在含安普霉素和萘啶酮酸的培養(yǎng)基上劃線,反復幾次以驗證接合轉移子的穩(wěn)定性,再轉接于液體培養(yǎng)基,2~3 d后收集菌體,提取總DNA作為PCR驗證的模板。以pSET152質粒DNA為陽性對照模板,野生型菌株WZS021 DNA為陰性對照。擴增引物(楊旻等,2007)為Apr1(5′-CAGTTGACCCAGGGCTGTC-3′)和Apr2(5′-GCAATACGAATGGCGAAAA-3′)。PCR擴增程序:94 ℃預變性,5 min;94 ℃ 50 s,55 ℃ 50 s,72 ℃ 1 min,進行30個循環(huán);72 ℃終延伸10 min,擴增出694 bp安普霉素抗性基因。
2 結果與分析
2. 1 培養(yǎng)基對菌株WZS021接合轉移效率的影響
選用MS、2CM、M10、YEME和高氏一號等5種培養(yǎng)基為大腸桿菌與鏈霉菌接合轉移培養(yǎng)基。從圖1可看出,高氏一號培養(yǎng)基的接合轉移效率為1.69×10-6,高于MS和2CM培養(yǎng)基的接合轉移效率,而使用M10和YEME培養(yǎng)基時接合轉移效率低至無法計算或得不到接合轉移子,因此對固氮放線菌進行接合轉移操作時選擇高氏一號培養(yǎng)基為接合轉移培養(yǎng)基。
2. 2 熱激溫度對菌株WZS021接合轉移效率的影響
在鏈霉菌的接合轉移操作中,熱激溫度對不同鏈霉菌的孢子萌發(fā)效果不同,對鏈霉菌接合轉移效率也有一定影響(孔會利等,2006)。本研究選取45、50和55 ℃3個熱激溫度對鏈霉菌孢子進行熱激處理,每處理熱激10 min,結果(圖2)表明,熱激溫度為50 ℃時接合轉移效率高于45和55 ℃兩個處理,因此熱激溫度為50 ℃時孢子萌發(fā)情況更適于接合轉移操作要求。
2. 3 供體菌與受體菌比例對菌株WZS021接合轉移效率的影響
在大腸桿菌與鏈霉菌屬間的接合轉移中,供體菌數(shù)量過多會造成供體菌與受體菌同時在培養(yǎng)基上生長,無法進行下一步操作;受體菌數(shù)量過多則轉化子假陽性的概率會升高。因此,選擇適當?shù)墓┦鼙仁墙雍限D移操作中的重要一步。本研究選擇供受比1000∶1、100∶1、10∶1、1∶1、1∶10、1∶100和1∶1000進行比較,結果(圖3)表明,供受比為1∶10時,接合轉移效率最高,供受比為10∶1、1∶1和1∶100時可長出少量轉化子,供受比為1000∶1、100∶1和1∶1000時出現(xiàn)大腸桿菌生長或無轉化子現(xiàn)象。
2. 4 抗生素濃度對菌株WZS021接合轉移效率的影響
由表1可知,選用20.0和50.0 mg/L兩種濃度安普霉素和萘啶酮酸對接合轉移子進行抗生素濃度篩選,當培養(yǎng)基上萘啶酮酸濃度為20.0 mg/L時,20.0和50.0 mg/L安普霉素均無法抑制大腸桿菌生長,出現(xiàn)大腸桿菌與轉化子同時生長現(xiàn)象;當萘啶酮酸濃度為50.0 mg/L時,20.0 mg/L安普霉素的接合轉移效率約為50.0 mg/L安普霉素接合轉移效率的3倍,為2.79×10-6。
2. 5 抗生素覆蓋時間對菌株WZS021接合轉移效率的影響
通常情況下鏈霉菌接合轉移過程中抗生素覆蓋時間為16~20 h,覆蓋時間過長,大腸桿菌生長出的菌落會與鏈霉菌混在一起,無法進行下一步試驗;時間過短則接合轉移不完全,效率低下。本研究分別在涂布大腸桿菌與鏈霉菌混合菌液10、12、14、16、18和20 h后覆蓋抗生素,以涂布混合菌液12 h后覆蓋抗生素的接合轉移效率最高,涂布混合菌液14 h后覆蓋抗生素也能獲得可觀數(shù)量的接合轉移子,涂布混合菌液10 和16 h后覆蓋抗生素僅獲得少量的轉移子,而在涂布混合菌液18和20 h后覆蓋抗生素無法抑制大腸桿菌生長(圖4)。
2. 6 MgCl2濃度對菌株WZS021接合轉移效率的影響
在接合轉移培養(yǎng)基中加入適量的MgCl2可提高接合轉移效率。為確定接合轉移的最佳MgCl2濃度,本研究選取終濃度為0、5.0、10.0、20.0、30.0、40.0和50.0 mmol/L的培養(yǎng)基以觀察接合轉移子生長情況。觀察結果(圖5)表明,在終濃度為0~30.0 mmol/L的培養(yǎng)基上均可產生數(shù)量可觀的接合轉移子,終濃度為50.0 mmol/L的培養(yǎng)基上未產生接合轉移子。其中,終濃度為5.0、10.0和20.0 mmol/L培養(yǎng)基上產生轉化子的數(shù)量明顯多于其他濃度。
