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        人參皂苷Rh2通過(guò)激活Gsk-3β削弱β-catenin在肝癌HepG2細(xì)胞中的作用①

        2016-01-08 10:26:23石慶強(qiáng)左國(guó)偉馮子強(qiáng)趙綠翠游智梅李丹陽(yáng)陳地龍
        中國(guó)免疫學(xué)雜志 2015年11期
        關(guān)鍵詞:皂苷人參肝癌

        石慶強(qiáng) 左國(guó)偉 馮子強(qiáng) 趙綠翠 羅 念 游智梅 夏 菁 李丹陽(yáng) 李 靜 陳地龍

        (重慶北部新區(qū)第一人民醫(yī)院急診科,重慶401121)

        ①本文為國(guó)家自然科學(xué)基金(31271368)和重慶市教委基金(KJ110308)。

        ②重慶醫(yī)科大學(xué)臨床檢驗(yàn)診斷學(xué)省部共建教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,重慶400016。

        ③重慶醫(yī)科大學(xué),組織學(xué)與胚胎學(xué)教研室,干細(xì)胞與組織工程研究室,重慶400016。

        陳地龍(1971年-),男,博士,研究員,碩士生導(dǎo)師,主要從事中藥對(duì)腫瘤的抑制作用方面的研究,E-mail: chendilong@21cn.com。

        [摘 要] 目的:研究人參皂苷Rh2對(duì)HepG2細(xì)胞的作用機(jī)制。方法:用pLOV-EF1a-MCS-3FLAG-β-catenin慢病毒感染HepG2細(xì)胞,運(yùn)用熒光顯微鏡觀察細(xì)胞熒光強(qiáng)度變化。通過(guò)CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞增殖反應(yīng)。采用FCM檢測(cè)細(xì)胞周期及凋亡變化;利用ELISA法檢測(cè)細(xì)胞產(chǎn)生Gsk-3β活性;用PCR法檢測(cè)細(xì)胞Gsk-3β、β-catenin、Bcl2、CyclinD1、Bax、MMP3基因的表達(dá);用CHIP法檢測(cè)細(xì)胞Bcl2、CyclinD1、Bax、MMP3基因的表達(dá);運(yùn)用Western blot法檢測(cè)細(xì)胞Gsk-3β、β-catenin、Bcl2、CyclinD1、Bax、MMP3蛋白的表達(dá)。結(jié)果:用pLOV-EF1a-MCS-3FLAG-β-catenin慢病毒感染HepG2細(xì)胞,被感染的HepG2細(xì)胞命名為HepG2-β-catenin;CCK-8分析結(jié)果顯示,加藥組給予(10~160 μmol/L)Rh2后HepG2及HepG2-β-catenin細(xì)胞的增殖受到抑制,且Rh2對(duì)肝癌HepG2-β-catenin和HepG2細(xì)胞的生長(zhǎng)抑制呈劑量和時(shí)間依賴。在HepG2細(xì)胞中48、72 h 半數(shù)抑制率分別為100 μmol/L,58.12 μmol/L,在HepG2-β-catenin細(xì)胞中48、72 h半數(shù)抑制率分別是129.2 μmol/L,83.33 μmol/L,故Rh2作用于HepG2-β-catenin細(xì)胞濃度均高于HepG2細(xì)胞,與HepG2細(xì)胞組比較差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。FCM檢測(cè)結(jié)果顯示,Rh2可誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞周期阻滯在G0/G1期,HepG2+ Rh2組G0/G1期(64.57±0.65),而HepG2-β-catenin+ Rh2組G0/G1期(58.61±2.01);FCM檢測(cè)結(jié)果顯示,Rh2可誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞早期凋亡,HepG2+ Rh2組凋亡率(17.27±2.77),而HepG2-β-catenin+ Rh2組凋亡率(9.02±1.76)。ELISA結(jié)果顯示,Rh2作用HepG2細(xì)胞12、24、48、72 h后,Gsk-3β的活性隨著作用時(shí)間延長(zhǎng),逐漸升高,在48 h最高,隨后其活性開始降低。Rh2誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞48 h,與對(duì)照組相比,Gsk-3β的活性均增高,而加入Bio后其活性降低,HepG2+ Rh和HepG2-β-catenin+ Rh2組間無(wú)明顯差異;PCR、CHIP、WB結(jié)果顯示,人參皂苷Rh2誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞后,Gsk-3β、Bax基因及蛋白表達(dá)增加,而β-catenin、CyclinD1、Bcl2、MMP3基因及蛋白表達(dá)水平下調(diào)。與HepG2-β-catenin+Rh2組相比,HepG2+Rh2組除Gsk-3β外各基因及蛋白的表達(dá)變化更為顯著。結(jié)論:過(guò)表達(dá)β-catenin可削弱人參皂苷Rh2對(duì)肝癌HepG2細(xì)胞的藥理作用。人參皂苷Rh2通過(guò)激活Gsk-3β降解β-catenin,影響下游基因的表達(dá),促進(jìn)肝癌細(xì)胞的凋亡及抑制其轉(zhuǎn)移。

        [關(guān)鍵詞] 人參皂苷Rh2;HepG2;Gsk-3β;β-catenin

        doi:10.3969/j.issn.1000-484X.2015.11.008

        ·中醫(yī)中藥與免疫·

        人參皂苷Rh2通過(guò)激活Gsk-3β削弱β-catenin在肝癌HepG2細(xì)胞中的作用①

        石慶強(qiáng)左國(guó)偉②馮子強(qiáng)③趙綠翠③羅念③游智梅③夏菁③李丹陽(yáng)③李靜③陳地龍③

        (重慶北部新區(qū)第一人民醫(yī)院急診科,重慶401121)

        ①本文為國(guó)家自然科學(xué)基金(31271368)和重慶市教委基金(KJ110308)。

        ②重慶醫(yī)科大學(xué)臨床檢驗(yàn)診斷學(xué)省部共建教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,重慶400016。

        ③重慶醫(yī)科大學(xué),組織學(xué)與胚胎學(xué)教研室,干細(xì)胞與組織工程研究室,重慶400016。

        陳地龍(1971年-),男,博士,研究員,碩士生導(dǎo)師,主要從事中藥對(duì)腫瘤的抑制作用方面的研究,E-mail: chendilong@21cn.com。

