王述浩　張　林　李蛟龍　叢佳惠　高　峰　周光宏

(南京農(nóng)業(yè)大學動物科技學院，江蘇省動物源食品生產(chǎn)與安全保障重點實驗室，江蘇省肉類生產(chǎn)與加工質(zhì)量安全控制協(xié)同創(chuàng)新中心，南京210095)

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飼糧添加萬壽菊提取物對肉雞血清生化指標、抗氧化能力和免疫性能的影響

王述浩張林李蛟龍叢佳惠高峰*周光宏

(南京農(nóng)業(yè)大學動物科技學院，江蘇省動物源食品生產(chǎn)與安全保障重點實驗室，江蘇省肉類生產(chǎn)與加工質(zhì)量安全控制協(xié)同創(chuàng)新中心，南京210095)

本試驗旨在研究飼糧添加萬壽菊提取物對肉雞血清生化指標、抗氧化能力和免疫性能的影響。選取1日齡愛拔益加(AA)肉雞192只，隨機分為3組，每組8個重復，每個重復8只雞。對照組飼喂基礎飼糧，試驗組在基礎飼糧中分別添加0.15%和0.60%的萬壽菊提取物，即有效成分葉黃素含量分別為30和120 mg/kg，試驗期42 d。結果表明：與對照組相比，1)飼糧添加0.60%萬壽菊提取物使肉雞血清甘油三酯和低密度脂蛋白膽固醇水平顯著降低(P<0.05)，高密度脂蛋白膽固醇水平顯著升高(P<0.05)；2)0.15%和0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞21和42日齡血清總抗氧化能力和超氧化物歧化酶、谷胱甘肽過氧化物酶和過氧化氫酶活性顯著提高(P<0.05)；3)0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞21日齡胸腺、脾臟和法氏囊指數(shù)顯著升高(P<0.05)，飼糧添加萬壽菊提取物使肉雞血清免疫球蛋白M、免疫球蛋白G和白細胞介素2水平顯著升高(P<0.05)，萬壽菊提取物未對肉雞42日齡免疫器官指數(shù)造成顯著影響(P>0.05)。綜上，肉雞飼糧中添加萬壽菊提取物可以提高肉雞機體的抗氧化能力和免疫性能，且對機體脂代謝有調(diào)節(jié)作用。

萬壽菊提取物；葉黃素；肉雞；抗氧化；免疫

隨著生活水平的提高，人們開始越來越注重肉品的質(zhì)量。在中國、美國和許多其他的國家，雞的皮膚和肉的顏色是決定消費者喜好的重要因素，而肉品質(zhì)量也常以肉的色澤為基礎進行評估[1-2]。肉雞本身并不能合成起主要著色作用的色素[3]，而典型的玉米-豆粕型商業(yè)家禽飼糧中也沒有足夠數(shù)量和類型的色素來生產(chǎn)出消費者喜愛色澤的禽類產(chǎn)品[4]。為了迎合市場的需求，目前在商業(yè)生產(chǎn)中往往是向禽類飼料中添加人工合成色素來提高禽類產(chǎn)品的色澤，故禽類產(chǎn)品的顏色主要是由添加到禽類飼糧中的色素最終沉積到組織中而形成的[5]。然而合成色素雖性質(zhì)穩(wěn)定、價格低廉，但其安全性一直受到人們質(zhì)疑。加之近些年消費者對于合成色素的利用變得更加的擔憂，而對天然替代品的興趣愈發(fā)濃厚。此外，因為天然色素的潛在健康促進作用，現(xiàn)在亦形成了一種對類胡蘿卜素富集產(chǎn)品的需求[6-7]。所以一種天然安全有效的著色劑的開發(fā)和利用顯得尤為重要。

萬壽菊提取物是一種提取自萬壽菊花的天然含氧類胡蘿卜素類著色劑，它的有效成分是葉黃素。如今萬壽菊粉和其提取物是天然色素中人們最廣泛接受的產(chǎn)品[4]，所以天然葉黃素的開發(fā)和利用越來越受到人們的重視。先前有研究表明葉黃素不但能提高皮膚色澤而且在幾個物種上有非常強的抗氧化能力[1,3,8]。葉黃素是脂溶性的而且其抗氧化能力也許會對機體的脂代謝和糖代謝產(chǎn)生影響，而機體的抗氧化狀態(tài)與免疫性能密切相關[9]。然而，當今雖然對萬壽菊提取物對動物的影響進行了不少的研究，但大多數(shù)研究都集中在對動物和動物產(chǎn)品尤其是蛋黃著色上，而針對萬壽菊提取物在肉雞上代替合成色素的需求，卻很少有研究系統(tǒng)地關注其對肉雞血液生化指標、抗氧化和免疫的影響。因此，本試驗通過在肉雞飼糧中添加不同水平的萬壽菊提取物，系統(tǒng)研究其對肉雞血清生化指標、抗氧化能力和免疫性能的影響，初步探討其對肉雞機能的影響，為萬壽菊提取物在肉雞產(chǎn)業(yè)中的合理利用提供理論參考。