2. 7 甘氨酸對菌株WZS021接合轉移效率的影響
在培養(yǎng)基中加入MgCl2使其終濃度為5.0 mmol/L的前提下,添加甘氨酸使培養(yǎng)基甘氨酸終濃度分別為0、1%、2%、3%、4%、5%和6%,以檢測甘氨酸對菌株WZS021接合轉移效率的影響。檢測結果(圖6)顯示,甘氨酸終濃度為0~3%時,接合轉移效率變化無明顯差異,其中添加1%甘氨酸接合轉移效率最高(3.24×10-6),甘氨酸濃度大于3%時接合轉移效率降低,說明不添加甘氨酸對接合轉移效率無影響。
2. 8 接合轉移子的穩(wěn)定性及PCR驗證
將1.2.3獲得的接合轉移子轉接至無抗性的高氏一號培養(yǎng)基上,生長出菌落后再接種于含50.0 mg/L萘啶酮酸和20.0 mg/L安普霉素的高氏一號培養(yǎng)基上,傳代培養(yǎng)6~8次,隨機挑選4株單菌落分別置于YEME液體培養(yǎng)基中以提取DNA,進行PCR擴增均獲得大小約700 bp的條帶(圖7),表明質粒pSET152已轉入鏈霉菌中并在鏈霉菌中遺傳穩(wěn)定,而以野生型菌株WZS021的DNA為陰性對照未擴增出條帶。將PCR產物膠回收送往生工生物工程(上海)股份有限公司測序,獲得的測序結果在NCBI上進行比對分析,證實其為目的基因片段。
3 討論
pSET152是一種基因整合型質粒,只有整合到染色體上才能穩(wěn)定存在于受體菌中(朱云霞等,2012)。不同鏈霉菌種導入外源基因的方法不同,接合轉移效率差異也很明顯(劉雪嬌等,2012)。本研究結果表明,菌株WZS021可在M10和YEME培養(yǎng)基上生長,但在接合轉移系統(tǒng)中無接合子出現(xiàn),其具體機制尚不清楚,不排除其他培養(yǎng)基更適合該菌接合轉移操作的可能性,下一步研究應選取更多培養(yǎng)基進行檢測;選用的3個熱激溫度中,55 ℃促進孢子預萌發(fā)的效率明顯低于45和50 ℃處理,與一般接合轉移操作(Kieser et al.,2000)中熱激溫度處理結果相同。王芬等(2012)研究發(fā)現(xiàn),供受比為10∶1時最適合Streptomyces griseochromogenes的接合轉移操作;楊卓等(2016)報道供受比為100∶1對肉色吸水鏈霉菌 SH121的接合轉移效率更高。在本研究中,菌株WZS021的接合轉移操作更適合在供受比1∶10條件下完成,說明不同鏈霉菌種在接合轉移操作中與大腸桿菌的競爭情況存在差異。在對安普霉素最小抑菌濃度的測定中發(fā)現(xiàn),3.0 mg/L抗生素足以抑制鏈霉菌生長,但為了避免接合子出現(xiàn)菌落連成一片不利于驗證的情況,本研究選擇50.0 mg/L萘啶酮酸和20.0 mg/L安普霉素進行抗生素濃度篩選??股馗采w時間對接合轉移影響的研究結果表明,鏈霉菌在接合轉移操作中最佳抗生素覆蓋時間為12 h,抗生素覆蓋時間偏長會導致大腸桿菌出現(xiàn),推測菌株WZS021的次生代謝產物中較少或沒有抑制大腸桿菌生長的物質,有別于王航等(2014)對玫瑰孢鏈霉菌NRRL11379接合轉移系統(tǒng)研究中抗生素覆蓋時間最佳為20 h的結果。Mg2+是酶活中心的組成部分,大量研究(楊卓等,2016;張萬垚等,2012;朱云霞等,2012)表明,在一定范圍內Mg2+濃度的增加能提高接合轉移效率。本研究中加入5.0~20.0 mmol/L MgCl2后可較大幅度提高接合轉移效率,但MgCl2濃度大于20.0 mmol/L后接合轉移效率并未隨之升高,推測與高氏一號培養(yǎng)基本身含有少量MgSO4有關,Mg2+濃度過高反而會影響孢子形成。有報道稱適量的甘氨酸可提高S. griseochromogenes(劉雪嬌等,2012)和S. pulveraceus(王芬等,2012)的接合轉移效率,本研究結果與其存在差異,0~3%甘氨酸未影響菌株WZS021的接合轉移效率,甘氨酸濃度大于3%時反而會降低接合轉移效率。
4 結論
本研究確定了適用于固氮鏈霉菌S. chartreusi WZS021的接合轉移條件,建立了一套行之有效的固氮鏈霉菌S. chartreusi WZS021遺傳轉化體系,有助于今后插入標記基因確定該菌株的固氮定殖位點及導入外源基因的操作。
參考文獻:
赫衛(wèi)清,王以光. 2006. 吸水鏈霉菌17997 格爾德霉素部分生物合成基因簇的克隆和分析[J]. 生物工程學報,22(6):902-906.
