趙金坤,梁宏偉,鄒桂偉,王煥嶺,李 忠
(1 華中農業(yè)大學 水產學院,湖北 武漢 430070;2 中國水產科學研究院 長江水產研究所,湖北 武漢 430223)
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低氧脅迫對鰱肝和腦細胞凋亡的影響
趙金坤1,梁宏偉2,鄒桂偉2,王煥嶺1,李忠2
(1 華中農業(yè)大學 水產學院,湖北 武漢 430070;2 中國水產科學研究院 長江水產研究所,湖北 武漢 430223)
[摘要]【目的】 通過磷脂結合蛋白V/碘化丙啶(Annexin V/PI)流式細胞分析法和原位末端脫氧核苷酸轉移酶標記(TUNEL)法檢測低氧脅迫下鰱肝、腦細胞的凋亡情況?!痉椒ā?將鰱分成對照組和低氧處理組,對照組正常飼養(yǎng),低氧處理組用保鮮膜將水箱上口封住進行低氧處理,分別在鰱浮頭期以及死亡期取其肝、腦組織,同時取對照組鰱肝、腦組織,采用Annexin V/PI流式細胞分析法和TUNEL法檢測其細胞凋亡情況?!窘Y果】 Annexin V/PI流式細胞儀分析結果表明,在鰱肝臟中細胞凋亡率依次是對照組8.85%、低氧處理組浮頭期22.06%、低氧處理組死亡期22.91%;腦中細胞凋亡率依次是對照組8.18%、低氧處理組浮頭期24.80%、低氧處理組死亡期24.86%。TUNEL法檢測結果顯示,肝臟中細胞凋亡率是對照組3.80%、低氧處理組浮頭期36.78%、低氧處理組死亡期37.27%;腦中細胞凋亡率依次是對照組6.74%、低氧處理組浮頭期35.04%、低氧處理組死亡期35.71%。與正常對照組比較,低氧脅迫后鰱肝、腦細胞凋亡率極顯著增大,但隨著低氧脅迫時間延長細胞凋亡率無明顯差異?!窘Y論】 低氧脅迫會極顯著促進鰱肝和腦細胞發(fā)生凋亡,但鰱肝、腦組織中細胞凋亡率不會隨著低氧脅迫時間延長而產生顯著差異。
[關鍵詞]鰱;細胞凋亡;低氧脅迫;Annexin V/PI;TUNEL
細胞凋亡又稱細胞程序性死亡,是指細胞在一定的生理或病理條件下,遵循自身程序,自己結束生命的過程。細胞凋亡是一個主動、高度有序、由基因控制以及一系列酶參與的過程,在保證多細胞生物健康生存過程中扮演著關鍵的角色[1-3]。細胞凋亡概念的提出引起廣大研究者的濃厚興趣,隨著細胞凋亡研究的不斷深入,各種各樣檢測細胞凋亡的新技術和新方法相繼建立。流式細胞術(Flow cytometry,F(xiàn)CM)是近年來廣泛使用的一種先進的細胞多參數分析儀器,具有靈敏、快速、準確、并且能同時進行多種因素分析等特點。原位末端脫氧核苷酸轉移酶標記(TUNEL)是分子生物學與形態(tài)學相結合的細胞凋亡檢測方法,可對完整的單個凋亡細胞核或凋亡小體進行原位染色,能準確地反映細胞凋亡最典型的生物化學和形態(tài)特征[4]。
鰱(Hypophthalmichthysmolitrix)屬鯉科鰱亞科,是我國淡水養(yǎng)殖的主要魚類之一。鰱對外界刺激應激強烈,耐低氧能力差,易泛塘,低氧脅迫會對其造成嚴重的影響。因此,研究鰱在低氧條件下的反應機制,對其生理特性及新品種的選育具有重要的指導價值。本研究采用磷脂結合蛋白V/碘化丙啶(Annexin V/PI)流式細胞分析法和TUNEL法對低氧脅迫下鰱肝、腦細胞的凋亡情況進行了檢測,現(xiàn)將結果報道如下。
1材料與方法
1.1材料
1.1.1供試動物供試鰱來自中國水產科學研究院長江水產研究所窯灣試驗場,體質量(63±2) g/尾。
1.1.2試劑及儀器AnnexinV-FITC細胞凋亡檢測試劑盒,購自南京碧波生物科技有限公司;TUNEL細胞凋亡檢測試劑盒,購自Roche Applied Science公司;流式細胞儀,購自美國BD公司。
1.2方法
1.2.1低氧處理將鰱在循環(huán)水養(yǎng)殖系統(tǒng)中馴養(yǎng),每個水箱(38 cm×26 cm×23 cm)投放5尾健康鰱,共6箱30尾魚。1周后分為對照組和低氧處理組,每組3箱。試驗期間用溶氧儀測定各處理水中溶氧量。對照組鰱正常飼養(yǎng)(溶氧量6.85 mg/L);低氧處理組用保鮮膜將水箱上口封住,分別于鰱浮頭期(低氧處理6 h,此時溶氧量0.72 mg/L)、死亡期(低氧處理8 h,此時溶氧量0.26 mg/L)時,迅速將試驗魚取出,同時取對照魚,在超凈工作臺中解剖取組織,用于流式細胞儀檢測的樣品,每個處理采集3尾鰱的肝臟、腦組織,用含有雙抗的PBS緩沖液暫時保存;用于TUNEL法檢測的樣品,每個處理采集3尾鰱的肝臟、腦組織,用40 g/L多聚甲醛固定保存。