1　材料與方法

1.1試驗動物與試劑

試驗用動物為健康的1日齡愛拔益加(arbor

acres,AA)肉雞公雛，購自安徽和威農(nóng)牧有限公司。試驗用萬壽菊提取物為從萬壽菊中提取的葉黃素脂經(jīng)皂化后吸附于脫脂米糠和二氧化硅載體后而制成，提取物中有效成分葉黃素的含量為20 g/kg。

1.2試驗設計

本試驗采用單因子隨機試驗設計，選取大小一致、身體狀況良好的1日齡AA肉雞192只，隨機分為3組，每組8個重復，每重復8只雞。對照組飼喂基礎飼糧，基礎飼糧參照NRC(1994)肉仔雞營養(yǎng)需要量配制。試驗組在基礎飼糧中分別添加0.15%和0.60%的萬壽菊提取物，即有效成分葉黃素含量分別為30和120 mg/kg。試驗分前期(1～21日齡)和后期(22～42日齡)2個階段進行，2個階段的基礎飼糧組成及營養(yǎng)水平見表1。

表1　基礎飼糧組成及營養(yǎng)水平(風干基礎)

1)粗蛋白質(zhì)含量為60%。The crude protein content was 60%.

2)預混料為每千克飼糧提供The premix provided the following per kg of diets：Fe 60 mg,Cu 7.5 mg，Zn 65 mg，Mn 110 mg，I 1.1 mg，Se 0.4 mg，桿菌肽鋅 bacitracin zinc 30 mg，生物素 biotin 0.04 mg，氯化膽堿 choline chloride 400 mg，VA 4 500 IU，VD31 000 IU，VK 1.3 mg，VB12.2 mg，VB210 mg，VB310 mg，VB550 mg，VB64 mg，VB111 mg，VB120.013 mg。

3)計算值 Calculated values。

1.3飼養(yǎng)管理

試驗雞以重復為單位飼養(yǎng)在籠子里，試驗采用自由飲水、自由采食的飼養(yǎng)方式，24 h光照，溫度及濕度依據(jù)正常飼養(yǎng)程序調(diào)節(jié)，肉雞按飼養(yǎng)常規(guī)程序進行新城疫等疫苗的免疫。為保證飲水及飼糧的品質(zhì)，定期對水槽進行清理消毒，每天喂料3次，根據(jù)每重復的實際采食量靈活調(diào)整飼喂量并保證每次都有少許剩余。定期對舍內(nèi)及周邊環(huán)境進行清理消毒。在飼養(yǎng)期的第22天早晨更換后期飼糧。

1.4樣品采集

分別于肉雞21和42日齡時，從每重復隨機選取1只雞，空腹稱重后進行放血屠宰(屠宰前1 d晚上開始禁食，大約禁食12 h)，頸靜脈采血，3 000 r/min離心10 min分離血清后保存在-20 ℃冰箱中備測。取下免疫器官(胸腺、脾臟、法氏囊)去除脂肪組織后稱重。

1.5指標測定

1.5.1血清生化指標

血清生化指標的測定采用全自動生化分析儀配合試劑盒進行。血清葡萄糖(Glu)和總膽固醇(TC)水平采用氧化酶法測定；甘油三酯(TG)水平采用甘油磷酸氧化酶法測定；高密度脂蛋白膽固醇(HDL-C)和低密度脂蛋白膽固醇(LDL-C)水平采用直接法測定。血清Glu、TC、TG水平的測定采用上?？迫A生物工程股份有限公司生產(chǎn)的試劑盒；HDL-C、LDL-C水平的測定采用南京建成生物工程研究所生產(chǎn)的試劑盒。所有操作按試劑盒說明進行。