He W Q,Wang Y G. 2006. Cloning and analysis of geldanamycin partial biosynthetic gene cluster of Streptomyces hygrosco-
picus 17997[J]. Chinese Journal of Biotechnology,22(6):902-906.
孔會利,王超,肖亮,李文成. 2007. 高G+C含量模板進行擴增的高效緩沖液體系的建立[J]. 華中農業(yè)大學學報,25(2):106-109.
Kong H L,Wang C,Xiao L,Li W C. 2007. Establishment of efficient buffer of PCR for template with high G+C content[J]. Journal of Huazhong Agricultural University,25(2):106-109.
李劍峰,楊鑫,張淑卿,杜建雄,劉健. 2015. 2種植物內生固氮菌對燕麥種子萌發(fā)及幼苗生長的效果[J]. 西南農業(yè)學報,28(6):2465-2468.
Li J F,Yang X,Zhang S Q,Du J X,Liu J. 2015. Effects of two endophytic diazotrophs(Klepsiella oxytoca Msp2c and Pseudomonas fluorescence LM531) on seed germination and seedling growth in avena sativa[J]. Southwest China Journal of Agricultural Sciences,28(6):2465-2468.
李楊瑞. 2010. 現(xiàn)代甘蔗學[M]. 北京:中國農業(yè)出版社.
Li Y R. 2010. Modern Sugarcane Science[M]. Beijing:China Agriculture Press.
劉雪嬌,牛銘山,邱榮國,唐莉. 2012. Fostriecin產生菌Streptomyces pulveraceus遺傳轉化體系的建立與優(yōu)化[J]. 微生物學通報,39(3):371-377.
Liu X J,Niu M S,Qiu R G,Tang L. 2012. Establishment and optimization of the conjugal transfer system of fostriecin producer Streptomyces pulveraceus[J]. Microbiology China,39(3):371-377.
劉志恒,姜成林. 2004. 放線菌現(xiàn)代生物學與生物技術[M]. 北京:科學出版社.
Liu Z H,Jiang C L. 2004. Actinobacteria in Modern Biology and Biotechnology[M]. Beijing:Science Press.
莫宏波,白林泉,王勝蘭,楊克. 2004. 大腸桿菌—鏈霉菌高效接合載體的構建及其應用[J]. 生物工程學報,20(5):662-666.
Mo H B,Bai L Q,Wang S L,Yang K. 2004. Construction of effi-
cient conjugal plasmids between Escherichia coli and streptomycetes[J]. Chinese Journal of Biotechnology,20(5):662-666.
王芬,邱榮國,唐莉. 2012. 變構菌素產生菌S. griseochromogenes接合轉移體系建立與優(yōu)化[J]. 大連理工大學學報,53(3):338-342.
Wang F,Qiu R G,Tang L. 2012. Establishment and optimization for conjugal transfer system of tautomycetin-producing strain S. griseochromogenes[J]. Journal of Dalian University of Technology,53(3):338-342.
王航,王文軼,吳旻,彭冉,王旻. 2014. 達托霉素產生菌玫瑰孢鏈霉菌NRRL11379接合轉移系統(tǒng)的建立與優(yōu)化[J]. 藥物生物技術,21(3):194-198.
