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        IL-18對胰腺星狀細胞及其趨化因子CX3CL1表達的影響

        2017-02-20 12:08:42王茜陳浩宇陳潔
        中華胰腺病雜志 2017年1期
        關(guān)鍵詞:趨化因子胰腺纖維化

        王茜 陳浩宇 陳潔

        ·論著·

        IL-18對胰腺星狀細胞及其趨化因子CX3CL1表達的影響

        王茜 陳浩宇 陳潔

        目的 觀察IL-18對胰腺星狀細胞E-鈣黏素(E-cadherin)、α-平滑肌肌動蛋白(α-SMA)及趨化因子CX3CL1表達水平的影響。方法 人胰腺星狀細胞(PSCs)株HPaSteC常規(guī)培養(yǎng)、傳代,應(yīng)用5、25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)72 h,以未干預(yù)細胞為對照組。收集各組細胞,采用RT-PCR和蛋白質(zhì)印跡法檢測細胞E-cadherin、α-SMA、CX3CL1 mRNA及蛋白表達量。結(jié)果 對照組及5、25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組PSCs的E-cadherin mRNA表達量分別為1.03±0.17、0.77±0.15、0.89±0.12、0.54±0.11、0.46±0.06;α-SMA mRNA表達量為1.03±0.19、0.85±0.14、1.33±0.22、1.60±0.14、1.94±0.09;CX3CL1 mRNA表達量為1.01±0.08、0.88±0.25、0.86±0.17、1.58±0.26、1.83±0.13。干預(yù)組E-cadherin mRNA的表達下調(diào),α-SMA及CX3CL1mRNA表達上調(diào),其中100 μg/L干預(yù)組與對照組的差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05或<0.01)。對照組及5、25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組PSCs的E-cadherin蛋白表達量分別為1.00±0.14、1.14±0.04、1.14±0.07、0.85±0.08、0.80±0.06;α-SMA蛋白表達量為1.00±0.02、0.77±0.07、1.29±0.02、1.59±0.07、1.70±0.02;CX3CL1蛋白表達量分別為1.00±0.05、1.03±0.05、1.37±0.06、1.46±0.18、1.45±0.12。干預(yù)組E-cadherin蛋白表達下調(diào),但各組間的差異無統(tǒng)計學(xué)意義;α-SMA蛋白表達上調(diào),25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組與對照組的差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P值均<0.01);CX3CL1蛋白表達上調(diào),其中100 μg/L干預(yù)組與對照組的差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)論 IL-18能激活人PSCs并上調(diào)PSCs趨化因子CX3CL1的表達。

        胰腺; 星形細胞; 胰腺炎,慢性; 趨化因子CX3CL1; 白細胞介素18

        Fund program:Youth Science Foundation,National Natural Science Foundation of China(81300352)

        胰腺星狀細胞(pancreatic stellate cells,PSCs)不僅能分泌多種炎性因子和趨化因子參與炎性過程,而且能分泌膠原,在組織再生和纖維化中發(fā)揮關(guān)鍵作用[1]。PSCs一般處于靜息狀態(tài),不表達α-平滑肌肌蛋白(α-SMA),但被激活后α-SMA表達增加[2]。PSCs的激活是胰腺發(fā)生纖維化的主要原因。趨化因子CX3CL1在急性胰腺炎(AP)及慢性胰腺炎(CP)中發(fā)揮重要作用。研究發(fā)現(xiàn),急性壞死性胰腺炎大鼠及CP患者的血清CX3CL1水平升高[3]。飲酒的CP患者血清CX3CL1水平升高更顯著,因酒精協(xié)同刺激PSCs分泌CX3CL1[4],提示血清CX3CL1水平升高可能具有致病作用。IL-18是IL-1家族的細胞因子,有免疫反應(yīng)調(diào)節(jié)作用[5]。IL-18作用于Th1細胞,刺激干擾素-γ和其他細胞因子的產(chǎn)生,可能通過激活PSCs和上調(diào)趨化因子CX3CL1表達參與CP的胰腺纖維化過程。本研究應(yīng)用不同濃度IL-18干預(yù)PSCs,觀察E-鈣黏素(E-cadherin)、α-SMA、CX3CL1 mRNA和蛋白表達量的變化,探討IL-18的作用機制。

