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        高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同時(shí)測(cè)定飼料中9種霉菌毒素及其代謝物

        2016-10-16 01:18:56曲寶涵穆阿麗
        分析科學(xué)學(xué)報(bào) 2016年1期
        關(guān)鍵詞:實(shí)驗(yàn)檢測(cè)

        莊 倩, 曲寶涵, 李 彥, 吳 燕, 穆阿麗, 李 輝

        (1.青島農(nóng)業(yè)大學(xué)化學(xué)與藥學(xué)院,山東青島 266109;2.青島市飼料獸藥檢測(cè)站,山東青島 266071)

        霉菌毒素是真菌在谷物或飼料上生長(zhǎng)繁殖過(guò)程中產(chǎn)生的有毒二次代謝產(chǎn)物,其種類繁多,在收獲、存儲(chǔ)或加工過(guò)程中只要條件適宜都有可能產(chǎn)生。霉菌毒素的物理性質(zhì)非常穩(wěn)定,它可長(zhǎng)時(shí)間留存在飼料、糧食等作物中,動(dòng)物攝入含有霉菌毒素的飼料后可使其組織器官受損,甚至誘發(fā)癌變,而受其污染的食物也嚴(yán)重影響著人體健康乃至危及生命[1,2]。據(jù)統(tǒng)計(jì),世界上大約有25%的谷物遭受各種霉菌污染,而且隨著全球飼料谷物貿(mào)易的增加,動(dòng)物飼料中不同產(chǎn)地谷物混合的機(jī)會(huì)增加,進(jìn)而導(dǎo)致飼料中同時(shí)含有多種霉菌毒素的幾率大大提高。因此,研究霉菌毒素的檢測(cè)方法日益受到人們的重視。近年來(lái),霉菌毒素檢測(cè)有薄層色譜法、酶聯(lián)免疫法、高效液相法和液質(zhì)聯(lián)用法等方法[3 - 6]。傳統(tǒng)的薄層色譜法檢測(cè)種類單一而且前處理步驟繁瑣,酶聯(lián)免疫法雖簡(jiǎn)便快速但是易受雜質(zhì)干擾影響定量結(jié)果。

        高效液相色譜法和液-質(zhì)聯(lián)用技術(shù)是目前常用的霉菌毒素的分析檢測(cè)方法,其中液-質(zhì)聯(lián)用法具有選擇性高、靈敏度好、可同時(shí)完成多組分檢測(cè)的優(yōu)點(diǎn)。本實(shí)驗(yàn)建立了一種對(duì)飼料中9種霉菌毒素及其代謝物同時(shí)檢測(cè)的高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(HPLC-MS/MS)方法,為霉菌毒素檢測(cè)提供參考。

        1 實(shí)驗(yàn)部分

        1.1 儀器與試劑

        1200 Series液相色譜儀,6410 Triple Quad LC/MS串聯(lián)質(zhì)譜儀(美國(guó),Agilent公司);Agilent C18柱(150×2.1 mm,3.5 μm);Techcomp CT15RT型臺(tái)式高速冷凍離心機(jī);IKAMS 3 Basic微型振蕩器;HY-6雙層調(diào)速振蕩器;KQ-250B超聲波清洗器;Organomation Associates 5085型氮吹儀。

        甲醇、乙腈、正己烷(色譜純,美國(guó)Sigma-Alorich公司);乙酸銨(色譜純,英國(guó)Alfa Aesar公司);甲酸(色譜純,天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司);NaCl(分析純,天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司)。實(shí)驗(yàn)用水為去離子水。

        標(biāo)準(zhǔn)品(純度>98%):黃曲霉毒素B1、B2、G1、G2均購(gòu)自Supelco公司。T-2毒素、HT-2毒素、玉米赤霉烯酮均購(gòu)自Pribolab公司,β-玉米赤霉烯醇和β-玉米赤霉醇購(gòu)自Sigma公司。標(biāo)準(zhǔn)品儲(chǔ)備液:黃曲霉毒素B1、B2為液體標(biāo)準(zhǔn)品,濃度為3 μg/mL。黃曲霉毒素G1、G2、T-2毒素、HT-2毒素、玉米赤霉烯酮、β-玉米赤霉烯醇和β-玉米赤霉醇為固體標(biāo)準(zhǔn)品,將其分別用乙腈溶解定容,濃度為10 mg/L,于-20 ℃保存。標(biāo)準(zhǔn)品中間液:分別移取黃曲霉毒素B1、B2、G1、G2、T-2毒素、HT-2毒素、玉米赤霉烯酮、β-玉米赤霉烯醇和β-玉米赤霉醇適量,用甲醇稀釋,配成1 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)品中間液,備用。