Wang H,Wang W Y,Wu M,Peng R,Wang M. 2014. Establishment and optimization of a conjugation system for the daptomycin producer Streptomyces roseosporus NRRL11379[J]. Pharmaceutical Biotechnology,21(3):194-198.
吳勝,夏煥章. 2002. 鏈霉菌基因轉移的方法[J]. 生物工程進展,22(1):91-95.
Wu S,Xia H Z. 2002. The methods of gene transfer in Streptomyces[J]. China Biotechnology,22(1):91-95.
楊旻,陶美鳳. 2007. 雷帕霉素產生菌吸水鏈霉菌NRRL5491 接合轉移系統(tǒng)的建立[J]. 華中農業(yè)大學學報,26(5):637-641.
Yang M,Tao M F. 2007. Establishment of a conjugation system for the rapamycin producer Streptomyces hygroscopicus NRRL5491[J]. Journal of Huazhong Agricultural University,26(5):637-641.
楊卓,李佳麗,肖樂,何璟. 2016. 肉色吸水鏈霉菌SH121接合轉移系統(tǒng)的建立[J]. 華中農業(yè)大學學報,35(4):49-55.
Yang Z,Li J L,Xiao L,He J. 2016. Establishing intergeneric conjugation system in Streptomyces carneohygroscopicus SH121[J]. Journal of Huazhong Agricultural University,35(4):49-55.
余姣姣,陶美鳳. 2010. 無機鹽對阿維鏈霉菌接合轉移及異源表達放線紫紅素的影響[J]. 微生物學報,50(11):1556-1561.
Yu J J,Tao M F. 2010. Effect of inorganic salts on the conjugation and heterologous expression of actinorhodin in Streptomyces avermitilis[J]. Acta Microbiologica Sinica,50(11):1556-1561.
張萬垚,魯慧囡,何璟. 2012. 酪蛋白水解物對雷帕霉素產生菌Streptomyces hygroscopicus ATCC29253接合轉移效率的影響[J]. 微生物學報,52(2):198-205.
Zhang W Y,Lu H N,He J. 2012. Effect of casamino acid on intergeneric conjugation in rapamycin-producing Streptomyces hygroscopicus ATCC29253[J]. Acta Microbiologica Sinica,52(2):198-205.
趙斌,何紹江. 2002. 微生物學實驗[M]. 北京:科學出版社.
Zhao B,He S J. 2002. Microbiology Experiment[M]. Beijing:Science Press.
朱云霞,廖思懿,葉江,張惠展. 2012. 抗生素Bagremycin生產菌Streptomyces sp. Tü 4128 接合轉移系統(tǒng)的建立[J]. 華東理工大學學報(自然科學版),38(2):160-164.
Zhu Y X,Liao S Y,Ye J,Zhang H Z. 2012. Development of an intergeneric conjugal transfer system for Streptomyces sp. Tü 4128,a producer of bagremycins[J]. Journal of East China University of Science and Technology(Natural Science Edition),38(2):160-164.
Bierman M,Logan R,OBrien K,Seno E T,Rao R N,Schoner B E. 1992. Plasmid cloning vectors for the conjugal transfer of DNA from Escherichia coli to Streptomycess spp.[J]. Gene,116(1):43-49.
Christensen B B,Sternberg C,Molin S. 1996. Bacterial plasmid conjugation on semi-solid surfaces monitored with the green fluorescent protein(GFP) from Aequoreavictoria as a mar-
ker[J]. Gene,173(1):59-65.
Flett F,Mersinias V,Smith C P. 1997. High efficiency intergeneric conjugal transfer of plasmid DNA from Escherichia coli to methyl DNA restricting Streptomyces[J]. FEMS Microbiology Letters,155:223-229.
Kieser T,Bibb M J,Buttner M J,Chater K F,Hopwood D A. 2000. Practical Streptomyces Genetics[M]. Norwich:The John Innes Foundation,UK.
Sambrook J,F(xiàn)ritsch E F,Maniatis T. 1989. Molecular Cloning:A Laboratory Manual[M]. New York:Cold Spring Harbor Labo-
ratory Press.
Veal D A,Stokes H W,Daggard G. 1992. Genetic exchange in natural microbial communities[J]. Advances in Microbial Ecology,12:383-430.
Wang Z,Solanki M K,Pang F,Singh R K,Yang L T,Li Y R,Li H B,Zhu K,Xing Y X. 2016. Identification and efficiency of a nitrogen-fixing endophytic actinobacterial strain from sugarcane[J]. Sugar Technology,doi:10.1007/s12355-016-0498-y.
(責任編輯 思利華)