        材料與方法

        一、IL-18干預(yù)人PSCs

        人PSCs株HPaSteC購自Science Cell公司,常規(guī)培養(yǎng)、傳代。取對數(shù)生長期細胞接種于6孔板,每孔5×105個細胞。培養(yǎng)至細胞融合度達80%后在各孔中分別加入終濃度為5、25、50、100 μg/L的IL-18(Biovision公司),以未干預(yù)細胞作為對照組,孵育72 h后收集細胞。

        二、E-cadherin、α-SMA、CX3CL1 mRNA表達量的檢測

        收集IL-18干預(yù)72 h的細胞,用TRIzol(Invitrogen公司)提取細胞總RNA,采用RT試劑盒(Fermentas公司)逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,采用實時PCR法檢測各組細胞E-cadherin、α-SMA、CX3CL1 mRNA表達量,按試劑盒說明書進行操作。E-cadherin正義序列5′-ATTTTTCCCTCGACACCCGAT-3′,反義序列5′-TCCCAGGCGTAGACCAAGA-3′,擴增產(chǎn)物109 bp;α-SMA正義序列5′-CTGCTGAGCGTGAGATTGTC-3′,反義序列5′-TCAAGGGAGGATGAGGATGC-3′,擴增產(chǎn)物103 bp;CX3CL1(FKN)正義序列5′-ACCACGGTGTGACGAAATG-3′,反義序列5′-TGTTGATAGTGGATGAGCAAAGC-3′,擴增產(chǎn)物82 bp;內(nèi)參GAPDH正義序列5′-ACAACTTTGGTATCGTGGAAGG-3′,反義序列5′-GCCATCACGCCACAGTTC-3′,擴增產(chǎn)物101 bp。引物由華大基因設(shè)計并合成。PCR反應(yīng)條件:94℃ 2 min;94℃ 30 s、50℃ 30 s、72℃ 30 s,30個循環(huán)。用illumina eco實時熒光定量PCR儀自帶軟件獲得Ct值,以對照組細胞的表達量為1,采用公式2-△△Ct計算IL-18干預(yù)組細胞 E-cadherin、α-SMA、CX3CL1 mRNA的相對表達量。實驗重復(fù)3次,取平均值。

        三、E-cadherin、α-SMA、CX3CL1蛋白表達量的檢測

        收集上述各組細胞,常規(guī)提取總蛋白,BCA 法定量蛋白后行蛋白質(zhì)印跡法檢測E-cadherin、α-SMA、CX3CL1蛋白表達量,以Tubulin為內(nèi)參。小鼠抗人E-cadherin一抗購自Proteintech公司,工作濃度1∶8 000;小鼠抗人α-SMA一抗購自Abcam公司,工作濃度1∶300;小鼠抗人CX3CL1一抗購自Proteintech公司,工作濃度1∶500;小鼠抗人Tubulin購自Sigma公司,工作濃度1∶5 000;HRP標記羊抗小鼠二抗、HRP標記兔抗羊二抗購自武漢博士德生物工程有限公司,工作濃度1∶50 000。ECL底物液購自Thermo公司。應(yīng)用Image J軟件進行條帶掃描,以目的條帶與內(nèi)參條帶灰度值比表示蛋白相對表達量。

        四、統(tǒng)計學(xué)處理

        結(jié) 果

        一、各組E-cadherin、α-SMA、CX3CL1 mRNA表達量

        對照組及5、25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組PSCs的E-cadherin mRNA表達量分別為1.03±0.17、0.77±0.15、0.89±0.12、0.54±0.11、0.46±0.06,呈濃度依賴性下降趨勢,其中100 μg/L干預(yù)組與對照組的差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=3.08,P<0.05)。

        對照組及5、25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組PSCs 的α-SMA mRNA表達量分別為1.03±0.19、0.85±0.14、1.33±0.22、1.60±0.14、1.94±0.09,呈濃度依賴性升高趨勢,其中100 μg/L干預(yù)組與對照組的差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=4.27,P<0.05)。

        對照組及5、25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組PSCs 的CX3CL1 mRNA表達量分別為1.01±0.08、0.88±0.25、0.86±0.17、1.58±0.26、1.83±0.13,5、25 μg/L IL-18干預(yù)組表達量低于對照組,50、100 μg/L干預(yù)組表達量高于對照組,其中100 μg/L干預(yù)組與對照組的差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=5.32,P<0.01)。