1.5.2抗氧化指標

血清總抗氧化能力(T-AOC)及超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)和過氧化氫酶(CAT)活性的測定采用南京建成生物工程研究所的試劑盒按說明書進行。

1.5.3免疫相關指標

免疫器官指數(shù)(g/kg)=免疫器官重量(g)/

雞活重(kg)。

血清免疫球蛋白M(IgM)、免疫球蛋白G(IgG)和白細胞介素2(IL-2)水平的測定采用南京建成生物工程研究所的試劑盒用酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)法進行。

1.6數(shù)據(jù)處理與分析

數(shù)據(jù)首先用Microsoft Office Excel 2010軟件作初步處理，然后用IBM SPSS Statistics 20軟件作單因素方差分析，用Duncan氏法進行顯著性檢驗，以P<0.05作為差異顯著性標準，結果以平均值和標準誤表示。

2　結果與分析

2.1飼糧添加萬壽菊提取物對肉雞血清生化指標的影響

由表2可知，飼糧添加0.60%萬壽菊提取物顯著降低了肉雞21和42日齡血清TG和LDL-C水平(P<0.05)，顯著提高了血清HDL-C水平(P<0.05)。飼糧添加0.15%萬壽菊提取物顯著降低了肉雞42日齡血清LDL-C水平(P<0.05)。飼糧添加萬壽菊提取物未對肉雞血清TC和Glu水平造成顯著影響(P>0.05)。

2.2飼糧添加萬壽菊提取物對肉雞血清抗氧化能力的影響

由表3可知，與對照組相比，0.15%和0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞21日齡血清T-AOC提高，且0.60%萬壽菊提取物添加組較對照組差異顯著(P<0.05)。0.15%和0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞21日齡血清SOD、GSH-Px、CAT活性顯著提高(P<0.05)，且0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞血清GSH-Px和CAT活性較0.15%萬壽菊提取物添加組也顯著提高(P<0.05)。與對照組相比，0.15%和0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞42日齡血清SOD、CAT活性和T-AOC顯著提高(P<0.05)，且0.60%萬壽菊提取物添加組較0.15%萬壽菊提取物添加組肉雞血清SOD活性差異顯著(P<0.05)。0.15%和0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞42日齡血清GSH-Px活性提高，且0.60%萬壽菊提取物添加組較對照組差異顯著(P<0.05)。

2.3飼糧添加萬壽菊提取物對肉雞免疫性能的影響

由表4可知，與對照組相比，0.15%和0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞胸腺、脾臟和法氏囊指數(shù)都有所提高，且0.15%萬壽菊提取物添加組肉雞21日齡法氏囊指數(shù)和0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞胸腺、脾臟和法氏囊指數(shù)較對照組差異顯著(P<0.05)。

表2　飼糧添加萬壽菊提取物對肉雞血清生化指標的影響

同行數(shù)據(jù)肩標不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)，無字母或相同字母表示差異不顯著(P>0.05)。下表同。

In the same row, values with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05), with no letter or the same letter superscripts mean no significant difference (P>0.05). The same as below.

表3　飼糧添加萬壽菊提取物對肉雞血清抗氧化能力的影響

由表5可知，與對照組相比，飼糧添加0.15%萬壽菊提取物顯著提高了肉雞21日齡血清IL-2水平(P<0.05)，0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞21日齡血清IgM和IL-2水平較對照組也顯著提高(P<0.05)。0.15%和0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞21日齡血清IgG水平較對照組有所提高，但不顯著(P>0.05)。與對照組相比，0.15%和0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞42日齡血清IgM和IL-2水平顯著提高(P<0.05)，0.60%萬壽菊提取物添加組肉雞42日齡血清IgG水平較對照組也顯著提高(P<0.05)。

表4　飼糧添加萬壽菊提取物對肉雞免疫器官指數(shù)的影響

表5　飼糧添加萬壽菊提取物對肉雞血清免疫指標的影響

3　討　論

3.1萬壽菊提取物對肉雞血清生化指標的影響

血清TG、TC、HDL-C和LDL-C都是反映機體脂類代謝的指標。肝臟是合成TG和TC的場所，TG是機體內(nèi)存在最多的脂類，其含量升高與動脈粥樣硬化性心血管疾病密切相關，TC是血液中所有脂蛋白所含膽固醇之和。HDL-C主要是由肝臟合成，其可以抗動脈粥樣硬化，減少患冠狀動脈心臟病的危險。HDL-C能有效地抑制低密度脂蛋白(LDL)的氧化和中和LDL的活性以及抑制內(nèi)皮細胞黏附的表達[10]。LDL-C含有大量的不飽和脂肪酸，其含量越高，機體患動脈粥樣硬化、冠心病等心血管疾病的概率就越大[11]。血糖即血清中Glu的水平，是反映機體碳水化合物代謝的指標，血糖失調(diào)會導致多種疾病。