        [摘要]目的:研究人參皂苷Rh2對(duì)HepG2細(xì)胞的作用機(jī)制。方法:用pLOV-EF1a-MCS-3FLAG-β-catenin慢病毒感染HepG2細(xì)胞,運(yùn)用熒光顯微鏡觀察細(xì)胞熒光強(qiáng)度變化。通過(guò)CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞增殖反應(yīng)。采用FCM檢測(cè)細(xì)胞周期及凋亡變化;利用ELISA法檢測(cè)細(xì)胞產(chǎn)生Gsk-3β活性;用PCR法檢測(cè)細(xì)胞Gsk-3β、β-catenin、Bcl2、CyclinD1、Bax、MMP3基因的表達(dá);用CHIP法檢測(cè)細(xì)胞Bcl2、CyclinD1、Bax、MMP3基因的表達(dá);運(yùn)用Western blot法檢測(cè)細(xì)胞Gsk-3β、β-catenin、Bcl2、CyclinD1、Bax、MMP3蛋白的表達(dá)。結(jié)果:用pLOV-EF1a-MCS-3FLAG-β-catenin慢病毒感染HepG2細(xì)胞,被感染的HepG2細(xì)胞命名為HepG2-β-catenin;CCK-8分析結(jié)果顯示,加藥組給予(10~160 μmol/L)Rh2后HepG2及HepG2-β-catenin細(xì)胞的增殖受到抑制,且Rh2對(duì)肝癌HepG2-β-catenin和HepG2細(xì)胞的生長(zhǎng)抑制呈劑量和時(shí)間依賴。在HepG2細(xì)胞中48、72 h 半數(shù)抑制率分別為100 μmol/L,58.12 μmol/L,在HepG2-β-catenin細(xì)胞中48、72 h半數(shù)抑制率分別是129.2 μmol/L,83.33 μmol/L,故Rh2作用于HepG2-β-catenin細(xì)胞濃度均高于HepG2細(xì)胞,與HepG2細(xì)胞組比較差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。FCM檢測(cè)結(jié)果顯示,Rh2可誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞周期阻滯在G0/G1期,HepG2+ Rh2組G0/G1期(64.57±0.65),而HepG2-β-catenin+ Rh2組G0/G1期(58.61±2.01);FCM檢測(cè)結(jié)果顯示,Rh2可誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞早期凋亡,HepG2+ Rh2組凋亡率(17.27±2.77),而HepG2-β-catenin+ Rh2組凋亡率(9.02±1.76)。ELISA結(jié)果顯示,Rh2作用HepG2細(xì)胞12、24、48、72 h后,Gsk-3β的活性隨著作用時(shí)間延長(zhǎng),逐漸升高,在48 h最高,隨后其活性開始降低。Rh2誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞48 h,與對(duì)照組相比,Gsk-3β的活性均增高,而加入Bio后其活性降低,HepG2+ Rh和HepG2-β-catenin+ Rh2組間無(wú)明顯差異;PCR、CHIP、WB結(jié)果顯示,人參皂苷Rh2誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞后,Gsk-3β、Bax基因及蛋白表達(dá)增加,而β-catenin、CyclinD1、Bcl2、MMP3基因及蛋白表達(dá)水平下調(diào)。與HepG2-β-catenin+Rh2組相比,HepG2+Rh2組除Gsk-3β外各基因及蛋白的表達(dá)變化更為顯著。結(jié)論:過(guò)表達(dá)β-catenin可削弱人參皂苷Rh2對(duì)肝癌HepG2細(xì)胞的藥理作用。人參皂苷Rh2通過(guò)激活Gsk-3β降解β-catenin,影響下游基因的表達(dá),促進(jìn)肝癌細(xì)胞的凋亡及抑制其轉(zhuǎn)移。

        [關(guān)鍵詞]人參皂苷Rh2;HepG2;Gsk-3β;β-catenin

        doi:10.3969/j.issn.1000-484X.2015.11.008

        中圖分類號(hào)R735.7

        文獻(xiàn)標(biāo)志碼碼A

        文章編號(hào)號(hào)1000-484X(2015)11-1476-10

        作者簡(jiǎn)介:石慶強(qiáng)(1986年-),男,醫(yī)師,主要從事人參對(duì)腫瘤的抑制作用方法的研究,同時(shí)就職于重慶醫(yī)科大學(xué),組織學(xué)與胚胎學(xué)教研室,干細(xì)胞與組織工程研究室,E-mail:569770664@qq.com。

        通訊作者及指導(dǎo)教師:李靜(1972年-),女,博士,副教授,碩士生導(dǎo)師,主要從事中藥對(duì)腫瘤的抑制作用方面的研究,E-mail: lijingyangyang@126.com.cn。

        [Abstract]Objective:To investigate the inhibitory effect of Rh2 on HepG2 cells and explore the underlying mechanism.Methods: We used lentivirus carrying β-catenin to infect HepG2 cell,and detected expression of β-catenin using fluorescence microscopy.The effect of Rh2 on proliferation of HepG2-β-catenin and HepG2 cells was measured by CKK-8 assay,and flow cytometry was used to detect cell cycle and apoptosis.The activity of Gsk-3β was checked by ELISA kit.The expression of Gsk-3β,β-catenin,Bax,Bcl2,CyclinD1,MMP3 genes were measured by qRT-PCR.In order to checked the relationship between β-catenin and TCF4,CHIP assay kit was used,the expression of Bax,Bcl2,CyclinD1,MMP3 genes were measured by PCR.The expressions of Gsk-3β,β-catenin,Bax,Bcl2,CyclinD1,MMP3 proteins were examined by Western blot.Results: HepG2 cells were successfully infected by pLOV-EF1a-MCS-3FLAG-β-catenin lentivirus,named HepG2-β-catenin.CCK-8 showed that ginsenoside Rh2 could effectively inhibit the proliferation of HepG2 and HepG2-β-catenin cells in vitro,which exhibits a dose-dependent manner at range of 10-160 μmol/L Rh2.The IC50 of Rh2 exposure on HepG2 cell for 48,72 h were 100 μmol/L and 58.12 μmol/L,but the IC50 of Rh2 exposure on HepG2-β-catenin for 48,72 h were 129.2 μmol/L,83.33 μmol/L,respectively. The IC50 of Rh2 exposure on HepG2-β-catenin cell was higher than HepG2 cell,compared with HepG2 group the differences was statistically significant(P< 0.01).Flow cytometry indicated that Rh2 could arrest HepG2 and HepG2-β-catenin cells in G0/G1 phase;the cell population in G0/G1 phase of HepG2+Rh2 group was(64.57±0.65)%,HepG2-β-catenin+Rh2 group was(58.61±2.01)%.Flow cytometry indicated that Rh2 could induced early apoptosis in HepG2 and HepG2-β-catenin cells.The apoptosis rate of HepG2 + Rh2 group was (17.27 ± 2.77)%,HepG2-β-catenin + Rh2 group(9.02 ± 1.76)%.The ELISA results indicated that HepG2 cells was induced by Rh2 for 12,24,48,72 h,the activity of Gsk-3β gradually increased,peak in 48 h,then decreased.Compared with control group,Rh2 induced HepG2 and HepG2-β-catenin cells for 48 hours,Gsk-3β activity were increased,and their activity reduced after adding Bio,there were no significant differences between HepG2+Rh2 and HepG2-β-catenin+Rh2 groups.The PCR,CHIP and WB results showed that the expression of Gsk-3β,Bax gene and proteins increased,while the β-catenin,CyclinD1,Bcl2,MMP3 gene and proteins down-regulation in HepG2 and HepG2-β-catenin cell induced by Rh2.Compared with HepG2-β-catenin + Rh2 group,the expression of other gene and proteins changed significantly,however,Gsk-3β was no significant difference.Conclusion: Over-expression of β-catenin may weaken the pharmacological effects of ginsenoside Rh2 on HepG2 cells.The activity of Gsk-3β was increased by ginsenoside Rh2 to degrade β-catenin,affecting the expression of downstream genes,promoting apoptosis of liver cancer cells and inhibiting metastasis.

