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        不同免疫親和柱對(duì)飼料中黃曲霉毒素檢測(cè)結(jié)果的影響研究

        2017-01-08 08:42:24司慧民穆偉峰吳志明
        飼料工業(yè) 2017年14期
        關(guān)鍵詞:親和柱偶聯(lián)黃曲霉

        ■司慧民 穆偉峰 吳志明*

        (1.河南省獸藥飼料監(jiān)察所,河南鄭州450008;2.新鄉(xiāng)市畜產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)測(cè)檢驗(yàn)中心,河南新鄉(xiāng)453200)

        黃曲霉毒素(Aflatoxin AFT)是由黃曲霉(Aspergil?lus flavus)、寄生曲霉(A.parasiticus)、特異曲霉(A.nomius)和假溜曲霉(A.pseudotamarii)這四種曲霉屬真菌產(chǎn)生的次級(jí)代謝產(chǎn)物,是一組化學(xué)結(jié)構(gòu)類似的化合物,主要有黃曲霉B1、B2、G1、G2(Aflatoxin B1、B2、G1、G2),其中AFB1在飼料中最為常見(jiàn),毒性最強(qiáng),其毒性是氰化鉀的10倍,砒霜的68倍。黃曲霉毒素早在1993年就被世界衛(wèi)生組織(WHO)劃定為Ⅰ類致癌物,畜禽食入后,能迅速破壞肝臟、腎臟、脾臟等解毒和免疫器官,降低免疫力,抑制生長(zhǎng),并能在動(dòng)物組織中蓄積,嚴(yán)重危害動(dòng)物健康和畜產(chǎn)品安全。因此,對(duì)飼料及飼料原料中黃曲霉毒素的檢測(cè)工作顯得尤為重要,目前常用的檢測(cè)方法有薄層層析(TLC)、高效液相色譜(HPLC)、質(zhì)譜分析(MS)和酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)等。TLC法前處理繁瑣,提取凈化不夠理想,提取液雜質(zhì)較多時(shí)影響展開(kāi)斑點(diǎn)的熒光強(qiáng)度,而雙向展開(kāi)雖避免了雜質(zhì)干擾,但增加了操作步驟和時(shí)間。ELISA方法操作簡(jiǎn)單,但容易出現(xiàn)假陽(yáng)性。由于免疫親和層析柱根據(jù)抗原抗體結(jié)合反應(yīng),可特異性的將真菌毒素從提取液中分離出來(lái),提高了熒光分析的靈敏性,降低檢測(cè)限,所以近幾年來(lái)被廣泛應(yīng)用于霉菌毒素的凈化處理。隨著國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)《飼料中黃曲霉毒素B1、B2、G1、G2的測(cè)定免疫親和柱凈化——高效液相色譜法》(GB/T 30955—2014)的發(fā)布實(shí)施,更促進(jìn)了免疫親和柱在飼料霉菌毒素檢測(cè)的廣泛推廣。國(guó)際、國(guó)內(nèi)的生物技術(shù)公司也紛紛推出各自的免疫親和層析柱,但不同品牌柱子的特異性、重現(xiàn)性和穩(wěn)定性也良莠不齊,故筆者選取兩家公司的黃曲霉毒素免疫親和柱進(jìn)行對(duì)比試驗(yàn)。

        1 儀器與材料

        1.1 儀器與設(shè)備

        Waters2695高效液相色譜儀(美國(guó)Waters公司)、熒光檢測(cè)器(美國(guó)Agilent公司)、光化學(xué)衍生系統(tǒng)(美國(guó)Romer公司)、振蕩器(金壇市信誠(chéng)試驗(yàn)儀器制造廠)、玻璃纖維濾紙(英國(guó)Whatman公司)、PL403IC型電子分析天平(梅特勒上海有限公司)。