        1.2 樣品前處理

        稱取5.0 g樣品于50 mL離心管中,加入1 g NaCl和25 mL乙腈-水(85∶15),振蕩20 min后渦旋混勻30 s,在10 000 r/min下離心5 min。移取5 mL上清液以穩(wěn)定流速過(guò)TC-M160多功能凈化柱(時(shí)間不少于60 s),抽干,流出液收集于刻度試管中,于60 ℃下氮?dú)獯蹈?。殘?jiān)? mL乙腈-水(1∶1),渦混30 s溶解,過(guò)0.22 μm濾膜后,上機(jī)待測(cè)。

        1.3 色譜及質(zhì)譜條件

        色譜條件:色譜柱:Agilen C18柱(150×2.1 mm,3.5 μm);流動(dòng)相:A:水(0.1%甲酸+5 mmol/L乙酸銨),B:甲醇(0.1%甲酸);梯度洗脫程序?yàn)?0~0.5 min,10%B;0.5~3.0 min,10%~40%B;3.0~6.0 min,40%~45%B;6.0~12.0 min,45%~95%B;12.0~14.0 min,95%B;14.0~14.1 min,95%~10%B;14.1~20.0 min,10%B。柱溫:40 ℃;流速:0.3 mL/min;進(jìn)樣量:10 μL。

        質(zhì)譜條件:離子源:ESI;掃描方式:采用正負(fù)離子同時(shí)掃描,黃曲霉毒素類、T-2毒素和HT-2毒素為正離子監(jiān)測(cè)模式,玉米赤霉烯酮及其代謝物為負(fù)離子監(jiān)測(cè)模式;霧化氣:氮?dú)?;離子噴霧電壓:3 500 V(+)/3 500 V(-);霧化氣溫度及流量:350 ℃、9 L/min;噴霧器壓力:35 psi;鞘流氣溫度及流量:350 ℃、11 L/min。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 提取溶劑及溶劑比例的選擇

        圖1 三種提取溶劑對(duì)待測(cè)物的提取率(添加20 μg/kg)Fig.1 Extraction efficiency of the analytes in three extraction solvents(add 20 μg/kg)

        現(xiàn)行我國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)[7,8]均采用高效液相色譜法對(duì)單一種類的霉菌毒素進(jìn)行檢測(cè),前處理用乙腈-水進(jìn)行提取。有一些研究者曾對(duì)不同溶劑提取進(jìn)行比較[9 - 12]。本實(shí)驗(yàn)分別采用乙腈-水、甲醇-水和丙酮-水作為提取溶劑對(duì)樣品進(jìn)行提取。由圖1可知,乙腈-水的提取率最高,因此采用乙腈-水作為提取溶劑。

        分別用體積比95∶5、90∶10、85∶15、80∶20、75∶25、70∶30的乙腈-水溶液進(jìn)行提取,結(jié)果表明水的比例過(guò)大可能導(dǎo)致水溶性雜質(zhì)增多且氮吹時(shí)間過(guò)長(zhǎng),而乙腈比例過(guò)大則會(huì)影響部分目標(biāo)物的提取效果,當(dāng)乙腈-水為85∶15時(shí)對(duì)各組分的提取效果最好。

        2.2 凈化柱的選擇

        黃曲霉毒素類、玉米赤霉烯酮及其代謝物、T-2毒素和HT-2毒素的性質(zhì)結(jié)構(gòu)差異大,但極性較弱,因此本實(shí)驗(yàn)選取了Pribolab的PriboFast?M226多功能凈化柱、Waters的Oasis HLB固相萃取小柱和R-Biopharm的TC-M160多功能凈化柱進(jìn)行比較。結(jié)果表明,HLB柱的凈化效果不是很理想,凈化時(shí)吸附在柱上的部分非極性雜質(zhì)也會(huì)被洗脫下來(lái),影響測(cè)定結(jié)果。多功能凈化柱的凈化原理是采取多重復(fù)合填料吸附脂肪、蛋白質(zhì)、色素及碳水化合物等干擾物質(zhì),可同時(shí)凈化多種目標(biāo)組分,經(jīng)實(shí)驗(yàn)得出經(jīng)M226柱凈化后HT-2毒素、β-玉米赤霉烯醇和β-玉米赤霉醇的回收率較低,而TC-M160柱則均能使9種目標(biāo)化合物得到良好的凈化,因此采用TC-M160柱作為凈化柱進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