        Rh2 weaken effects of β-catenin on HepG2 hepatocellular carcinoma through activating Gsk-3β

        SHIQing-Qiang,ZUOGuo-Wei,FENGZi-Qiang,ZHAOLü-Cui,LUONian,YOUZhi-Mei,XIAJing,LIDan-Yang,LIJing,CHENDi-Long.EmergencyDepartmentofFirstPeople′sHospitalofChongqingNewNorthZone,Chongqing401121,China

        [Key words]Rh2;HepG2,Gsk-3β;β-catenin

        肝癌(Hepatocellular carcinoma,HCC)是世界上最常見(jiàn)的惡性腫瘤之一,易于肝內(nèi)轉(zhuǎn)移及向肺、骨、腎、腦轉(zhuǎn)移[1,2]。在中國(guó)有十分之一的人攜帶肝炎病毒,肝炎病毒是致癌的高危因素,而肝癌的發(fā)病率正在逐年增加[3,4]。盡管在診斷和治療取得很大進(jìn)步,但肝癌仍是癌癥相關(guān)死亡的全球第三大原因。對(duì)廣大肝癌患者來(lái)說(shuō),手術(shù)切除是最有效的治療方法,但5年生存率<12%[5]。隨著介入治療的發(fā)展,使化療藥物可以直接作用于肝癌細(xì)胞,部分患者的壽命得以延長(zhǎng)[6-8]。然而,有的肝癌患者對(duì)化療不敏感,容易產(chǎn)生耐藥。對(duì)于這部分患者來(lái)說(shuō),目前缺乏有效的治療方法。因此,尋求有效的藥物來(lái)提高治療效果成為研究焦點(diǎn)。

        越來(lái)越多的研究顯示,治療肝癌時(shí)人參成為備選藥物之一,人參的預(yù)防和抗癌作用通過(guò)損傷DNA、誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡、抑制細(xì)胞增殖及免疫調(diào)節(jié)發(fā)揮作用[9-12]。研究證明用人參皂苷Rh2誘導(dǎo)SMMC-7721細(xì)胞后,可使細(xì)胞周期阻滯在G0/G1期,并減少S期和G2/M期的細(xì)胞比例。此外,人參皂苷Rh2可下調(diào)正性調(diào)控因子(CyclinD1、CyclinE)的表達(dá),并上調(diào)負(fù)性調(diào)控因子(P16、P21基因)的表達(dá)[13]。有研究報(bào)道,人參皂甙Rh2可誘導(dǎo)胰腺癌細(xì)胞、肝癌細(xì)胞和A549肺癌細(xì)胞的凋亡。

        Wnt信號(hào)通路的異常激活同多種惡性腫瘤如結(jié)、直腸癌,肝癌,乳腺癌,前列腺癌等發(fā)生發(fā)展有關(guān)[14]。β-catenin作為Wnt通路中重要的信號(hào)傳遞因子參與調(diào)節(jié)細(xì)胞的生長(zhǎng)和增殖。研究發(fā)現(xiàn),肝癌細(xì)胞中β-catenin蛋白的表達(dá)水平顯著高于癌旁組織,同時(shí),β-catenin對(duì)抗癌藥物有抵抗作用。β-catenin在正常組織及癌組織中,其穩(wěn)定性依賴于由Axin、APC 和 GSK-3β構(gòu)成的降解復(fù)合物,主要由GSK-3β調(diào)節(jié)β-catenin在細(xì)胞內(nèi)的表達(dá)水平。在無(wú)Wnt刺激下,GSK-3β作用于Axin、APC和β-catenin蛋白組成的復(fù)合物并磷酸化β-catenin,被磷酸化的β-catenin可以蛋白酶體的方式迅速降解[15];在Wnt的刺激下,GSK-3β向細(xì)胞膜轉(zhuǎn)移并與Dishevelled和LRP-5受體結(jié)合從而阻止GSK3β對(duì)β-catenin的磷酸化,其結(jié)果是β-catenin逃脫了蛋白酶體的降解,從而在胞漿累積并向胞核移位。聚集在核內(nèi)的β-catenin與轉(zhuǎn)錄因子如LEF/TCF相互作用,啟動(dòng)下游靶基因的轉(zhuǎn)錄,如c-Myc、CyclinD1、c-jun/fra-1、uPAR、PPARδ、MMP-3、WISP等[16]。上述基因的激活會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞增殖加速和向遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移的能力增強(qiáng),故GSK-3β可作為一個(gè)潛在的抗癌靶點(diǎn)。

        糖原合酶激酶-3(Glycogen synthase kinase 3,GSK-3)是一種廣泛表達(dá)的絲氨酸/蘇氨酸激酶,在1970年被發(fā)現(xiàn),是參與糖原代謝的關(guān)鍵酶。GSK-3由 433個(gè)氨基酸殘基組成,在哺乳動(dòng)物體內(nèi)含有GSK-3α和 GSK-3β兩種亞型,二者有類似的立體結(jié)構(gòu)和底物,但其功能有所不同,其廣泛存在于各種細(xì)胞中,除了其在糖原代謝中的作用,GSK-3β作為一個(gè)下游調(diào)節(jié)開關(guān),參與多種信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路調(diào)節(jié),在胚胎發(fā)育、細(xì)胞分化、腫瘤形成等多方面發(fā)揮重要作用[17]。Tsuchiya等[18]在結(jié)腸癌細(xì)胞中發(fā)現(xiàn),GSK-3β可通過(guò)降解β-catenin來(lái)抑制結(jié)腸癌細(xì)胞的生長(zhǎng)。此外,在實(shí)體腫瘤的化療時(shí),影響化療藥物的敏感性和耐藥性與GSK-3β活性相關(guān)。研究發(fā)現(xiàn),肝癌細(xì)胞中GSK-3β蛋白的表達(dá)水平顯著低于正常肝組織及癌旁組織,而且低表達(dá)的GSK-3β臨床病理特征預(yù)示著預(yù)后不良[19]。我們實(shí)驗(yàn)室研究發(fā)現(xiàn),TSPG和Rh2可抑制KG1α細(xì)胞增殖而誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,經(jīng)TSPG和Rh2作用后,KG1α細(xì)胞胞核中的β-catenin蛋白明顯減少,其表達(dá)區(qū)域由胞核向胞膜轉(zhuǎn)移。在肝癌細(xì)胞中Rh2是否有類似的作用?而過(guò)表達(dá)β-catenin是否可以削弱Rh2這一藥理作用呢?Rh2使KG1α細(xì)胞胞核中的β-catenin蛋白減少,這與GSK-3β是否有關(guān)?