        1.2 試驗(yàn)材料

        A公司、B公司相同批次黃曲霉毒素免疫親和柱各一盒(25支裝);黃曲霉毒素陽(yáng)性檢出飼料兩份,編號(hào):Y1、Y2;空白飼料一份,編號(hào)為K;甲醇,乙腈,氯化鈉。AFB1、B2、G1、G2混合標(biāo)準(zhǔn)品(上海安普科學(xué)儀器有限公司),PBS緩沖溶液。實(shí)驗(yàn)室用水符合GB/T—6682中二級(jí)用水規(guī)定,標(biāo)準(zhǔn)溶液和流動(dòng)相用水符合一級(jí)用水規(guī)定。提取所需試劑為分析純,其他試劑均為色譜級(jí)。

        2 試驗(yàn)方法

        2.1 液相色譜條件

        色譜柱:C18柱(4.6 mm×150 mm,5 μm),流動(dòng)相:甲醇∶水(45∶55)溶液,流速:0.8 ml/min。檢測(cè)波長(zhǎng):激發(fā)波長(zhǎng)360 nm;發(fā)射波長(zhǎng)440 nm。光化學(xué)衍生系統(tǒng):光化學(xué)衍生器(連接于色譜柱后,然后通向熒光檢測(cè)器)。柱溫30℃。進(jìn)樣量20 μl。

        2.2 陽(yáng)性樣品制備

        準(zhǔn)確移取適量的黃曲霉毒素混合貯備液,50℃水浴下,將苯吹干,用適量的甲醇∶水(45∶55)溶液定容為混合標(biāo)準(zhǔn)工作液,AFB1、B2、G1、G2濃度分別為10、3、10、3 ng/ml,準(zhǔn)確移取該工作液加入到兩份空白飼料中做AFB1、B2、G1、G2含量分別為10、3、10、3 μg/kg的陽(yáng)性添加,樣品編號(hào)分別為T(mén)1、T2。

        2.3 提取

        準(zhǔn)確稱取樣品K、Y1、Y2、T1、T2(精確至0.1mg)25 g于250 ml具塞錐形瓶中,加入5.0 g氯化鈉及準(zhǔn)確加入125 ml甲醇∶水(8∶2)溶液,振蕩30 min。定量濾紙過(guò)濾,準(zhǔn)確移取5 ml濾液并加入15 mlPBS溶液稀釋,用玻璃纖維濾紙過(guò)濾1~2次,至濾液澄清,以備A、B公司免疫親和柱用。

        2.4 凈化

        將以上兩組提取液分別按照A、B兩公司免疫親和柱說(shuō)明書(shū)進(jìn)行凈化處理,最終定容于進(jìn)樣瓶中,供色譜檢測(cè)用。

        2.5 色譜測(cè)定

        將標(biāo)準(zhǔn)工作溶液B和以上兩組試液按照“試驗(yàn)方法 2.1”液相色譜條件進(jìn)行檢測(cè),經(jīng)過(guò)與AFB1、B2、G1、G2標(biāo)準(zhǔn)溶液譜圖比較響應(yīng)值得到試樣中的質(zhì)量濃度。

        3 結(jié)果與分析

        3.1 液相圖譜結(jié)果與分析

        將以上樣品通過(guò)高效液相色譜檢測(cè)獲得圖譜見(jiàn)圖1~圖6,其中圖3和圖5為用空白飼料K做陽(yáng)性添加后分別用A、B兩公司黃曲霉毒素免疫親和柱凈化后的結(jié)果。圖3和圖5對(duì)比顯示:圖3雜峰較多,雜質(zhì)峰面積較大,AFB2拖尾嚴(yán)重,四種毒素的峰型較差;圖4和圖6為同一個(gè)陽(yáng)性樣品Y1分別用A、B兩公司免疫親和柱凈化后的結(jié)果,對(duì)比顯示:該飼料為AFB1檢出,但圖4基本未檢出且很難對(duì)其進(jìn)行定量。據(jù)此分析:雖然同為黃曲霉毒素免疫親和柱,但A公司免疫親和柱凈化作用較差,對(duì)毒素的特異性吸附能力弱,從而影響樣品的檢測(cè)結(jié)果。