關于萬壽菊提取物對肉雞血脂影響的報道較少。本試驗結果表明飼糧添加萬壽菊提取物提高了肉雞血清HDL-C水平，降低了血清TG和LDL-C水平，這與前人的研究結果類似。畢宇霖[12]發(fā)現(xiàn)β-胡蘿卜素可降低肉牛血清LDL-C水平，黃建鄉(xiāng)[13]試驗表明β-胡蘿卜素使鵪鶉的高密度脂蛋白(HDL)與TC的比值升高而使LDL水平降低。LDL-C的減少可能與類胡蘿卜素的抗氧化功能有關，類胡蘿卜素可清除體內(nèi)多余的自由基，從而提高肝臟對LDL的降解[12]。另外，田潤華[14]也發(fā)現(xiàn)維生素E、維生素C和β-胡蘿卜素等抗氧化物質(zhì)通過抗氧化性減少了體內(nèi)自由基對LDL的修飾作用，從而減少了氧化型LDL的含量。LDL-C水平的降低也可能與HDL-C水平的升高有關。本試驗中萬壽菊提取物對肉雞血清中Glu水平無顯著影響，這說明飼糧中添加萬壽菊提取物對肉雞正常碳水化合物代謝無不利影響。元娜[15]的試驗表明血清TC隨著葉黃素添加劑量的增加呈上升趨勢，而本試驗中未對TC造成顯著影響，這可能是由于其研究對象為產(chǎn)蛋高峰期的蛋雞，激素分泌水平較高，血脂水平不同造成的。

3.2萬壽菊提取物對肉雞抗氧化能力的影響

機體的抗氧化性能是影響機體健康的重要因素，機體抗氧化系統(tǒng)主要由抗氧化酶和鏈式反應阻斷劑組成，這兩類物質(zhì)協(xié)同維持體內(nèi)自由基生成與清除的平衡。T-AOC是機體或組織抗氧化性能高低的反映，是體內(nèi)各種氧化與抗氧化物質(zhì)共同作用的結果。GSH-Px、SOD和CAT是機體內(nèi)重要的抗氧化酶。GSH-Px可以清除在細胞呼吸代謝過程中產(chǎn)生的過氧化物和羥自由基，從而減輕細胞膜多不飽和脂肪酸的過氧化作用。SOD可以清除超氧陰離子自由基，有保護細胞膜結構和功能完整的作用。CAT可以催化過氧化氫分解，使得有害的羥基自由基的生成減少。因此，血清中GSH-Px、SOD、CAT和T-AOC含量或活性的升高是機體抗氧化性能升高的體現(xiàn)。

目前關于類胡蘿卜素體內(nèi)與體外抗氧化性能的試驗研究結果不盡一致。張爾賢等[16]通過菊花提取物的體外抗氧化試驗研究證明，菊花提取物是具有抗氧化活性的。Kumar等[17]體外試驗也表明萬壽菊成分中的葉黃素對超氧陰離子自由基、過氧化氫、羥基和脂質(zhì)自由基表現(xiàn)出很強的抗氧化作用。元娜[15]認為萬壽菊提取物可提高蛋雞血清SOD活性，降低丙二醛(MDA)水平。Rajput等[18]研究也指出姜黃素和葉黃素可降低機體MDA水平。Shanmugasundarams等[19]研究表明葉黃素可使火雞肌肉硫代巴比妥酸值降低，這與上述結果也是基本一致的。而王魯波等[20]認為萬壽菊提取物對黃顙魚機體的抗氧化性能無顯著影響。蘇卿等[21]以葉黃素標品進行體外抗氧化研究表明葉黃素在不同濃度時具有抗氧化、促氧化雙重作用。在本研究中，我們選擇血清作為評估機體抗氧化性能的代表性樣本。以我們所測定的4個抗氧化指標來分析，飼糧添加0.15%和0.60%的萬壽菊提取物都顯著提高了機體的抗氧化性能。葉黃素分子中有許多個不飽和鍵，大多數(shù)研究者認為葉黃素發(fā)揮生物活性的機制是葉黃素可以淬滅活性氧類[22]，因此其能夠抑制氧自由基的活性，阻止活性氧游離自由基對正常細胞的損害[23]。另外，Chew等[24]也報道葉黃素通過淬滅單線態(tài)氧和自由基捕獲對阻止游離自由基對細胞膜的損害具有獨特的功效。因此，葉黃素在肉雞中能減緩氧化應激，是一種杰出的抗氧化劑[25]。