        因此,我們假設(shè)Rh2抗癌的作用可能是激活了GSK-3β的活性從而降解β-catenin。我們首先檢測(cè)Rh2對(duì)HepG2細(xì)胞的藥理作用,然后構(gòu)建了過(guò)表達(dá)β-catenin的慢病毒質(zhì)粒感染HepG2細(xì)胞,檢驗(yàn)過(guò)表達(dá)β-catenin能否削弱Rh2對(duì)HepG2細(xì)胞的藥理作用;再用GSK-3β抑制劑Bio[(2′Z,3′E)-6-Bromoindirubin-3′-oxime,糖原合酶激酶-3β抑制劑]來(lái)驗(yàn)證Rh2是否激活了GSK-3β;用PCR、CHIP、WB檢測(cè)β-catenin下游基因的變化,進(jìn)一步證實(shí)Rh2對(duì)HepG2細(xì)胞的藥理作用可能是通過(guò)激活了GSK-3β的活性從而降解β-catenin來(lái)實(shí)現(xiàn)的。

        1材料與方法

        1.1材料人參皂苷 Rh2 購(gòu)于標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)網(wǎng),純度99%;Bio購(gòu)于Sigma,人肝癌細(xì)胞 HepG2株,由左國(guó)偉教授提供,pLOV-EF1a-MCS-3FLAG質(zhì)粒(re-expression β-catenin慢病毒質(zhì)粒及空質(zhì)粒)及293T慢病毒包裝細(xì)胞由上海紐恩生物科技公司提供,DMEM-F12培養(yǎng)基、胎牛血清、0.25%胰酶、嘌呤酶素購(gòu)于HyClone;DMSO購(gòu)于Merk;96孔板購(gòu)于BIOFIL;Annexin V-FTIC/PI雙染細(xì)胞周期凋亡檢測(cè)試劑盒購(gòu)于南京凱基生物公司;流式細(xì)胞儀購(gòu)于Becton-Dick;BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒(增強(qiáng)型)、BeyoECL Puls(超敏ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒)購(gòu)于Sigma,0.45 μm PDVF膜購(gòu)于Millipore公司;CCK-8細(xì)胞增殖毒性檢測(cè)試劑盒購(gòu)于DOJINDO研究所,染色質(zhì)共沉淀試劑盒購(gòu)于Cell Signaling Technology;PCR儀器購(gòu)于美國(guó)Bio-Rad公司,倒置熒光顯微鏡購(gòu)于日本Olympus 公司;小鼠抗人β-actin購(gòu)于北京中杉金橋,兔抗人Gsk-3β、β-catenin、MMP3、TCF購(gòu)于Cell Signaling Technology;兔抗人Bax、BCL2、CyclinD1購(gòu)于北京鼎國(guó)生物技術(shù)有限公司;

        1.2方法

        1.2.1細(xì)胞培養(yǎng)HepG2細(xì)胞以1×105個(gè)/ml 接種于含10%血清的DMEM-F12 培養(yǎng)液中,在37℃、5%CO2、飽和濕度下常規(guī)培養(yǎng),48~72 h傳代一次。

        1.2.2HepG2細(xì)胞的感染及篩選用CCK8篩選嘌呤霉素工作濃度為0.5 μg/μl。取兩個(gè)一次性無(wú)菌瓶,分別接種2×105ml-1細(xì)胞。37 ℃恒溫培養(yǎng)24 h,棄去培養(yǎng)基,其中一瓶中加入β-catenin慢病毒顆粒50 μl及4 mg/ml Polybrene 1 μl,另一瓶繼續(xù)原條件培養(yǎng)。感染24 h后,用倒置熒光顯微鏡觀察感染效果,HepG2-β-catenin感染細(xì)胞呈綠色熒光,棄去培養(yǎng)基,加入含有0.5 μg/μl嘌呤霉素的DMEM-F12 培養(yǎng)液進(jìn)行篩選,獲得穩(wěn)定感染的HepG2-β-catenin細(xì)胞。HepG2-β-catenin細(xì)胞接種在含0.5 μg/ml嘌呤霉素的DMEM-F12培養(yǎng)基中,在37℃、5%CO2、飽和濕度下常規(guī)培養(yǎng),48~72 h傳代一次。

        1.2.3CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞增殖分別取生長(zhǎng)良好的HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞以1 ×104每孔的密度接種于96孔板中,分成對(duì)照組和藥物組。藥物組加入不同濃度(10~160 μmol/L)人參皂苷Rh2,對(duì)照組加入含0.1% DMSO的DMEM-F12完全培養(yǎng)液,每孔200 μl,每藥物濃度組設(shè)6個(gè)復(fù)孔。分別培養(yǎng)24、48、72 h后,每孔加入20 μl CCK-8液體,37℃恒溫孵育3 h,用酶標(biāo)儀測(cè)光吸收度值,以對(duì)照組作為100%,計(jì)算各組抑制率,抑制率(IR%)=[1-藥物組(A)]/對(duì)照組(A)×100%,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

        1.2.4流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞周期分別取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞接種于培養(yǎng)基中,分為對(duì)照組與藥物組及抑制劑組,藥物組加入人參皂苷Rh2(100 μmol/L),抑制劑組加入人參皂苷Rh2(100 μmol/L)+ Bio(10 μmol/L),以每孔3 ml的培養(yǎng)體系接種于6孔板,每組平行接種3個(gè)復(fù)孔,培養(yǎng)48 h后,收集細(xì)胞,用PBS液洗滌2次后,700 ml/L冰乙醇固定,4℃保存。流式細(xì)胞儀檢測(cè),經(jīng)計(jì)算機(jī)處理分析得出細(xì)胞周期各時(shí)相比例。

        1.2.5流式細(xì)胞技術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡率分別取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的HepG2和 HepG2-β-catenin細(xì)胞接種于培養(yǎng)基中,分為對(duì)照組與藥物組及抑制劑組,藥物組加入人參皂苷Rh2(100 μmol/L),抑制劑組加入人參皂苷Rh2(100 μmol/L)+Bio(10 μmol/L),以每孔3 ml的培養(yǎng)體系接種于6孔板,每組平行接種3個(gè)復(fù)孔,培養(yǎng)48 h后,收集細(xì)胞,用流式細(xì)胞儀檢測(cè),計(jì)算機(jī)處理分析結(jié)果。

        1.2.6ELISA法檢測(cè)細(xì)胞Gsk-3β活性將取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的HepG2、HepG2-β-catenin細(xì)胞接種于培養(yǎng)基中,分為對(duì)照組與藥物組及抑制劑組,藥物組加入人參皂苷Rh2(100 μmol/L),抑制劑組加入人參皂苷Rh2(100 μmol/L)+Bio(10 μmol/L),作用48 h,收集各組細(xì)胞并提取蛋白,提取步驟依照說(shuō)明書操作。在96孔酶標(biāo)板上,空白孔中加入樣品稀釋液100 μl,余孔分別加入標(biāo)準(zhǔn)品或待測(cè)樣品100 μl,把樣品加于酶標(biāo)板孔底部,輕輕振蕩,混勻,用覆膜蓋上酶標(biāo)板,放入37℃恒溫箱中120 min。移去液體,用力甩干。取100 μl生物素標(biāo)記抗體工作液加入上述各孔,放入37℃恒溫箱中60 min。用力甩去孔內(nèi)液體,每孔加入PBS 溶液350 μl,浸泡2 min,洗3次,用力甩干,每孔加入100 μl辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記親和素工作液,放入37℃恒溫箱中60 min后,去除孔內(nèi)液體,用力甩干,每孔加入PBS 溶液350 μl,浸泡2 min,洗5次,用力甩干。依次每孔加入90 μl底物溶液,在37℃條件下,避光顯色30 min,每孔加入50 μl終止溶液,終止反應(yīng),測(cè)量各孔的光密度(OD值)。