        二、各組E-cadherin、α-SMA、CX3CL1 蛋白表達量(圖1)

        對照組及5、25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組PSCs 的E-cadherin 蛋白表達量分別為1.00±0.14、1.14±0.04、1.14±0.07、0.85±0.08、0.80±0.06,呈濃度依賴性下降趨勢,但各組間的差異無統(tǒng)計學(xué)意義。

        圖1 對照組(1)及5、25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組(2、3、4、5)PSCs的E-cadherin、α-SMA、CX3CL1蛋白表達

        對照組及5、25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組PSCs的α-SMA蛋白表達量分別為1.00±0.02、0.77±0.07、1.29±0.02、1.59±0.07、1.70±0.02,呈濃度依賴性升高趨勢,25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組與對照間差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t值分別為9.90、7.88、26.84,P值均<0.01)。

        對照組及5、25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)組PSCs的CX3CL1蛋白表達量分別為1.00±0.05、1.03±0.05,1.37±0.06、1.46±0.18、1.45±0.12,呈濃度依賴性升高趨勢,其中100 μg/L干預(yù)組與對照組的差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=3.40,P<0.05)。

        討 論

        目前為止,人們對于CP發(fā)病機制的了解還處于探索階段。趨化因子CX3CL1是CX3C家族獨特成員,是一種具有黏附功能的炎性趨化因子,它參與腎臟纖維化的病理生理過程[6]。本課題組曾報道[7],CP大鼠的胰腺腺泡細胞、胰腺導(dǎo)管上皮細胞、炎癥細胞、胰島細胞及α-SMA陽性的活化PSCs均高表達IL-18和CX3CL1,提示IL-18和CX3CL1可能參與CP的纖維化進程。田軼倫和姜德謙[8]應(yīng)用25、50、100 μg/L IL-18干預(yù)人臍靜脈內(nèi)皮細胞,結(jié)果顯示IL-18能夠上調(diào)CX3CL1的表達并增強內(nèi)皮細胞的趨化作用。Schneider等[9]報道,CP患者血清IL-18水平顯著升高。王麗敏等[10]報道,IL-18可能通過上調(diào)CX3CL1的表達增強其趨化作用來參與炎性反應(yīng)。PSCs激活后CX3CL1表達增加,進一步促進胰腺纖維化形成。

        本研究結(jié)果顯示,100 μg/L IL-18干預(yù)能夠促進α-SMA mRNA和蛋白表達增加,刺激PSCs激活;同時上調(diào)PSCs的CX3CL1表達,參與胰腺纖維化進程。關(guān)于CX3CL1表達上調(diào)機制的研究,目前相對較少。Uchida1等[5]報道,酒精通過激活PSCs的細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)和解聯(lián)蛋白-金屬蛋白酶結(jié)構(gòu)域17(a disintegrin and metalloprotease domain,ADAM17),協(xié)同刺激PSCs釋放CX3CL1,ERK/ MAPK參與CX3CL1基因轉(zhuǎn)錄和產(chǎn)物分泌,但也存在其他因素參與的可能,如NF-κB或者干擾素調(diào)節(jié)因子[5]。關(guān)于PSCs激活后CX3CL1表達上調(diào)機制還有待更多研究。

        [1] Apte MV, Haber PS, Applegate TL, et al. Periacinar stellate shaped cells in rat pancreas: identification, isolation, and culture[J]. Gut, 1998,43(1):128-133.

        [2] Phillips PA, McCarroll JA, Park S, et al. Rat pancreatic stellate cells secrete matrix metalloproteinases: implications for extracellular matrix turnover[J]. Gut, 2003,52(2):275-282.

        [3] Huang LY, Chen P, Xu LX, et al. Fractalkine as a marker for assessment of severe acute pancreatitis[J]. J Dig Dis, 2012,13(4):225-231.DOI: 10.1111/j.1751-2980.2012.00580.x.

        [4] Uchida M, Ito T, Nakamura T, et al. ERK pathway and sheddases play an essential role in ethanol-induced CX3CL1 release in pancreatic stellate cells[J]. Lab Invest, 2013,93(1):41-53.DOI:10.1038/labinvest.2012.156.

        [5] Dinarello CA. IL-18: A TH1-inducing, proinflammatory cytokine and new member of the IL-1 family[J]. J Allergy Clin Immunol, 1999,103(1pt1):11-24.