3.3萬壽菊提取物對肉雞免疫性能的影響

免疫系統(tǒng)是機體防衛(wèi)病原體入侵最有效的武器，是機體健康的保障。胸腺是細胞免疫的中樞器官，是禽類血液中淋巴細胞的主要來源。脾臟能產(chǎn)生大量的淋巴細胞，參與全身的細胞免疫和體液免疫是禽類最大的外周免疫器官。法氏囊是血清抗體生成系統(tǒng)的細胞成長和分化的部位，是禽類特有的免疫器官。胸腺、脾臟和法氏囊的器官指數(shù)可用于評價雛雞的免疫狀態(tài)[26]，這些免疫器官的器官指數(shù)越大，則可表明機體的細胞免疫和體液免疫機能越強。免疫球蛋白是由漿細胞分泌的，是免疫系統(tǒng)與抗原接觸后的體液免疫反應物。IgM主要分布在血液中，具有強大的抗感染作用，是機體受到抗原刺激后最先產(chǎn)生的抗體。IgG是血清中免疫球蛋白的主成分，其參與體液和細胞免疫的效應子功能的觸發(fā)[27]。IL-2主要由活化T細胞產(chǎn)生，其主要促進淋巴細胞生長、增殖和分化，對機體的免疫應答等有重要作用。

當前有一些研究表明類葫蘿卜素可以提高動物的體液和細胞免疫能力，增加巨噬細胞的吞噬能力，抑制腫瘤細胞繁殖[24]。研究表明，β-胡蘿卜素可以使奶牛的中性白細胞的吞噬能力提高，同時也可以降低奶牛產(chǎn)后乳腺炎的發(fā)病率[28-29]。葉黃素可以促進抗原刺激的淋巴細胞增殖反應，并可影響細胞表面分子的功能性表達[15]。Kim等[30-31]報道葉黃素可增加家犬T細胞和B細胞的數(shù)量，還具有增強特異性免疫應答的能力，可以增強貓的體液免疫反應并提高血漿IgG水平。在本試驗中，我們發(fā)現(xiàn)肉雞飼糧添加0.15%和0.60%的萬壽菊提取物都提高了肉雞血清IgG、IgM和IL-2水平，尤其0.60%的添加效果更加明顯，這與前述結果基本一致。同時本試驗還發(fā)現(xiàn)，萬壽菊提取物顯著提高了肉雞21日齡的免疫器官指數(shù)，促進了肉雞早期免疫系統(tǒng)的發(fā)育，而對42日齡免疫器官指數(shù)影響不顯著，這可能是由于后期肉雞的免疫器官發(fā)育趨于完善。目前關于葉黃素提高免疫性能的機制還不是很清楚，但可以確定的是葉黃素的免疫功能與其抗氧化性能是息息相關的[9]。同時，Jyonouchi等[32]指出蝦青素的結構末端具有極性基團，即在β-酮環(huán)上有一個羥基，可以調(diào)節(jié)抗原向輔助性T細胞的呈遞過程。葉黃素結構中同樣具有此種極性末端基團，因此葉黃素也可能具有同樣的作用，即葉黃素也可能通過調(diào)節(jié)細胞間通訊和細胞膜流動性來影響免疫功能[17]

4　結　論

本試驗發(fā)現(xiàn)肉雞飼糧中添加天然著色劑萬壽菊提取物可以提高肉雞機體的抗氧化能力和免疫性能，而且對機體脂代謝有調(diào)節(jié)作用。同時，本試驗未發(fā)現(xiàn)高劑量萬壽菊提取物添加對機體脂代謝和糖代謝有不利影響。

[1]LIU G D,HOU G Y,WANG D J,et al.Skin pigmentation evaluation in broilers fed different levels of natural okra and synthetic pigments[J].The Journal of Applied Poultry Research,2008,17(4):498-504.