        1.2.7PCR法測(cè)HepG2、 HepG2-β-catenin細(xì)胞中Gsk-3β、β-catenin、Bcl2、CyclinD1、Bax、MMP3基因的表達(dá)實(shí)驗(yàn)分為6組:HepG2-β-catenin、HepG2-β-catenin+Rh2、HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio、HepG2、Rh2、Rh2+Bio。收集各處理組細(xì)胞,提取總的RNA,逆轉(zhuǎn)錄成功后進(jìn)行定量分析。β-actin:Forward:5′-CATCAAGAAGGTGGTGAAGCA-3′;Reverse:5′-CGTCAAAGGTGGAGGAGTGG-3′。β-catenin:Forwa-rd:5′-CGCCAGGGCGCCAGGGTTTTCCCAGTCAC-GAC-3′;Reverse-5′-TAATACGACTCACTAGAGGG-3′。 Gsk-3β:Forward:5′-GGATTCGTCAGGAACAGGACA-3′;Reverse:5′-TTAGCATCTGACGCTGCTGT-3′。 Bcl2:Forward:5′-GGTGAACTGGGGGAGGATTG-3′;Rev erse:5′-GGCAGGCATGTTGACTTCAC-3′。 CyclinD1:Forward:5′-CATGGAGAGACAGACAGAGCA-3′;Re verse:5′-TATCCACGGGGCTGTTCCTA-3′。 Bax:Forw ard:5′-TTCATCCAGGATCGAGCAGG-3′;Reverse:5′-CTTGGTGGACGCATCCTGAG-3′。 MMP3:Forward:5′-TAATGGAGATGCCCACTTTGATG-3′;Reverse:5′-GAGTGAAAGAGACCCAGGGAGTG-3′。

        1.2.8CHIP-PCR法檢測(cè)HepG2、 HepG2-β-catenin細(xì)胞中Bcl2、CyclinD1、Bax、MMP3基因的表達(dá)實(shí)驗(yàn)分為6組:HepG2-β-catenin、HepG2-β-catenin+ Rh2、HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio、HepG2、Rh2、Rh2+Bio。在含有9ml培養(yǎng)基的各組細(xì)胞培養(yǎng)瓶中(75 cm2)分別加入243 μl 37%甲醛,使甲醛終濃度為1%,放入37℃恒溫箱中孵育10 min。終止交聯(lián):在細(xì)胞培養(yǎng)瓶中加入450 μl 2.5 mol/L甘氨酸,調(diào)整甘氨酸至終濃度為0.125 mol/L,輕輕搖晃,室溫放置5 min。倒掉培養(yǎng)基,用預(yù)冷的PBS洗細(xì)胞2次,用力使用細(xì)胞刮刀刮瓶底,并加入8 ml PBS,用移液管移入15 ml離心管中,2 000 r/min 5 min,離心,收集細(xì)胞。棄去上清,根據(jù)細(xì)胞數(shù)量,加入 400 μl SDS Lysis Buffer。調(diào)整細(xì)胞終濃度為每100 μl含1×106個(gè)細(xì)胞,再加入蛋白酶抑制劑復(fù)合物。超聲破碎:VCX750,25%功率,4.5 s沖擊,10 s間隙,共12次。除雜及抗體哺育:超聲破碎結(jié)束后,1 000 r/min 4℃離心,10 min,去除不溶物質(zhì)。取3個(gè)EP管,分別加入100 μl上清液,實(shí)驗(yàn)組加入抗體,對(duì)照組不加抗體,電泳組則加入4 μl 5 mol/L NaCl,65℃恒溫箱中孵育3 h解交聯(lián),在SDS凝膠上電泳,檢驗(yàn)超聲破碎的效果。在實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組中分別加入900 μl CHIP Dilution Buffer和20 μl 50×PIC。再次加入60 μl Protein A Agarose/Salmon Sperm DNA。4℃,慢速顛轉(zhuǎn)1 h。4℃,靜置10 min,700 r/min離心1 min,取上清。各留取20 μl作為input。實(shí)驗(yàn)組加入1 μl 抗體,對(duì)照組則不加抗體,在4℃條件下顛轉(zhuǎn)過(guò)夜。洗沉淀復(fù)合物和解交聯(lián):免疫復(fù)合物的沉淀及清洗,孵育過(guò)夜后,每管加入60 μl Protein A Agarose/Salmon Sperm DNA。在4℃條件下顛轉(zhuǎn)2 h。4℃,靜置10 min后,700 r/min離心1 min。除去上清。依次用下列溶液(①low salt wash buffer--one wash,②high salt wash buffer--one wash,③LiCl wash buffer--one wash,④TE buffer--two wash )清洗沉淀復(fù)合物。加入溶液,4℃,顛轉(zhuǎn)10 min,4℃,靜置10 min,700 r/min離心1 min,棄去上清。清洗完畢后,每管加入洗脫液(10%SDS,1 mol/L NaHCO3, ddH2O)250 μl,室溫下顛轉(zhuǎn)15 min,靜置離心,收集上清。重復(fù)洗滌一次。每管洗脫液為500 μl。解交聯(lián):每管中加入20 μl 5 mol/L NaCl(NaCl終濃度為0.2 mol/L)。吹打混勻,65℃解交聯(lián)過(guò)夜。DNA樣品的回收:解交聯(lián)結(jié)束后,實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組加入1 μl RNaseA(MBI),37℃恒溫孵育1 h。 實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組加入10 μl 0.5 mol/L EDTA, 20 μl 1 mol/L Tris.HCl(pH6.5),2 μl 10 mg/ml蛋白酶K,45℃處理2 h。采用omega膠回收試劑盒回收DNA片段,加入100 μl ddH2O離心,收集樣品。PCR分析:操作步驟詳見(jiàn)上述PCR的操作。

        1.2.9Western blot法檢測(cè)HepG2、HepG2-β-catenin細(xì)胞Gsk-3β、β-catenin、Bcl2、CyclinD1、Bax、MMP3蛋白的表達(dá)將取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的HepG2、HepG2-β-catenin細(xì)胞接種于培養(yǎng)基,分為對(duì)照組與藥物組及抑制劑組,對(duì)照組常規(guī)培養(yǎng),藥物組加入人參皂苷Rh2(100 μmol/L),抑制劑組人參皂苷Rh2(100 μmol/L)+Bio(10 μmol/L),孵育48 h,收集各組細(xì)胞,提取蛋白。提取步驟按照說(shuō)明書進(jìn)行操作。測(cè)蛋白濃度,并使蛋白變性。配制膠體,電泳,電轉(zhuǎn),結(jié)束后,將膜取出并放在5%牛奶封閉液中室溫封閉1.5 h;4℃下與兔抗人抗體Gsk-3β(1∶1 000)、β-catenin(1∶1 000)、Bcl2(1∶1 000)、CyclinD1、Bax(1∶1 000)、MMP3(1∶500),鼠抗人β-actin(1∶1 000)孵育過(guò)夜;用TBST溶液漂洗后分別加入辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記山羊抗兔IgG和山羊抗小鼠IgG(1∶1 000),常溫孵育1.5 h,再次用TBST漂洗,加入顯色劑ECL試劑顯色去曝光。