        2.3 流動(dòng)相的選擇

        大多數(shù)霉菌毒素易溶于甲醇或乙腈,所以本實(shí)驗(yàn)選擇甲醇和乙腈作為流動(dòng)相進(jìn)行比較,為了利于正負(fù)離子模式下各組分的離子化,在流動(dòng)相中加入0.1%甲酸和5 mmol/L乙酸銨。結(jié)果表明,反相色譜中乙腈極性小更易洗脫固定相上吸附的化合物,但是在正負(fù)離子同時(shí)掃描的模式下,出峰過(guò)快使得保留時(shí)間相近的組分不易分開,而且采用乙腈作為流動(dòng)相時(shí)離子化程度比甲醇低,使其離子豐度下降,靈敏度也降低(圖2),因此本實(shí)驗(yàn)采用甲醇作為流動(dòng)相。進(jìn)一步優(yōu)化流動(dòng)相的比例及梯度洗脫條件后,9種待測(cè)組分的色譜分離效果良好,而且分析時(shí)間在20 min以內(nèi)(圖3),可滿足快速檢測(cè)的目的。

        圖2 不同流動(dòng)相下待測(cè)物的信噪比(S/N)(添加10 μg/kg)Fig.2 Signal to noise ratio(S/N) by using different mobile phases(add 10 μg/kg)

        圖3 霉菌毒素及其代謝物的總離子流(TIC)色譜圖Fig.3 TIC chromatograms of mycotoxins and metabolins1.Aflatoxin G2;2.Aflatoxin G1;3.Aflatoxin B2;4.Aflatoxin B1;5,6.HT-2 toxin,β -Zearalanol;7.β -Zearalenol;8.T-2 toxin;9.Zearalenone.

        2.4 質(zhì)譜條件的優(yōu)化

        黃曲霉毒素類、T-2毒素及HT-2毒素這幾種目標(biāo)化合物在正離子掃描過(guò)程中形成加氫準(zhǔn)分子離子峰進(jìn)而在碰撞時(shí)碎裂生成子離子;而玉米赤霉烯酮類由于結(jié)構(gòu)中的羥基會(huì)使其在質(zhì)譜檢測(cè)時(shí)容易失去質(zhì)子,產(chǎn)生[M-H]-的分子離子,因此本實(shí)驗(yàn)采用正負(fù)離子同時(shí)掃描的多反應(yīng)檢測(cè)模式進(jìn)行檢測(cè)。質(zhì)譜檢測(cè)時(shí),通過(guò)碎裂電壓(Fragmentor)來(lái)控制碰撞誘導(dǎo)解離(CID),碎裂電壓過(guò)低會(huì)影響母離子傳輸效率,過(guò)高則使母離子在傳輸時(shí)發(fā)生解離降低其靈敏度。另一參數(shù)碰撞能量(CE)則影響碎片離子峰,過(guò)低時(shí)離子難以分解;過(guò)高又會(huì)使離子碎裂過(guò)多,干擾檢測(cè)。因此,本實(shí)驗(yàn)經(jīng)全掃描確定母離子的質(zhì)荷比,在單離子檢測(cè)模式下優(yōu)化碎裂電壓,確保母離子盡可能多的到達(dá)碰撞池,再由子離子掃描確定最豐富及最穩(wěn)定的子離子,最終在多離子檢測(cè)(MRM)模式下找到最大響應(yīng)值時(shí)的碰撞能量。優(yōu)化的各項(xiàng)質(zhì)譜參數(shù)見表3。9種霉菌毒素及其代謝物均能得到較好的分離,其結(jié)果符合歐盟2002/657/EC號(hào)決議《質(zhì)譜分析方法鑒定點(diǎn)數(shù)》[13]中對(duì)待測(cè)物定性及定量的要求。

