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        擬南芥KCS12基因的克隆及其對長鏈脂肪酸代謝調(diào)控功能的初步分析

        2016-05-14 11:09:52靳遠(yuǎn)航余春娥鄭育聲
        南方農(nóng)業(yè)·下旬 2016年7期
        關(guān)鍵詞:擬南芥

        靳遠(yuǎn)航 余春娥 鄭育聲

        摘 要 本課題從擬南芥中克隆了超長鏈脂肪酸代謝相關(guān)的功能基因AtKCS12,轉(zhuǎn)入酵母(INVSC1)表達(dá)系統(tǒng)中表達(dá),檢測酵母細(xì)胞中脂肪酸組成。脂肪酸組成結(jié)果分析表明,AtKCS12使酵母中棕櫚酸(16∶0)和硬脂酸(18∶0)的相對含量顯著增加了,十八烯酸(18∶1)的相對含量顯著減少了。這些結(jié)果共同提示,AtKCS12表達(dá)的蛋白不能利用酵母中的脂肪酸作為催化底物合成超長鏈脂肪酸,或者AtKCS12蛋白無酶活性。

        關(guān)鍵詞 擬南芥;β-酮脂酰輔酶A合成酶;超長鏈脂肪酸;表達(dá)載體

        中圖分類號:S565.4 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:B DOI:10.19415/j.cnki.1673-890x.2016.21.109

        超長鏈脂肪酸(VLCFA)是生物體中碳原子數(shù)超過18碳的脂肪酸,直接參與油料作物中甘油脂、生物膜膜脂和鞘脂的生物合成,同時也為角質(zhì)層蠟質(zhì)的生物合成提供前體物質(zhì)[1]。在超長鏈脂肪酸合成過程中,KCS酶是催化第一步縮合反應(yīng)的調(diào)控延伸反應(yīng)的限速酶[2]。它以?;?CoA(≥C18)和丙二酰-CoA為原料,合成碳鏈延伸了2個C的β-酮脂酰-CoA[3]。研究顯示,擬南芥KCS基因家族有21個成員,依據(jù)氨基酸序列的同源性可將21個成員劃分為FAE1、KCS1、FDH、CER6四個亞組[3];而依據(jù)基因組構(gòu)成、親緣關(guān)系、蛋白質(zhì)的拓?fù)浣Y(jié)構(gòu)和3D構(gòu)象,21個基因成員又可分為8個亞類[4]。這些KCS基因在植物體的不同組織、器官特異性表達(dá),并具有底物特異性。

        雖然KCS家族在植物形成長鏈脂肪酸中發(fā)揮重要功能已有報道,部分家族成員的具體作用機制也已被證實,但其成員AtKCS12在不同種類脂肪酸形成過程的功能卻鮮有報道。本研究利用分子遺傳的方法,對在擬南芥中編碼脂肪酸代謝途徑中關(guān)鍵酶的基因AtKCS12的功能進(jìn)行研究,為下一步克隆油料作物中的AtKCS12,改善油料作物的含油量,提供更多長鏈以及超長鏈脂肪酸打下基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 實驗材料

        野生型擬南芥(Arabidopsis)的種子采自本實驗室。TIANScript cDNA第一鏈合成試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司;INVSc1酵母本實驗室保存;轉(zhuǎn)化入pYES2的E·Coli本實驗室保存。其他相關(guān)試劑購自上海生物工程公司。

        1.2 擬南芥RNA提取及cDNA合成

        擬南芥葉片的RNA采用CTAB-LiCl法提取[5]。cDNA合成參見TIANScript cDNA第一鏈合成試劑盒(TIANGEN,China)。

        1.3 酵母表達(dá)載體的構(gòu)建

        分別用SacI和XbaI,SacI和EcoRI兩種酶對KCS-pEASY質(zhì)粒和pYES2質(zhì)粒進(jìn)行酶切,T4連接酶連接,重組質(zhì)粒的轉(zhuǎn)化。

        1.4 重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)入INVSc1酵母細(xì)胞

        INVSc1酵母在缺His、Leu、Try、Ura的缺陷培養(yǎng)基上不能生長。pYES2質(zhì)??珊铣赡蜞奏?,故用尿嘧啶缺陷篩選。挑單個菌落接種于20 mL YPD液體培養(yǎng)基中,將1μg質(zhì)粒DNA,10μL變性鮭魚精子DNA(10 mg/mL)于上述酵母溶液混勻;加入1×LiAc/40%PEG-4000/1×TE,混勻;加入88 μLDMSO混勻,42 ℃加熱7 min;

        12 000 rpm離心10 s,重懸細(xì)胞,12 000 rpm再離心;涂布于SC-U固體培養(yǎng)基。

        1.5 酵母脂肪酸的分析

        收集酵母菌體后進(jìn)行酵母脂肪酸的提取與甲酯化[6]。石英毛細(xì)管柱HP-5(30 m×0.35 mm,0.25 μm),程序升溫:從180 ℃開始,以5 ℃/min升到230 ℃,保持20 min;載氣為He,柱流量1.5 mL/min,進(jìn)樣口溫度230 ℃,檢測器溫度為FID為230 ℃,分流比30∶1。色譜柱信息:Agilent Technologies,Inc。貨號:125-3237。型號:

        DB-FFAP 30 m×0.530 mm,0.5Micro[7]。

        1.6 數(shù)據(jù)處理

        采用SAS 6.0統(tǒng)計軟件分析,比較轉(zhuǎn)基因酵母與對照組酵母中脂肪酸含量的差異。若概率P<0.05,則認(rèn)為結(jié)果是顯著的;若P<0.01,則認(rèn)為結(jié)果是極顯著。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 AtKCS12的克隆和序列分析

