魏潔書++王煥++戴慧明++卿志浩++楊錦芬
摘要:HMGR和DXR分別是萜類生物合成途徑——MVA和MEP途徑的2個關鍵酶。本研究對煙草施用HMGR和DXR的專一抑制劑洛伐他?。∕EV)和膦胺霉素(FSM),測定煙草NtHMGR、NtDXR、FPPS和GGPPS基因轉錄水平、HMGR和DXR酶活性變化。結果表明,抑制劑處理后煙草內源基因NtHMGR和NtDXR表達量在24h受到明顯抑制;HMGR和DXR活性均在一定時間內受到抑制。MEV和FSM能有效抑制煙草中HMGR和DXR的活性。
關鍵詞:3-羥基-3-甲基戊二酰輔酶A還原酶(HMGR);1-去氧-D-木酮糖-5-磷酸還原異構酶(DXR);洛伐他??;膦胺霉素
中圖分類號:TS411文獻標識碼:A
植物萜類化合物的生物合成至少有2條途徑。細胞質中的甲羥戊酸途徑(mevalonate pathway,MVA途徑);質體中的2-甲基赤蘚糖醇-4-磷酸途徑(2-C-methyl-D-erythritol-4-phosphate pathway,MEP途徑)[1]。3-羥基-3-甲基戊二酰輔酶A還原酶(3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase,HMGR)和1-去氧-D-木酮糖-5-磷酸還原異構酶(1-deoxy-D-xylulose-5-phosphate reductoisomerase,DXR)分別是MVA和MEP上游途徑中的2個關鍵酶[2,3]。
洛伐他?。╩evinolin,MEV)是HMGR的專一抑制劑,它能與HMGR的活性部位結合,競爭性抑制3-羥基-3-甲基戊二酰輔酶A(HMG-CoA)轉變成甲羥戊酸(MVA)[4,5];膦胺霉素(fosmidomycin,F(xiàn)SM)是DXR的專一抑制劑,它能阻斷1-去氧木糖-5磷酸(DXP)合成2-甲基赤蘚糖醇-4-磷酸(MEP)[6,7]。
1材料與方法
1.1材料
野生型煙草“中煙90”種子,由廣州中醫(yī)藥大學中藥資源科學與工程研究中心保存。
1.2主要儀器與試劑
MEV(美國Sigma公司);FSM(美國Sigma公司); CFX96熒光定量PCR儀(美國Bio-Rad公司);UV-1800型紫外分光光度計(日本島津公司)。
1.3方法
1.3.1考察抑制劑噴施濃度和取樣時間
考察噴施濃度和取樣時間:播種煙草種子,溫室培養(yǎng)至三葉一心期(苗齡約6周),進行噴施。植株分為4組,分別噴施MEV、MEV溶劑對照、FSM、純水對照,連噴3d,觀察植株生長情況,取致植株全部白化或變形的最低濃度為抑制劑最適濃度。未處理煙草長至6個月,噴施最適濃度抑制劑,噴施前采樣作為0h樣品,噴施處理6h、12h、24h、36h、48h后各采集葉片100mg,提取RNA,熒光定量PCR檢測。引物見表1,引物退火溫度篩選、標準曲線建立方法參考文獻[8]。反應條件為:95℃ 30s;95℃ 3s,60℃ 5s,40個循環(huán)。采用比較Ct值法[9]計算基因相對表達量F,公式為F=2-△△Ct,其中△△Ct=(待測組目的基因Ct值-待測組內參基因Ct值)-(對照組目的基因Ct值-對照組內參基因Ct值)。0h樣品檢測NtHMGR、NtDXR基因表達量,MEV及對照噴施組檢測NtHMGR基因的表達量,F(xiàn)SM及對照噴施組檢測NtDXR基因表達量。
1.3.2基因表達量和酶活性的測定
用考察濃度后的抑制劑噴施苗齡6個月的煙草,測定煙草內源基因NtHMGR和NtDXR、下游基因FPPS和GGPPS表達量。噴施前采樣作為0h樣品,噴施處理24h、36h、48h后各采集煙草葉片100mg。酶活性的測定根據(jù)底物專一性原理,具體測定方法參考文獻[10]。煙草葉片于MEV噴施處理后12h、24h、48h后采集,F(xiàn)SM噴施處理后24h、48h后采集。
2實驗結果
2.1確定MEV和FSM噴施煙草最適濃度和取樣時間
MEV噴施煙草后,葉片呈現(xiàn)皺縮的現(xiàn)象,如圖1,使用不同濃度MEV噴施后,煙草皺縮苗率有所不同,用350μmol/L噴施后,煙草皺縮苗率達到57.5%,而400μmol/L噴施后皺縮苗率僅為45%,溶劑噴施后葉片沒有出現(xiàn)皺縮(圖2)。故采用350μmol/L的MEV為最適噴施濃度。
a.噴施MEV后的皺縮苗b.噴施溶劑后的正常苗圖1350μmol/L MEV和溶劑噴施后煙草幼苗表型對比
圖2不同濃度MEV噴施煙草幼苗后的皺縮苗率