1.2.2單細胞懸液的制備將用PBS保存的肝臟、腦組織分別用手術剪剪成1 mm3的小組織塊,用含有雙抗的PBS緩沖液浸洗5次。將上述處理的組織用胰酶(2.5 g/L)消化30 min。然后將消化好的組織過孔徑74 μm細胞篩,收集流穿液,加入含體積分數10%胎牛血清的1640培養(yǎng)基,200g離心3 min,棄上清液,收集底部細胞,重復3次。最后用含體積分數10%胎牛血清的1640培養(yǎng)基懸浮細胞,即得單細胞懸液。
1.2.3細胞凋亡的Annexin V/PI流式細胞儀檢測取 1.2.2 節(jié)制備好的單細胞懸液用PBS潤洗2次,1 000 r/min離心10 min,去上清,加入體積分數70%冷乙醇4 ℃固定30 min,離心去固定液,細胞用PBS重懸5 min,離心去上清。向細胞沉淀樣品中分別加入500 μL Binding Buffer、5 μL AnnexinV-FTIC和5 μL PI,混勻,室溫避光反應15 min,用流式細胞儀檢測細胞凋亡率。
1.2.4細胞凋亡的TUNEL法檢測用常規(guī)方法制備鰱肝臟和腦組織的石蠟切片,依次將其放入二甲苯Ⅰ、二甲苯Ⅱ、無水乙醇Ⅰ、無水乙醇Ⅱ及體積分數95%、90%、80%、70%的乙醇中脫蠟,然后用蒸餾水浸泡2 min。向脫蠟后的切片加蛋白酶K工作液(10~20 μg/mL),20~37 ℃反應15~30 min,用PBS洗滌3次,每次5 min。向上處理所得切片滴加50 μLTUNEL反應混合液,37 ℃避光孵育60 min,然后用PBS洗滌3次,每次5 min。用吸水紙擦干玻片后加50 μL converter-POD于標本上,37 ℃避光孵育30 min,PBS洗滌4次,每次5 min。滴加50~100 μL DAB顯色液,室溫顯色0.5~5 min或者根據顯色情況延長顯色時間,最后用自來水沖洗終止顯色。顯色后的切片用Harris蘇木素復染 0.5~1 min,水洗后用體積分數1%鹽酸酒精分化,再用PBS水洗反藍,用體積分數95%乙醇脫水5 min,再用無水乙醇脫水2次,每次約3 min;二甲苯透明2次,每次2 min,通風櫥中風干后中性樹膠封片。在顯微鏡下觀察切片,并采集圖像。
1.3統(tǒng)計學分析
所有數據均以“平均值±標準差”表示,采用SPASS 17.0統(tǒng)計軟件進行分析,組間比較用t檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2結果與分析
2.1Annexin V/PI流式細胞分析法檢測低氧脅迫下鰱肝、腦細胞凋亡情況
結果(表1)顯示,對照組和低氧處理組浮頭期、死亡期鰱肝臟細胞凋亡率依次是8.85%,22.06%和22.91%;腦的細胞凋亡率依次是8.18%,24.80%和24.86%;與正常對照組相比,低氧處理組鰱浮頭期和死亡期肝、腦細胞凋亡率均極顯著增大(P<0.01),但低氧處理組鰱浮頭期和死亡期肝、腦細胞凋亡差異不顯著(P>0.05)。
表 1 Annexin V/PI流式細胞分析法檢測低氧脅迫下鰱肝、腦細胞的凋亡結果Table 1 Apoptosis of Hypophthalmichthys molitrix hepatocyte and brain cells under hypoxic stress detected by Annexin V/PI with flow cytometry %
注:同列數據后標不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05),標不同大寫字母表示差異極顯著(P<0.01)。表2同。
Note:Different lowercase letters mean significant difference(P<0.05),different capital letters mean extremely significant difference(P<0.01).The same for Table 2.