[2]VELASCO V,WILLIAMS P.Improving meat quality through natural antioxidants[J].Chilean Journal of Agricultural Research,2011,71(2):313-322.

[3]LOKAEWMANEE K,YAMAUCHI K,KOMORI T,et al.Enhancement of yolk color in raw and boiled egg yolk with lutein from marigold flower meal and marigold flower extract[J].The Journal of Poultry Science,2011,48(1):25-32.

[4]CASTANEDA M P,HIRSCHLER E M,SAMS A R.Skin pigmentation evaluation in broilers fed natural and synthetic pigments[J].Poultry Science,2005,84(1):143-147.

[5]PéREZ-VENDRELL A M,HERNNDEZ J M,LLAURADL,et al.Influence of source and ratio of xanthophyll pigments on broiler chicken pigmentation and performance[J].Poultry Science,2001,80(3):320-326.

[6]MOELLER S M,JACQUES P F,BLUMBERG J B.The potential role of dietary xanthophylls in cataract and age-related macular degeneration[J].Journal of the American College of Nutrition,2000,19(Suppl.5):522S-527S.

[7]JOHNSON E J.The role of carotenoids in human health[J].Nutrition in Clinical Care,2002,5(2):56-65.

[8]ALVES-RODRIGUES A,SHAO A.The science behind lutein[J].Toxicology Letters,2004,150(1):57-83.

[9]BENDICH A.Antioxidant micronutrients and immune responses[J].Annals of the New York Academy of Sciences,1990,587(1):168-180.

[10]屈雪瑩,車琳.高密度脂蛋白在心血管代謝風險中的研究[J].國際心血管病雜志,2010,37(2):81-84.

[11]ROSS R.The pathogenesis of atherosclerosis:a perspective for the 1990s[J].Nature,1993,362(6423):801-809.

[12]畢宇霖.不同水平β-胡蘿卜素在肉牛體內(nèi)的沉積規(guī)律及對肉牛生產(chǎn)性能、血液生化和代謝關鍵酶的研究[D].碩士學位論文.泰安:山東農(nóng)業(yè)大學,2014.

[13]黃建鄉(xiāng).鹽藻β-胡蘿卜素(順)對鵪鶉實驗性動脈粥樣硬化和脂肪肝的治療作用研究[D].碩士學位論文.青島:青島大學,2003.

[14]田潤華.維生素E、C和β-胡蘿卜素補充對老年人群脂質(zhì)代謝水平及肝功能影響的研究[D].碩士學位論文.青島:青島大學,2005.

[15]元娜.萬壽菊提取物和維生素E對雞蛋品質(zhì)、抗氧化能力及免疫應答影響的研究[D].碩士學位論文.保定:河北農(nóng)業(yè)大學,2009.

[16]張爾賢,方黎,張捷,等.菊花提取物的抗氧化活性研究[J].食品科學,2000,21(7):6-9.

[17]KUMAR R,YU W,JIANG C,et al.Improvement of the isolation and purification of lutein from marigold flower (TageteserectaL.) and its antioxidant activity[J].Journal of Food Process Engineering,2010,33(6):1065-1078.

[18]RAJPUT N,ALI S,NAEEM M,et al.The effect of dietary supplementation with the natural carotenoids curcumin and lutein on pigmentation,oxidative stability and quality of meat from broiler chickens affected by a coccidiosis challenge[J].British Poultry Science,2014,55(4):501-509.

[19]SHANMUGASUNDARAMS R,SELVARAJ R K.Lutein supplementation alters inflammatory cytokine production and antioxidant status in F-line turkeys[J].Poultry Science,2011,90(5):971-976.

[20]王魯波.天然葉黃素對黃顙魚生長性能、皮膚著色和抗氧化功能的影響及其在魚體組織中代謝規(guī)律的研究[D].碩士學位論文.北京:中國農(nóng)業(yè)科學院,2012.

[21]蘇卿,李謙,陳浩,等.葉黃素的抗氧化-促氧化作用研究[J].食品工業(yè)科技,2014,35(9):68-71,77.

[22]TREVITHICK-SUTTON C C,FOOTE C S,COLLINS M,et al.The retinal carotenoids zeaxanthin and lutein scavenge superoxide and hydroxyl radicals:a chemiluminescence and ESR study[J].Molecular Vision,2006,12:1127-1135.

[23]BECKMAN K B,AMES B N.Oxidative decay of DNA[J].Journal of Biological Chemistry,1997,272(32):19633-19636.