        1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)分析采用SPSS 17.0軟件對(duì)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)處理,數(shù)據(jù)以±s表示。多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD檢驗(yàn)。P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2結(jié)果

        2.1獲得HepG2-β-catenin細(xì)胞用pLOV-EF1a-MCS-3FLAG-β-catenin慢病毒感染HepG2細(xì)胞,感染成功的HepG2細(xì)胞命名為HepG2-β-catenin,通過(guò)熒光顯微鏡觀察,細(xì)胞中可見(jiàn)大量綠色熒光;而HepG2細(xì)胞中無(wú)熒光(圖1)。用流式細(xì)胞儀檢測(cè)結(jié)果顯示,感染第2天細(xì)胞的感染率為94.08%,第3天感染率為99.49%(圖2)。用PCR檢測(cè)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞β-catenin基因的表達(dá),與HepG2組相比,隨著感染后時(shí)間延長(zhǎng),HepG2-β-catenin細(xì)胞β-catenin基因表達(dá)明顯高于HepG2組,與HepG2組比較差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)(圖3)。

        2.2Rh2對(duì)HepG2 和HepG2-β-catenin細(xì)胞增殖的抑制作用采用CCK-8法檢測(cè)結(jié)果顯示,對(duì)照組細(xì)胞體外生長(zhǎng)活躍,經(jīng)Rh2(10~160 μmol/L)處理,HepG2細(xì)胞增殖受到抑制,計(jì)算48、72 h 半數(shù)抑制率分別為100 μmol/L、58.12 μmol/L,與對(duì)照組比較差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),且Rh2對(duì)肝癌HepG2細(xì)胞的生長(zhǎng)抑制作用呈劑量和時(shí)間依賴。同時(shí),我們也檢測(cè)了Rh2對(duì)HepG2-β-catenin細(xì)胞增殖的影響,經(jīng)Rh2作用48、72 h,對(duì)HepG2-β-catenin細(xì)胞的48、72 h 半數(shù)抑制率分別是129.2 μmol/L,83.33 μmol/L,Rh2作用于HepG2-β-catenin細(xì)胞的濃度均高于HepG2細(xì)胞,與HepG2組比較差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見(jiàn)圖4、5。

        圖1 熒光顯微鏡觀察HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞β-catenin基因轉(zhuǎn)染狀況Fig.1 HepG2 and HepG2-β-catenin were observed by fluorescence microscopyNote: A0.HepG2-β-catenin;B0.HepG2.

        圖2 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)HepG2細(xì)胞感染率Fig.2 Rate of infection was analyzed by flow cytometryNote: B0.HepG2 cells;A0+2 day.HepG2-β-catenin cells+2 day;A0+3 day.HepG2-β-catenin +3 day.

        圖3 用PCR方法檢測(cè)細(xì)胞β-catenin的表達(dá)Fig.3 Expression of β-catenin gene in HepG2 and HepG2-β-catenin were measured by qRT-PCRNote: B0.HepG2 cells;A0+2 day.HepG2-β-catenin cells+2 day;A0+3 day.HepG2-β-catenin +3 day.*.P<0.01.

        圖4 Rh2對(duì)HepG2細(xì)胞的增殖抑制作用Fig.4 Inhibitory effect of Rh2 on HepG2 cellsNote: HepG2 cells were incubated with Rh2 for 24,48,72 h and then assessed by the CKK assay.

        圖5 Rh2對(duì)HepG2-β-catenin細(xì)胞的增殖抑制作用Fig.5 Inhibitory effect of Rh2 on HepG2 cellsNote: HepG2-β-catenin cells were incubated with Rh2 for 24,48,72 h and then assessed by the CKK assay.

        圖6 Rh2對(duì)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞周期的影響Fig.6 Effect of Rh2 on HepG2 and HepG2-β-catenin cells cycleNote: HepG2-β-catenin and HepG2 cells was induced for 24 h with Rh2 or Rh2+Bio.Cell cycle distribution was analyzed by flow cytometry;A0.HepG2-β-catenin;A1.HepG2-β-catenin+ Rh2 A2;HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio;B0.HepG2;B1.HepG2+ Rh2;B2.HepG2+ Rh2+Bio.

        2.3Rh2對(duì)HepG2 和HepG2-β-catenin細(xì)胞周期的影響Rh2誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞周期阻滯在G0/G1期;HepG2組G0/G1期(61.02±1.48)%,HepG2+Rh2組(64.57±0.65)%,HepG2-β-catenin組(52.86±1.46)%,HepG2-β-catenin+Rh2組(58.61±2.01)%。與HepG2組相比,HepG2-β-catenin組細(xì)胞的G0/G1期(52.86+1.46)%明顯低于HepG2組(61.02+1.48)%,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見(jiàn)表1、圖6。

        表1 100 μmol/L Rh2對(duì)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞周期的影響(±s,n=3)Tab.1 Effect of Rh2 cell cycle of HepG2 and HepG2-β-catenin cells(±s,n=3)

        表1 100 μmol/L Rh2對(duì)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞周期的影響(±s,n=3)Tab.1 Effect of Rh2 cell cycle of HepG2 and HepG2-β-catenin cells(±s,n=3)

        GroupG0/G1G2/MSHepG2-β-catenin52.86±1.469.10±0.97638.03±1.84HepG2-β-catenin+Rh258.61±2.011)10.54±0.4731)30.85±2.081)HepG2-β-catenin+Rh2+Bio54.43±1.551)12.96±3.031)32.60±2.291)HepG261.02±1.482)8.12±1.0230.84±2.512)HepG2+Rh264.57±0.653)4)10.74±0.793)29.12±2.153)HepG2+Rh2+Bio60.13±3.19▽10.73±1.073)29.12±2.153)

        Note:1)P<0.01 HepG2-β-catenin+ Rh2,HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio vs HepG2-β-catenin group;2)P<0.01 HepG2 vs HepG2-β-catenin;3)P<0.01HepG2+ Rh2,HepG2+ Rh2+Bio vs HepG2;4)P<0.01 HepG2+ Rh2 vs HepG2-β-catenin+ Rh2.