2.2TUNEL法檢測低氧脅迫對鰱肝、腦細胞凋亡的影響
TUNEL法染色后,正常對照組的細胞經蘇木素復染后細胞核呈藍黑色;TUNEL陽性細胞形態(tài)學上表現(xiàn)為核固縮,胞體縮小,染色質凝聚,呈棕黃色或黃褐色顆粒,表現(xiàn)出凋亡的特征。本試驗顯微鏡觀察結果如圖1和圖2所示。
TUNEL法檢測低氧脅迫下鰱肝、腦細胞凋亡率統(tǒng)計結果如表2所示。由表2可知,對照組、低氧處理浮頭期和死亡期鰱肝臟中細胞凋亡率依次是3.80%,36.78%和37.27%,腦中細胞凋亡率依次是6.74%,35.04%和35.71%;與正常對照組相比,低氧處理組浮頭期和死亡期鰱肝、腦細胞凋亡率均極顯著增大(P<0.01);低氧處理組鰱浮頭期和死亡期肝、腦細胞凋亡差異不顯著(P>0.05)。這說明低氧脅迫會極顯著促進鰱肝和腦細胞發(fā)生凋亡,但鰱肝、腦組織中細胞凋亡率不會隨著低氧脅迫時間延長而產生顯著差異。
圖 1低氧脅迫下鰱肝細胞凋亡的TUNEL法檢測結果
T.正常對照組;F.浮頭期(低氧處理6 h);D.死亡期(低氧處理8 h)
Fig.1Apoptosis ofHypophthalmichthysmolitrixhepatocyte under hypoxic stress detected with TUNEL
T.Normal control group;F.Floating stage(6 h under hypoxic stress);D.Death stage(8 h under hypoxic stress)
圖 2 低氧脅迫下鰱腦細胞凋亡的TUNEL法檢測結果 T.正常對照組;F.浮頭期(低氧處理6 h);D.死亡期(低氧處理8 h)Fig.2 Apoptosis of Hypophthalmichthys molitrix brain cells under hypoxic stress detected with TUNEL T.Normal control group;F.Floating stage(6 h under hypoxic stress);D.Death stage(8 h under hypoxic stress)
表 2 TUNEL法檢測低氧脅迫下鰱肝、腦細胞的凋亡結果Table 2 Apoptosis of Hypophthalmichthys molitrix hepatocyte and brain cellsunder hypoxic stress detected with TUNEL %
3討論
水體中溶解氧含量降低對魚類可造成多方面的影響,魚類在行為上會出現(xiàn)臨界游泳速度降低、呼吸攝氧能力下降等[5],從而影響到魚類的洄游、覓食等生理活動[6]。而魚類的生理生化過程更是涉及到血管形成與氧氣運輸、細胞凋亡、細胞增殖、基因表達以及細胞結構等[7]。大量動物試驗研究發(fā)現(xiàn),低氧可通過誘導Rb的磷酸化和p27的表達來降低cyclin-CDK復合物的活性,引起細胞周期阻滯,促進細胞凋亡,使DNA的合成和細胞數目顯著降低[8-10]。缺氧可引起肝細胞線粒體、生物膜損傷以及肝細胞氧化磷酸化,導致產能減少;缺氧還可引起鈣超載觸發(fā)細胞凋亡。線粒體功能受損還會引起肝臟氧自由基增多導致蛋白質、脂肪、DNA氧化損傷,從而導致細胞凋亡[11]。黎一鳴等[12]在肝動脈缺血對肝細胞凋亡影響的研究中發(fā)現(xiàn),氧自由基在肝動脈缺血誘發(fā)的肝組織細胞凋亡中發(fā)揮了重要的作用。氧自由基可促進組織中活性氧的產生,從而誘發(fā)細胞凋亡。本試驗對低氧脅迫后鰱肝臟組織的細胞凋亡情況進行了檢測,結果發(fā)現(xiàn),低氧處理至鰱浮頭再到死亡,肝細胞凋亡率較正常對照組極顯著升高(P<0.01),但低氧處理組浮頭期和死亡期肝細胞凋亡率差異不顯著,說明低氧可誘導鰱肝細胞的凋亡,但隨著低氧處理時間的延長,肝臟組織凋亡細胞數目無顯著差異。
中樞神經系統(tǒng)(CNS)對缺氧最為敏感,而且對缺氧的耐受性較差,缺氧可誘導中樞神經系統(tǒng)慢性或急性損傷。在腦缺氧損傷中,不僅存在細胞壞死發(fā)生,還存在細胞凋亡現(xiàn)象,細胞凋亡是腦缺氧后遲發(fā)性神經元死亡的重要表現(xiàn)形式[13]。一些動物試驗表明,腦缺氧缺血損傷后在細胞死亡過程中存在2個不同的階段,第一階段是在缺氧缺血損傷期間細胞主要以壞死形式發(fā)生,在這一階段細胞死亡涉及神經膠質和神經元細胞;第二階段是延遲發(fā)生,細胞以凋亡為主,在這一階段細胞選擇性涉及神經元死亡,即遲發(fā)性神經元死亡[14-15]。本試驗對低氧脅迫后鰱腦組織的細胞凋亡情況進行了檢測,結果發(fā)現(xiàn),低氧處理至鰱浮頭再到死亡,腦細胞凋亡率較正常對照組極顯著升高(P<0.01),但浮頭期和死亡期腦細胞凋亡率差異不顯著,說明低氧可誘導鰱腦細胞的凋亡,但隨著低氧處理時間的延長,腦組織凋亡細胞數目無顯著差異。