        圖1 AFB1、B2、G1、G2標(biāo)準(zhǔn)品圖譜

        圖2 空白樣品K圖譜

        圖3 T1圖譜(A公司柱子凈化)

        圖4 Y1圖譜(A公司柱子凈化)

        圖5 T1圖譜(B公司柱子凈化)

        圖6 Y1圖譜(B公司柱子凈化)

        3.2 數(shù)據(jù)結(jié)果與分析(見(jiàn)表1、表2)

        將以上樣品圖譜進(jìn)行積分處理并與標(biāo)準(zhǔn)品圖譜響應(yīng)值比較,可獲得最終樣品殘留量,從表1和表2的對(duì)比可知:使用A公司柱子的樣品檢測(cè)結(jié)果明顯低于B公司,其中陽(yáng)性添加樣品T1用A公司柱子凈化后AFB1、B2、G1、G2的回收率通過(guò)檢測(cè)結(jié)果并經(jīng)添加量計(jì)算分別為67.3%、74.3%、68.2%、77.7%;而用B公司柱子凈化后回收率分別為104.3%、97.3%、97.7%、98.3%,A公司免疫親和柱的回收率遠(yuǎn)低于B公司柱子,這也導(dǎo)致表1、表2中陽(yáng)性樣品Y1、Y2的最終檢測(cè)結(jié)果差別較大。

        表1 A公司柱子凈化后檢測(cè)結(jié)果(μg/kg)

        表2 B公司柱子凈化后檢測(cè)結(jié)果(μg/kg)

        4 討論

        免疫親和柱凈化樣品原理是真菌毒素單克隆抗體通過(guò)免疫親和吸附作用特異性地將毒素分子從待檢樣品的復(fù)雜組分中分離出來(lái),所以單克隆抗體的特異性直接影響到免疫親和柱的凈化作用。一些公司生產(chǎn)單克隆抗體大多是通過(guò)動(dòng)物直接免疫獲得的抗體產(chǎn)品,多數(shù)沒(méi)有實(shí)現(xiàn)規(guī)模制備,所以抗體產(chǎn)量低、特異性差、產(chǎn)品不穩(wěn)定??贵w與活化基體的偶聯(lián)方式也影響抗體的親合力,隨機(jī)偶聯(lián)時(shí),基體與抗體的結(jié)合位點(diǎn)不固定,抗體的抗原結(jié)合位點(diǎn)可能被占用,或者擠占了抗原結(jié)合位點(diǎn)的空間結(jié)構(gòu),導(dǎo)致與抗體失去親和力。所以隨機(jī)偶聯(lián)后的免疫活性一般較低;定向偶聯(lián)是先將protein A或protein G固定在基體上,protein A或protein G只與IgG的Fc區(qū)相結(jié)合,然后用二甲基庚二酸酯等化學(xué)交聯(lián)劑使抗體(多抗或單抗)與pro?tein A或protein G定向偶聯(lián),抗體上的抗原結(jié)合位點(diǎn)則處于游離狀態(tài)。黃昕等的試驗(yàn)研究表明,使用protein A的定向偶聯(lián)抗原結(jié)合容量是隨機(jī)偶聯(lián)的1.8倍,說(shuō)明定向偶聯(lián)有助于提高免疫親和吸附劑的抗原結(jié)合容量。所以,同樣是免疫親和柱但其凈化效果卻大相徑庭,導(dǎo)致檢測(cè)結(jié)果出現(xiàn)較大偏差,在按照GB/T 30955—2014進(jìn)行試驗(yàn)操作時(shí)很難發(fā)現(xiàn)免疫親和柱對(duì)樣品檢測(cè)結(jié)果的影響,所以其它檢測(cè)機(jī)構(gòu)在使用該方法時(shí)務(wù)必考察免疫親和柱的各種性能后再?zèng)Q定是否購(gòu)買使用,選擇使用正確的免疫親和柱來(lái)保證檢測(cè)結(jié)果的科學(xué)公正。

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