        [6] Koziolek MJ, Muller GA, Zapf A, et al. Role of CX3C-chemokine CX3C-L/fractalkine expression in a model of slowly progressive renal failure[J]. Nephrol Dial Transplant, 2010,25(3):684-698.DOI:10.1093/ndt/gfp602.

        [7] 陳浩宇, 王茜, 陳潔. IL-18及趨化因子CX3CL1在慢性胰腺炎大鼠胰腺纖維化中的表達及其意義[J]. 中華胰腺病雜志, 2016,16:115-118.DOI:10.3760/cma.j.issn.1647-1935.2016.02.009.

        [8] 田軼倫, 姜德謙. 白細胞介素-18對Fractalkine表達和趨化作用的影響[J]. 實用預(yù)防醫(yī)學(xué), 2009,16:672-675.

        [9] Schneider A, Haas SL, Hildenbrand R, et al. Enhanced expression of interleukin-18 in serum and pancreas of patients with chronic pancreatitis[J]. World J Gastroenterol, 2006,12(40):6507-6514.

        [10] 王麗敏, 李春玉, 張佳濱,等.分形素趨化因子在腎臟纖維化大鼠腎組織中的表達及IL-18結(jié)合蛋白對其表達的影響[J]. 中國當代兒科雜志, 2013,15:1134-1138.DOI:10.7499/j.issn.1008-8830.2013.12.024.

        (本文編輯:屠振興)

        The influence of IL-18 on pancreatic stellate cells and CX3CL1 expression

        WangQian,ChenHaoyu,ChenJie.

        DepartmentofGastroenterology,ChanghaiHospital,SecondMilitaryMedicalUniversity,Shanghai200433,China

        Objective To evaluate the effect of IL-18 on the expression of E-cadherin, α-SMA and CX3CL1 in pancreatic stellate cells(PSCs). Methods The human PSC line HPaSteC was routinely cultured and passaged. Five, 25, 50 and 100 μg/L IL-18 was used to treat PSCs for 72 h and the untreated PSCs were used as control. Treated and untreated cells were both collected, and RT-PCR and Western blot were used to detect mRNA and protein expression of E-cadherin, α-SMA and CX3CL1 respectively. Results The mRNA expressions of E-cadherin in control group and 5, 25, 50 and 100 μg/L IL-18 treated group were 1.03±0.17, 0.77±0.15, 0.89±0.12, 0.54±0.11 and 0.46±0.06. The mRNA expression of α-SMA were 1.03±0.19, 0.85±0.14, 1.33±0.22, 1.60±0.14 and 1.94±0.09;The mRNA expression of CX3CL1 were 1.01±0.08, 0.88±0.25, 0.86±0.17, 1.58±0.26 and 1.83±0.13. The mRNA expression of E-cadherin in IL-18 treated group were down-regulated , while the mRNA expression of α-SMA and CX3CL1 were up-regulated, and the differences between control and IL-18 100 μg/L treated group were statistically significant (P<0.05 or <0.01). The protein expression of E-cadherin in control group and 5, 25, 50 and 100 μg/L IL-18 treated group were 1.00±0.14,1.14±0.04, 1.14±0.07, 0.85±0.08 and 0.80±0.06. The protein expression of α-SMA were 1.00±0.02, 0.77±0.07, 1.29±0.02, 1.59±0.07 and 1.70±0.02;The protein expression of CX3CL1 were 1.00±0.05, 1.03±0.05, 1.37±0.06, 1.46±0.18 and 1.45±0.12. The protein expression of E-cadherin was down-regulated but no significant differences were observed among different groups. The protein expression of α-SMA was up-regulated and the differences between control group and 25, 50 and 100 μg/L IL-18 treated groups were statistically significant (allP<0.01). The protein expression of CX3CL1 was up-regulated and the differences between control group and 100 ng/ml IL-18 treated group were statistically significant (P<0.05). Conclusions IL-18 can activate PSCs and up-regulate the expression of chemokine CX3CL1.

        Pancreas; Astrocytes; Panceatitis, chronic; Chemokine CX3CL1; Interleukin-18

        10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2017.01.008

        200433 上海,第二軍醫(yī)大學(xué)長海醫(yī)院消化內(nèi)科

        陳潔,Email: jiechen0115@sohu.com

        國家自然基金青年科學(xué)基金項目(81300352)

        2016-09-19)

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