[24]CHEW B P,PARK J S.Carotenoid action on the immune response[J].The Journal of Nutrition,2004,134(1):257S-261S.

[26]RIVAS A L,FABRICANT J.Indications of immunodepression in chickens infected with various strains of Marek’s disease virus[J].Avian Diseases,1988,32(1):1-8.

[27]VIDARSSON G,VAN DER POL W L,VAN DEN ELSEN J M,et al.Activity of human IgG and IgA subclasses in immune defense againstNeisseriameningitidisserogroup B[J].The Journal of Immunology,2001,166(10):6250-6256.

[28]CHEW B P.Role of carotenoids in the immune response[J].Journal of Dairy Science,1993,76(9):2804-2811.

[29]CHAWLA R,KAUR H.Plasma antioxidant vitamin status of perisect1urient cows supplemented with α-tocopherol and β-carotene[J].Animal Feed Science and Technology,2004,114(1/2/3/4):279-285.

[30]KIM H W,CHEW B P,WONG T S,et al.Dietary lutein stimulates immune response in the canine[J].Veterinary Immunology and Immunopathology,2000,74(3/4):315-327.

[31]KIM H W,CHEW B P,WONG T S,et al.Modulation of humoral and cell-mediated immune responses by dietary lutein in cats[J].Veterinary Immunology and Immunopathology,2000,73(3/4):331-341.

[32]JYONOUCHI H,SUN S N,MIZOKAMI M,et al.Effects of various carotenoids on cloned,effector-stage T-helper cell activity[J].Nutrition and Cancer,1996,26(3):313-324.

(責任編輯田艷明)

, professor, E-mail: gaofeng0629@sina.com

Effects of Dietary Marigold Extract Supplementation on Serum Biochemical Indices, Antioxidant and Immune Capacities of Broilers

WANG ShuhaoZHANG LinLI JiaolongCONG JiahuiGAO Feng*ZHOU Guanghong

(College of Animal Science and Technology, Nanjing Agricultural University; Key Laboratory of Animal Origin Food Production and Safety Guarantee of Jiangsu Province; Jiangsu Collaborative Innovation Center of Meat Production and Processing, Quality and Safety Control, Nanjing 210095, China)

This experiment was conducted to investigate the effects of dietary marigold extract supplementation on serum biochemical indices, antioxidant and immune capacities of broilers. A total of 192 one-day-old Arbor Acres (AA) chickens were randomly divided into 3 groups with 8 replicates of 8 chickens each. Chickens in the control group were fed a basal diet and the others in test groups were fed basal diets added with 0.15% and 0.60% marigold extract (the effective composition content of lutein was 30 and 120 mg/kg), respectively. Test period was 42 d. The results showed as follows: compared with the control group, 1) the levels of serum triglyceride and low density lipoprotein cholesterin of broilers in 0.60% marigold extract supplementation group were significantly decreased (P<0.05), while the high density lipoprotein cholesterin level was significantly increased (P<0.05); 2) the serum total antioxidant capacity and activities of superoxide dismutase, glutathione peroxidase and catalase of broilers at 21 and 42 days of age in 0.15% and 0.60% marigold extract supplementation groups were significantly increased (P<0.05); 3) the indices of thymus, spleen and bursal of Fabricius of broilers at 21 days of age in 0.60% marigold extract supplementation group were significantly increased (P<0.05), the levels of serum immunoglobulin M, immunoglobulin G and interleukin-2 were significantly increased by dietary marigold extract supplementation (P<0.05), while there were no significant effects on immune organ indices of broilers at 42 days of age with the marigold extract supplementation (P>0.05). It is concluded that dietary supplementation with marigold extract can increase the antioxidant and immune capacities and regulate lipids metabolism of broiler chickens.[ChineseJournalofAnimalNutrition, 2016, 28(8)：2476-2484]

marigold extract; lutein; broiler; antioxidant; immune

10.3969/j.issn.1006-267x.2016.08.019

2016-03-01

科技部“十二五”國家科技支撐計劃課題(2012BAD28B03)

王述浩(1992—)，男，山東菏澤人，碩士研究生，研究方向為動物營養(yǎng)與畜產(chǎn)品品質(zhì)。E-mail: shwang310@163.com

高峰，教授，博士生導師，E-mail: gaofeng0629@sina.com

S816.7

A

1006-267X(2016)08-2476-09