        2.4Rh2對(duì)HepG2 和HepG2-β-catenin細(xì)胞的早期凋亡作用Rh2誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞早期凋亡。HepG2組細(xì)胞凋亡率(10.01±2.02)%,HepG2+Rh2組細(xì)胞凋亡率(17.27±2.77)%,HepG2-β-catenin組細(xì)胞凋亡率(5.26±0.50)%,HepG2-β-catenin+ Rh2組細(xì)胞凋亡率(9.02±1.76)%,HepG2-β-catenin+Rh2組細(xì)胞凋亡率低于HepG2+Rh2組細(xì)胞,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見(jiàn)表2、圖7。

        2.5Rh2可激活細(xì)胞Gsk-3β的活性Rh2誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞12、24、48、72 h后,Gsk-3β活性逐漸升高,在48 h最高,隨后其活性降低。與對(duì)照組相比,Rh2誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞48 h,Gsk-3β的活性均增高,而加入Bio后其活性降低。與Rh2組相比,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),而HepG2+ Rh2和HepG2-β-catenin+ Rh2組之間無(wú)差異,見(jiàn)圖8、9。

        表2 Rh2對(duì)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞早期凋亡的影響(±s,n=3)Tab.2 Effect of Rh2 on cell apoptosis of HepG2 and HepG2-β-catenin cells(±s,n=3)

        表2 Rh2對(duì)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞早期凋亡的影響(±s,n=3)Tab.2 Effect of Rh2 on cell apoptosis of HepG2 and HepG2-β-catenin cells(±s,n=3)

        GroupsApoptosisrate(%)HepG2-β-catenin5.26±0.50HepG2-β-catenin+Rh29.02±1.761)HepG2-β-catenin+Rh2+Bio7.02±1.211)HepG210.01±2.022)HepG2+Rh217.27±2.773)4)HepG2+Rh2+Bio12.12±0.1753)

        Note:1)P<0.01 HepG2-β-catenin+ Rh2,HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio vs HepG2-β-catenin group;2)P<0.01 HepG2 vs HepG2-β-catenin;3)P<0.01 HepG2+ Rh2,HepG2+ Rh2+Bio vs HepG2;4)P<0.01 HepG2+ Rh2 vs HepG2-β-catenin+ Rh2.

        圖7 Rh2 對(duì)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞凋亡的影響Fig.7 Effect of Rh2 on HepG2 and HepG2-β-catenin cells apoptosisNote: HepG2-β-catenin and HepG2 cells was induced for 24 h with Rh2 or Rh2+Bio.Cell cycle distribution was analyzed by Annexin V-FTIC/PI.C0.HepG2-β-catenin;C1.HepG2-β-catenin+ Rh2;C2.HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio;D0.HepG2;D1: HepG2+ Rh2;D2.HepG2+ Rh2+Bio.

        2.6Rh2對(duì)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞Gsk-3β、Bax、β-catenin、CyclinD1、Bcl2、MMP3基因表達(dá)的影響Rh2誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞后,Gsk-3β、Bax基因的表達(dá)增加,而β-catenin、CyclinD1、Bcl2、MMP3基因表達(dá)下調(diào)。與HepG2-β-catenin+Rh2組相比,HepG2+Rh2組中Bax基因表達(dá)增加更為顯著;而β-catenin、Bcl2、CyclinD1、MMP3基因表則降低明顯,且差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見(jiàn)圖10。

        2.7Rh2對(duì)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞Bax、CyclinD1、Bcl2、MMP3基因表達(dá)的影響Rh2與HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞共培養(yǎng)后,超聲破碎細(xì)胞,提出DNA,電泳驗(yàn)證,其分子量在100~500 bp,TCF4抗體結(jié)合DNA后用半定量PCR檢測(cè)。HepG2+Rh2組和HepG2-β-catenin+Rh2組細(xì)胞中Bax基因表達(dá)增加,而CyclinD1、Bcl2、MMP3基因表達(dá)下調(diào);與HepG2-β-catenin+Rh2相比,HepG+Rh2組中Bax基因表達(dá)增加更明顯;而Bcl2、CyclinD1、MMP3基因表達(dá)降低更為明顯,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見(jiàn)圖11、12。

        圖8 ELISA檢測(cè)HepG2細(xì)胞中Gsk-3β的活性Fig.8 Activity of Gsk-3β was checked by ELISA kitNote: In treat group,the activity of GSK-3β increased with time-depend manner.*.P<0.01.

        圖9 ELISA檢測(cè)HepG2-β-catenin 和HepG2細(xì)胞中Gsk-3β的活性Fig.9 Activity of Gsk-3β in HepG2-β-catenin and HepG2 was checked by ELISA kitNote: A0.HepG2-β-catenin;A1.HepG2-β-catenin+ Rh2;A2.HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio;B0.HepG2;B1. HepG2+Rh2;B2.HepG2+ Rh2+Bio.*.P<0.01 HepG2-β-catenin+Rh2,HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio vs HepG2-β-catenin group;#.P<0.01,HepG2+ Rh2,HepG2+ Rh2+Bio vs HepG2.

        2.8Rh2對(duì)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞Gsk-3β、Bax、β-catenin、CyclinD1、Bcl2、MMP3蛋白表達(dá)的影響Rh2誘導(dǎo)后,HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞Gsk-3β、Bax蛋白表達(dá)增加,而β-catenin、CyclinD1、Bcl2、MMP3蛋白表達(dá)下調(diào)。與HepG2-β-catenin+Rh2組相比, HepG+Rh2組細(xì)胞中Bax蛋白表達(dá)量大于HepG2-β-catenin +Rh2組;而β-catenin、Bcl2、CyclinD1、MMP3蛋白表達(dá)低于HepG2-β-catenin+Rh2組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見(jiàn)圖13。

        圖10 PCR檢測(cè)HepG2-β-catenin 和HepG2細(xì)胞中Gsk-3β、β-catenin Bax、Bcl2、CyclinD1、MMP3基因的表達(dá)Fig.10 Expression of Gsk-3β,β-catenin,Bax,Bcl2,CyclinD1,MMP3 genes were measured by qRT-PCRNote: A0.HepG2-β-catenin;A1.HepG2-β-catenin+ Rh2;A2.HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio;B0.HepG2;B1.HepG2+ Rh2;B2.HepG2+Rh2+Bio.*.P<0.01 HepG2-β-catenin+ Rh2,HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio vs HepG2-β-catenin group;△.P<0.01 HepG2 vs HepG2-β-catenin;▽.P<0.01HepG2+ Rh2,HepG2+ Rh2+Bio vs HepG2;#.P<0.01 HepG2+ Rh2 vs HepG2-β-catenin+ Rh2.

        圖11 電泳檢查超聲破碎的DNAFig.11 DNA electrophoresis figureNote: A0.HepG2-β-catenin;A1.HepG2-β-catenin+ Rh2;A2.HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio;B0.HepG2;B1.HepG2+ Rh2;B2.HepG2+ Rh2+Bio.

        3討論

        人參作為傳統(tǒng)中草藥廣泛應(yīng)用于中醫(yī)治療中,近年來(lái)其有效成分用于各種腫瘤的預(yù)防與治療[9,13]。大量研究表明,人參皂甙Rh2可顯著影響并誘導(dǎo)胰腺癌細(xì)胞、肝癌細(xì)胞和A549肺癌細(xì)胞凋亡[12,20-22]。我們的實(shí)驗(yàn)研究也發(fā)現(xiàn),人參皂甙Rh2可抑制HepG2肝癌細(xì)胞增殖,且呈濃度和時(shí)間依賴性。48、72 h的Rh2 IC50 分別為100 μmol/L,58.12 μmol/L。我們實(shí)驗(yàn)室研究發(fā)現(xiàn),TSPG可抑制KG1α細(xì)胞增殖并誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,該作用機(jī)制可能與其抑制β-catenin蛋白及mRNA表達(dá)水平有關(guān)。臨床研究表明,細(xì)胞過(guò)表達(dá)β-catenin對(duì)化療或放療有抵制作用,且預(yù)后差[18]。我們用過(guò)表達(dá)β-catenin的慢病毒感染HepG2肝癌細(xì)胞,獲取HepG2-β-catenin細(xì)胞,檢測(cè)結(jié)果發(fā)現(xiàn),Rh2對(duì)HepG2-β-catenin細(xì)胞的增殖抑制也呈濃度和時(shí)間依賴性,但所需Rh2的濃度明顯高于HepG2細(xì)胞,作用48、72 h的 Rh2 IC50分別是129.2 μmol/L、83.33 μmol/L。其結(jié)果顯示,過(guò)表達(dá)β-catenin會(huì)削弱Rh2對(duì)HepG2肝癌細(xì)胞的藥理作用。

        圖12 用半定量PCR檢測(cè)Bax、Bcl2、CyclinD1、MMP3基因的表達(dá)Fig.12 Expression of Bax,Bcl2,CyclinD1,MMP3 genes were measured by PCRNote: A0.HepG2-β-catenin;A1.HepG2-β-catenin+ Rh2;A2.HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio.B0.HepG2;B1.HepG2+ Rh2;B2.HepG2+ Rh2+Bio.