FSM噴施煙草后,葉片呈現(xiàn)黃化及白化的現(xiàn)象,如圖3,使用不同濃度FSM噴施后,煙草黃白苗所占比例有所不同,用75μmol/L噴施后,黃苗率達到67.5%,用100μmol/L噴施后,白苗率達到82.5%,用150μmol/L和200μmol/L噴施后,白苗率都達到95%,其余5%均出現(xiàn)黃化(圖4),說明150μmol/L FSM處理煙草即可達到效果,故采用150μmol/L為最適噴施濃度。
a.噴施FSM后的白化苗b.噴施純水后的正常苗圖3150μmol/L FSM和純水噴施后煙草幼苗表型變化
圖4不同濃度FSM噴施煙草幼苗后的黃白苗率
專一抑制劑噴施煙草后,對應的基因表達量會隨著時間的變化有所降低和升高。NtHMGR表達量在36h達到最高值,為未處理的4.34倍,如圖5-a。NtDXR基因表達量在36h達到最高值,為未處理的6.26倍,如圖5-b。
根據(jù)圖5變化趨勢確定基因表達量采樣時間為24h、36h、48h,HMGR酶活性為12h、24h、48h,DXR酶活性為24h、48h。a.MEV噴施煙草NtHMGR基因表達量變化b.FSM噴施煙草NtDXR基因表達量變化圖5專一抑制劑噴施煙草后NtHMGR和NtDXR表達量變化
2.2噴施MEV和FSM對煙草基因表達量和酶活性的影響
2.2.1基因表達量變化
MEV噴施煙草后,NtHMGR表達量在36h達到最高值,如圖6-a。FSM噴施后,NtDXR基因表達量在36h有一個低谷,36~48h出現(xiàn)升高,如圖6-b。MEV噴施后,F(xiàn)PPS與GGPPS表達量在36h達到最高值,在48h回到原水平,與NtHMGR表達變化呈現(xiàn)一致的趨勢,如圖6-c。FSM噴施后,F(xiàn)PPS表達量緩慢升高,GGPPS表達量變化不大,如圖6-d。圖6MEV及FSM噴施野生型煙草后基因表達量變化
2.2.2HMGR和DXR活性變化
煙草在噴施專一抑制劑MEV后,HMGR活性在12h、24h和48h分別是溶劑對照的0.82倍、0.80倍和1.29倍。12h和24h時HMGR活性受到抑制,48h HMGR活性出現(xiàn)了反饋性的提高,如圖7-a。噴施FSM后,煙草內的DXR活性在24h和48h分別是溶劑對照的1.3倍和0.485倍,DXR活性在48h受到抑制,如圖7-b。
3討論
作為植物中萜類生物合成途徑MVA途徑和MEP途徑中關鍵酶的抑制劑,洛伐他?。∕EV)和膦胺霉素(FSM)已經(jīng)被廣泛應用于HMGR和DXR的調控研究[11,12]。本文對煙草施用MEV和FSM,抑制了HMGR或DXR酶活性,煙草內源基因NtHMGR、NtDXR,下游基因FPPS、GGPPS表達量在一定時間內有所提高。a.煙草噴施MEV和溶劑對照HMGR活性比較b.煙草噴施FSM和溶劑對照DXR活性比較圖7煙草噴施抑制劑和溶劑對照酶活性含量比較
噴施抑制劑MEV后,煙草HMGR活性在12~24h受到抑制后,NtHMGR基因及下游FPPS、GGPPS基因表達水平均出現(xiàn)反饋性提高,從而彌補了HMGR由于受抑制而降低的現(xiàn)象,增加HMGR的合成,在48h時測定的HMGR活性回升至比對照更高的水平,推測此時NtHMGR基因轉錄由于已滿足HMGR的合成需求,因此又回落至處理前水平,下游基因表達水平也在此時回落。Joseph和Ross[13]研究發(fā)現(xiàn),在煙草細胞培養(yǎng)液中添加一定濃度的MEV,可使細胞內HMGR活性比對照減少33%以上,本實驗煙草噴施MEV后HMGR活性在24h內受到抑制。噴施抑制劑FSM后,煙草DXR活性在24h并未受到明顯影響,NtDXR基因及下游FPPS、GGPPS基因表達水平也與對照持平,在48h時DXR活性受到抑制,NtDXR基因表達出現(xiàn)一個明顯上升的趨勢,說明此時基因轉錄水平出現(xiàn)了反饋性的提高,下游FPPS基因表達水平也隨之逐漸上升。用HMGR和DXR的專一抑制劑處理煙草后,相應的酶基因及部分下游基因表達水平有明顯增加,表明煙草體內對抑制劑處理具有明顯的反饋補償作用,由于抑制劑抑制了IPP合成途徑中關鍵酶的活性,導致IPP來源不足,細胞通過增加關鍵酶基因轉錄水平的表達來抵消抑制劑的作用。
4結語
本文結果表明,通過對煙草施用MVA途徑和MEP途徑中關鍵酶HMGR和DXR的專一抑制劑洛伐他?。∕EV)和膦胺霉素(FSM),在一定時間內抑制了HMGR或DXR酶活性,煙草內源基因NtHMGR、NtDXR,下游基因FPPS、GGPPS表達量在一定時間內有所提高,該結果為利用MEV和FSM抑制植物萜類的合成,以及進一步闡明萜類化合物2條生物合成途徑間的協(xié)同作用奠定了良好的實驗基礎。