本試驗低氧處理浮頭期和死亡期鰱肝、腦細胞凋亡率無顯著差異的原因可能是,低氧誘導細胞凋亡存在一個臨界值,當氧濃度下降到這一臨界值時,細胞凋亡率的增加不明顯[16]。
[參考文獻]
[1]劉海峰,孫文匯,高洪,等.細胞凋亡的特征及其檢測方法 [J].動物醫(yī)學進展,2008,29(3):106-108.
Liu H F,Sun W H,Gao H,et al.The features and detection methods of cell apoptosis [J].Progress in Veterinary Medicine,2008,29(3):106-108.
[2]H?cker G.The morphology of apoptosis [J].Cell and Tissue Research,2000,301(1):5-17.
[3]Fadok V A,Voelker D R,Campbell P A,et al.Exposure of ph-osphatidylserine on the surface of apoptotic lymphocytes triggers specific recognition and removal by macrophages [J].The Journal of Immunology,1992,148(7):2207-2216.
[4]郭曉紅,劉立新.AnnexinV/PI流式細胞儀分析法和TUNEL法檢測肝細胞凋亡的對比研究 [J].山西醫(yī)科大學學報,2008(5):476-479.
Guo X H,Liu L X.Comparative study on AnnexinV/PI and TUNEL in detecting hepatocyte apoptosis [J].Journal of Shanxi Medical University,2008(5):476-479.
[5]趙文文,曹振東,付世建.溶氧水平對鳊魚、中華倒刺鲃幼魚游泳能力的影響 [J].水生生物學報,2013,37(2):314-320.
Zhao W W,Cao Z D,Fu S J.The effects of dissolved oxygen level on the swimming performances of juvenileParabramisPekinensisandSpinibarbusSinensis[J].Acta Hydrobiologica Sinica,2013,37(2):314-320.
[6]Zeng L Q,Cao Z D,Fu S J,et al.Effect of temperature on swimming performance in juvenile southern catfishSilurusmeridionalis[J].Comparative Biochemistry and Physiology Part A:Molecular & Integrative Physiology,2009,153(2):125-130.
[7]鐘雪萍,王丹,張義兵,等.鯽魚低氧相關基因差減 cDNA 文庫的構建與分析 [J].水生生物學報,2009,33(1):113-118.
Zhong X P,Wang D,Zhang Y B,et al.Construction and analysis of the subtractive cDNA library of crucian carp induced by hypoxia [J].Acta Hydrobiologica Sinica,2009,33(1):113-118.
[8]Pillai M S,Sapna S,Shivakumar K.p38 MAPK regulates G1-S transition in hypoxic cardiac fibroblasts [J].The Tnternational Journal of Biochemistry &Cell Biology,2011,43(6):919-927.
[9]Goda N,Ryan H E,Khadivi B,et al.Hypoxia-inducible factor 1α is essential for cell cycle arrest during hypoxia [J].Molecular and Cellular Biology,2003,23(1):359-369.
[10]Seim J,Graff P,?mellem ?,et al.Hypoxia-induced irreversible S-phase arrest involves down-regulation of cyclin A [J].Cell Proliferation,2003,36(6):321-332.
[11]榮黎,曾維政,吳曉玲.高原缺氧與肝臟損傷 [J].世界華人消化雜志,2009,17(21):2171-2178.