        克隆AtKCS12 cDNA序列片段(見圖1A),將其連接到pEASY 載體后雙酶切(SacI和EcoRI)驗證。結(jié)果如圖1B所示,雙酶切(SacI,XbaI)和(SacI,EcoRI)后兩條帶的大小分別為1 500 bp左右與5 900 bp左右,結(jié)果與目的基因預(yù)期分子量大小相符合。

        AtKCS12含有一個1431bp的開放閱讀框架(ORF),編碼一個含476個氨基酸的多肽。AtKCS12基因編碼的氨基酸多肽,是縮合酶超家族的一員,包含查爾酮合酶(CHS_like)高度同源區(qū)域,該區(qū)域為91-1266bp編碼的392個氨基酸序列,結(jié)果表明,該cDNA序列很可能編碼脂肪酸代謝途徑中3-ketoacyl-CoA synthase。

        2.2 酵母轉(zhuǎn)化子鑒定

        將目的基因-pYES2重組表達(dá)載體轉(zhuǎn)入INVSc1酵母中,轉(zhuǎn)化效果良好,隨機挑選4個單菌落將其進(jìn)行擴培,提取質(zhì)粒并進(jìn)行PCR驗證是否成功將表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)入酵母,結(jié)果見圖2。

        由圖2可以看出,含目的基因的pYES2重組表達(dá)質(zhì)粒成功轉(zhuǎn)入酵母中,接下來將通過誘導(dǎo)培養(yǎng)基誘導(dǎo)目的基因表達(dá),收集菌體,進(jìn)行脂肪酸的提取與檢測分析。

        2.3 AtKCS12功能分析

        利用氣相-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)(GC-MS)分析酵母主要脂肪酸種類以及總脂肪酸含量。分別培養(yǎng)、誘導(dǎo)酵母轉(zhuǎn)化子和對照酵母,收集菌體,提取油脂,經(jīng)甲酯化后進(jìn)行氣相質(zhì)譜分析,主要有4個脂肪酸甲酯的峰,分別為C16∶0、C16∶1、C18∶0、C18∶1。將所得的數(shù)據(jù)用SAS軟件分析,比較轉(zhuǎn)基因酵母與對照組酵母脂肪酸含量的差異。分析結(jié)果如表1,數(shù)據(jù)以平均值標(biāo)準(zhǔn)方差的形式表示,而*表示樣品與對照組之間的差異顯著,**表示樣品與對照組之間的差異極顯著。

        AtKCS12轉(zhuǎn)基因酵母和對照的脂肪酸組成分析結(jié)果如圖3所示??梢钥闯?,與對照組相比,AtKCS12在轉(zhuǎn)基因酵母中表達(dá)使得酵母中的棕櫚酸(16∶0),硬脂酸(18∶0)的相對含量增加了4.5%,22.78%,十八烯酸(18∶1)的相對含量減少了5.85%,棕櫚烯酸(16∶1)的含量變化不顯著。

        3 討論

        本實驗克隆了擬南芥cDNA文庫中的AtKCS12基因,并在酵母(INVSc1)中進(jìn)行表達(dá)。分析脂肪酸組成發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)基因酵母和空白對照中只有C16∶0、C16∶1、C18∶0和C18∶1這4種長鏈脂肪酸,與空白對照相比,轉(zhuǎn)AtKCS12基因的酵母沒有檢測到超長鏈脂肪酸的合成。推測AtKCS12蛋白不能利用酵母中的C16∶0、C16∶1、C18∶0和C18∶1脂肪酸作為催化底物合成超長鏈脂肪酸,或者在酵母中異源表達(dá)的AtKCS12蛋白沒有酶活性。

        參考文獻(xiàn)

        [1]鄭德松.油脂合成過程中甘油三磷酸脫氫酶基因及乙酰輔酶A羧化酶基因的克隆與鑒定[D].濟南:山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2012.

        [2]周丹,趙江哲,柏楊,等.植物油脂合成代謝及調(diào)控的研究進(jìn)展[J]. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2012,35(5):77-86.

        [3] Wu G, Wu Y, Xiao L, et al. Zero Erucic Acid trait of Rapeseed (Brassica napus L.) Results from a Deletion of Four Base Pairs in the Fatty Acid Elongase 1 Gene[J].Theoretical and Applied Genetics,2008, 16(4):491-499.

        [4] Costaglioli P, Joubès J, Garcia C, et al. Profiling Candidate Genes Involved in Wax Biosynthesis in Arabidopsis Thaliana by Microarray Analysis[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular and Cell Biology of Lipids, 2005, 1734(3): 247-258.

        [5] Joubès J, Raffaele S, Bourdenx B, et al. The VLCFA Elongase Gene Family in Arabidopsis Thaliana: Phylogenetic Analysis, 3D Modelling and Expression Profiling[J]. Plant molecular biology, 2008, 67(5): 547-566.

        [6]Paul S, Gable K, Beaudoin F, et al. Members of the Arabidopsis FAE1-like 3-ketoacyl-CoA Synthase Gene Family Substitute for the Elop Proteins of Saccharomyces Cerevisiae[J]. Journal of Biological Chemistry, 2006, 281(14): 9018-9029.

        [7]Chi X,Yang Q,Pan L, et al. Isolation and Characterization of Fatty Acid Desaturase Genes from Peanut (Arachis hypogaea L.)[J].Plant Cell Reperts,2011(30):1393-1404.

        (責(zé)任編輯:劉昀)

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