參考文獻
[1]Vranová E,Coman D,Gruissem W.Network analysis of the MVA and MEP pathways for isoprenoid synthesis[J].Annu Rev Plant Biol,2013,64:665-700.
[2]Carretero-Paulet L,Ahumada I,Cunillera N,et al.Expression and molecular analysis of the Arabidopsis DXR gene encoding 1-deoxy-D-xylulose 5-phosphate reductoisomerase,the first committed enzyme of the 2-C-methyl-D-erythritol 4-phosphate pathway[J].Plant Physiol,2002,129(04):1581-1591.
[3]羅永明,劉愛華,李琴,等.植物萜類化合物的生物合成途徑及其關鍵酶的研究進展[J].江西中醫(yī)學院學報,2003,15(01):45-51.
[4]蔡正艷,周偉澄.3-羥基-3-甲基戊二酞輔酶A還原酶抑制劑的構效關系研究進展[J].中國新藥雜志,2006,15(22):1907-1911.
[5]Bach TJ,Lichtenthaler HK.Mevinolin:a highly specific inhibitor of microsomal 3-hydroxy-3-methylglutarylcoenzyme A reductase of radish plants[J].Z Naturforsch,1982,37:46-50.
[6]Zeidler J,Schwender J,Müller C,et al.Inhibition of the non-mevalonate 1-deoxy-D-xylulose-5-phosphate athway of plant isoprenoid biosynthesis by fosmidomycin[J].Z Naturforsch,1998,53:980-986.
[7]Kuzuyama T,Shimizu T,Takahashi S.Fosmidomycin,a specific inhibitor of 1-deoxy-D-xylulose 5-phosphate reductoisomerasein the nonmevalonate pathway for terpenoid biosynthesis[J].Tetrahedron Lett,1998,39:7913-7916.
[8]魏潔書,楊錦芬,凌敏,等.茉莉酸甲酯調控陽春砂HMGR、DXR和DXS基因表達[J].廣州中醫(yī)藥大學學報,2013,30(01):88-92.
[9]魏潔書,楊錦芬.應用熒光定量比較Ct值法測定基因相對表達量[J].中國科技論文在線精品論文,2013,6(05):390-395.
[10]劉卉,陽春砂HMGR和DXR基因在煙草萜類化合物生物合成中的功能研究[D].廣州:廣州中醫(yī)藥大學,2012.
[11]Skorupinska-Tudek K,Poznanski J,Wojcik J,et al.Contribution of the mevalonate and methylerythritol phosphate pathways to the biosynthesis of dolichols in plants[J].J Biol Chem,2008,283(30):21024-21035.
[12]Roberts S C.Production and engineering of terpenoids in plant cell culture[J].Nat Chem Biol,2007,3(07):387-395.
[13]Joseph Chappell,Ross Nable.Induction of Sesquiterpenoid Biosynthesis in Tobacco CellSuspension Cultures by Fungal Elicitor[J].Plant Physiol,1987(85):469-473.
農(nóng)業(yè)與技術2015年3期