Rong L,Zeng W Z,Wu X L.High-altitude hypoxia and liver injury [J].World Chinese Journal of Digestology,2009,17(21):2171-2178.
[12]黎一鳴,徐心,吉鴻,等.肝動脈缺血對肝細胞凋亡的影響及其機制初探 [J].西安交通大學學報(醫(yī)學版),2002,23(4):393-394.
Li Y M,Xu X,Ji H,et al.Effects of hepatic artery ischemia on hepatocytic apoptosis and its mechanism [J].Journal of Xi’an Jiaotong University (Med Sci),2002,23(4):393-394.
[13]張桂林.GM1 對新生大鼠缺氧缺血性腦損傷細胞凋亡的作用 [D].廣州:第一軍醫(yī)大學,2000.
Zhang G L.Roles of GM1 on the brain cell apoptosis after hypoxic-ischemic brain damage in neonatal rats [D].Guangzhou:Southern Medical University,2000.
[14]Beilharz E J,Williams C E,Dragunow M,et al.Mechanisms of delayed cell death following hypoxic-ischemic injury in the immature rat:evidence for apoptosis during selective neuronal loss [J].Molecular Brain Research,1995,29(1):1-14.
[15]Nitatori T,Sato N,Waguri S,et al.Delayed neuronal death in the CA1 pyramidal cell layer of the gerbil hippocampus following transient ischemia is apoptosis [J].The Journal of Neuroscience,1995,15(2):1001-1011.
[16]Parrinello S,Samper E,Krtolica A,et al.Oxygen sensitivity severely limits the replicative lifespan of murine fibroblasts [J].Nature Cell Biology,2003,5(8):741-747.
DOI:網絡出版時間:2016-06-0816:2110.13207/j.cnki.jnwafu.2016.07.005
[收稿日期]2014-11-30
[基金項目]國家自然科學基金項目(31101894);“十二五”國家科技支撐計劃項目(2012BAD26B02);現(xiàn)代農業(yè)產業(yè)技術體系建設專項(nycytx-49-01)
[作者簡介]趙金坤(1989-),男(滿族),遼寧本溪人,在讀碩士,主要從事水產動物遺傳育種研究。E-mail:zjk1989akun@yeah.net [通信作者]李忠(1976-),男,山東濟南人,副研究員,博士,主要從事魚類遺傳育種研究。E-mail:Lizhong@yfi.ac.cn
[中圖分類號]S852
[文獻標志碼]A
[文章編號]1671-9387(2016)07-0034-05
Influence of hypoxic stress on apoptosis of hepatocyte and brain cells of silver carp(Hypophthalmichthysmolitrix)
ZHAO Jinkun1,LIANG Hongwei2,ZOU Guiwei2,WANG Huanling1,LI Zhong2
(1CollegeofFisheries,HuazhongAgriculturalUniversity,Wuhan,Hubei430070,China;2YangtzeRiverFisheriesResearchInstitute,ChineseAcademyofFisherySciences,Wuhan,Hubei430223,China)
Abstract:【Objective】 The apoptosis of hepatocyte and brain cells of silver carp(Hypophthalmichthys molitrix) under hypoxic stress was investigated by Annexin V/PI with flow cytometry and TUNEL.【Method】 Silver carp individuals were divided intonormal control group and hypoxic stress treatment group.The normal control group was normally bred while the hypoxic stress treatment group was treated with hypoxia in water tank,which was sealed with plastic wrap.Samples of liver and brain of silver carp were collected from normal and treatment groups at floating and death stages to analyze the apoptosis of hepatocyte and brain cells using Annexin V/PI with flow cytometry and TUNEL.【Result】 Rates of hepatocyte apoptosis of silver carp were 8.85% for control group,22.06% at floating stage and 22.91%at death stage.Rates of brain cells apoptosis were 8.18%,24.80% and 24.86% accordingly.TUNEL measurement showed that rates of hepatocyte apoptosis were 3.80%,36.78% and 37.27% for control,floating state and death stage,while those of brain cells apoptosis were 6.74%,35.04% and 35.71%.Compared with the control group,the apoptosis of hepatocyte and brain cells of silver carp was significantly increased under hypoxic stress.However,with the increase of hypoxia time,the number of apoptosis cells did not change significantly.【Conclusion】 Hypoxia stress significantly promoted the apoptosis of hepatocyte and brain cells of silver carp and the rates were not significantly changed by hypoxia time.
Key words:silver carp;cells apoptosis;hypoxic stress;Annexin V/PI;TUNEL
網絡出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1390.S.20160608.1621.010.html