        表3 9種霉菌毒素及其代謝物的質(zhì)譜優(yōu)化條件

        2.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線、檢出限和定量限

        飼料中的基質(zhì)成分復(fù)雜,會(huì)對(duì)霉菌毒素的分析過(guò)程有顯著干擾,并影響分析結(jié)果的準(zhǔn)確性,因此本研究在繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線時(shí)配制與檢測(cè)樣品相同基質(zhì)的混合標(biāo)準(zhǔn)系列工作液,其濃度為2、5、10、20、50、100 μg/L。然后以9種霉菌毒素定量離子的峰面積(y)對(duì)濃度(x,μg/L)梯度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果表明被測(cè)霉菌毒素及其代謝物在2.0~100 μg/L范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。按照1.2節(jié)的方法對(duì)樣品處理后上機(jī)檢測(cè),以3倍信噪比(S/N=3)為檢出限(LOD),10倍信噪比(S/N=10)為定量限(LOQ)的結(jié)果見表4。

        表4 霉菌毒素及其代謝物的線性方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限和定量限(n=6)

        2.6 方法回收率和精密度

        飼料的種類多種多樣,其中的成分也有所不同,因此本實(shí)驗(yàn)分別對(duì)飼喂時(shí)常用的玉米粉、豬用配合飼料和肉雞肉鴨自配料添加了5、20、50 μg/L 3個(gè)濃度水平混標(biāo)溶液做加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn),根據(jù)相應(yīng)基質(zhì)外標(biāo)曲線定量,再就其精密度(RSD)進(jìn)行考察。通過(guò)表5的計(jì)算結(jié)果可知,其回收率在67.5%~103.5%之間,日內(nèi)和日間的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)均不大于15%,表明方法精密度良好。

        表5 不同種類飼料的加標(biāo)回收率及精密度(n=3)

        (續(xù)表5)

        CompoundAdded(μg/L)Corn mealCompound feed for pigCompound feed for chicken and duckRecovery(%)Intra-dayRSD(%)Inter-dayRSD(%)Recovery(%)Intra-dayRSD(%)Inter-dayRSD(%)Recovery(%)Intra-dayRSD(%)Inter-dayRSD(%)5074.77.73.785.07.611.277.93.94.6Zearalenone575.34.31.784.03.95.375.35.35.020101.65.52.978.72.38.078.15.94.85083.82.80.895.96.87.482.44.45.7β-Zearalenol567.53.25.370.88.010.969.35.511.42075.62.36.272.02.810.380.07.15.35078.09.32.774.87.97.879.17.18.4β-Zearalanol568.811.98.970.28.914.871.66.710.12069.27.55.867.91.410.877.95.613.95075.16.86.375.22.37.781.75.610.7

        2.7 穩(wěn)定性和重復(fù)性實(shí)驗(yàn)

        取空白豬用配合飼料作為基質(zhì)按1.2節(jié)方法配制10 ng/mL混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,在0、5、10、15、20、25、30 h內(nèi)分別進(jìn)樣測(cè)定,9種霉菌毒素的RSD在3.2%~8.7%之間,說(shuō)明飼料基質(zhì)對(duì)標(biāo)準(zhǔn)品溶液基本沒有干擾,基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液的穩(wěn)定性好。

        再稱取空白飼料樣品5.0 g,平行取樣6份,精密加入中間濃度的9種霉菌毒素混標(biāo)溶液適量,按1.2節(jié)方法處理后進(jìn)樣分析,根據(jù)峰面積計(jì)算得出9種霉菌毒素的RSD為3.9%~10.4%,說(shuō)明該方法的重復(fù)性良好。

        2.8 樣品檢測(cè)

        經(jīng)本實(shí)驗(yàn)建立的方法對(duì)實(shí)驗(yàn)室存儲(chǔ)的83份飼料樣本進(jìn)行檢測(cè),每份平行兩次實(shí)驗(yàn),其中7份樣本測(cè)出含有黃曲霉毒素B1 2.6~13.8 μg/L,19份樣本中含有T-2毒素6.9~24.5 μg/L,16份樣本中含有玉米赤霉烯酮5.1~42.7 μg/L。

        3 結(jié)論

        研究結(jié)果表明,采用多功能凈化柱凈化可同時(shí)凈化多種霉菌毒素,前處理步驟簡(jiǎn)便快速,再結(jié)合液質(zhì)聯(lián)用法采用正負(fù)離子同時(shí)掃描,縮短了分析檢測(cè)時(shí)間,而且方法穩(wěn)定性好,回收率高。該法還可應(yīng)用于豆粕、濃縮料、魚粉等多種飼料,其檢出限滿足國(guó)內(nèi)外標(biāo)準(zhǔn)的限量要求,為霉菌毒素的檢測(cè)分析提供了技術(shù)支持。

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