        圖13 Western blot檢測(cè)HepG2-β-catenin 和HepG2細(xì)胞中Gsk-3β、β-catenin Bax、Bcl2、CyclinD1、MMP3蛋白的表達(dá)Fig.13 Expression of Gsk-3β,β-catenin,Bax,Bcl2,CyclinD1,MMP3 protein were measured by Western blotNote: A0.HepG2-β-catenin;A1.HepG2-β-catenin+ Rh2;A2.HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio;B0.HepG2;B1.HepG2+ Rh2;B2.HepG2+ Rh2+Bio.*.P<0.01 HepG2-β-catenin+ Rh2,HepG2-β-catenin+ Rh2+Bio vs HepG2-β-catenin group;△.P<0.01 HepG2 vs HepG2-β-catenin;▽.P<0.01 HepG2+ Rh2,HepG2+ Rh2+Bio vs HepG2;#.P<0.01 HepG2+ Rh2 vs HepG2-β-catenin+ Rh2.

        先前的研究結(jié)果顯示,Wnt/β-catenin信號(hào)通路持續(xù)激活可促進(jìn)結(jié)腸、胰腺組織腫瘤細(xì)胞的增殖和腫瘤的形成[14,23]。為了探索Rh2及過(guò)表達(dá)β-catenin對(duì)HepG2肝癌細(xì)胞周期和凋亡的影響,我們采用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)顯示,與HepG2組細(xì)胞相比,HepG2-β-catenin組細(xì)胞G0/G1期細(xì)胞比例(52.86±1.46)%明顯低于HepG2組(61.02±1.48)%,說(shuō)明過(guò)表達(dá)β-catenin可對(duì)細(xì)胞周期產(chǎn)生影響,G0/G1期細(xì)胞比例的減少,可加速細(xì)胞的增殖。結(jié)果提示,Rh2對(duì)HepG2和HepG2-β-catenin的抗癌作用是使細(xì)胞周期阻滯于G0/G1期。同時(shí),Rh2作用HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞后,CyclinD1基因和蛋白表達(dá)水平均降低。CyclinD1作為腫瘤惡性增殖關(guān)鍵因子,其表達(dá)水平下調(diào)可使腫瘤細(xì)胞增殖失控得到抑制。HepG2+Rh2組細(xì)胞中CyclinD1基因和蛋白表達(dá)水平明顯低于HepG2-β-catenin+Rh2組,說(shuō)明過(guò)表達(dá)β-catenin可削弱Rh2下調(diào)CyclinD1基因和蛋白表達(dá)的作用。流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示,Rh2作用后,HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞凋亡率均增高,但HepG2-β-catenin+Rh2組細(xì)胞凋亡率低于HepG2+Rh2組。上述實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,過(guò)表達(dá)β-catenins可削弱Rh2對(duì)HepG2肝癌細(xì)胞生存抑制作用和降低凋亡率。

        GSK-3β的異常磷酸化及失活參與肝癌的形成。本文用酶免疫吸附試驗(yàn)檢測(cè)結(jié)果顯示,Rh2均能以時(shí)間與濃度依賴方式激活HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞GSK-3β活性,且兩組之間無(wú)明顯差異。又采用GSK-3β抑制劑Bio拮抗Rh2的作用,來(lái)驗(yàn)證Rh2是否激活了GSK-3β。在HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞同時(shí)加入Rh2和Bio后,GSK-3β活性均有所降低,但仍然明顯高于HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞組,這證明Rh2可以激活GSK-3β,且此過(guò)程可以被Bio所拮抗。用PCR和Western blot法檢測(cè)了Rh2誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞48 h后,GSK-3β基因和蛋白表達(dá)水平均增高,且兩種細(xì)胞之間無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。以上結(jié)果說(shuō)明,Rh2既激活GSK-3β的活性又能夠使其表達(dá)增強(qiáng)。

        β-catenin在正常組織及癌組織中作為一個(gè)重要的分子,它的穩(wěn)定性依賴于由Axin、APC 和 GSK-3β構(gòu)成的降解復(fù)合物,主要由GSK-3β去調(diào)節(jié)β-catenin在細(xì)胞內(nèi)的表達(dá)水平。Rh2誘導(dǎo)HepG2和HepG2-β-catenin細(xì)胞48 h后,GSK-3β活性增加。用PCR和Western blot檢測(cè)結(jié)果表明,與HepG2組細(xì)胞相比,HepG2+ Rh2組細(xì)胞中β-catenin基因和蛋白表達(dá)水平明顯下降。同時(shí)檢驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),與HepG2-β-catenin組相比,HepG2-β-catenin+ Rh2組中β-catenin基因和蛋白水平有所下降,但下降幅度沒(méi)有HepG2+ Rh2組明顯。該結(jié)果表明,過(guò)表達(dá)β-catenin能削弱Rh2對(duì)β-catenin的降解作用,進(jìn)一步證實(shí)Rh2降解β-catenin是通過(guò)激活GSK-3β的活性。

        在無(wú)Wnt刺激下,GSK-3β作用于Axin、APC和β-catenin蛋白組成的復(fù)合物并磷酸化β-catenin,被磷酸化的β-catenin可以蛋白酶體的方式迅速降解[15];在Wnt的刺激下,GSK-3β向細(xì)胞膜轉(zhuǎn)移并與Dishevelled和LRP-5受體結(jié)合,從而阻止GSK3β對(duì)β-catenin的磷酸化,其結(jié)果是β-catenin逃脫了蛋白酶體的降解,因此在胞漿累積并向胞核移位。本文采用PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,與HepG2組細(xì)胞相比,HepG2+ Rh2組中CyclinD1、Bcl2、MMP3表達(dá)減少,而Bax增加。前面的實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,Rh2誘導(dǎo)HepG2后β-catenin表達(dá)量明顯下降,為了進(jìn)一步探討β-catenin進(jìn)入細(xì)胞核數(shù)量減少對(duì)下游基因的影響,我們采用染色質(zhì)免疫共沉淀的方法檢測(cè)下游基因[24]。結(jié)果顯示,Rh2誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞48 h后,在HepG2+ Rh2中CyclinD1、Bcl2、MMP3表達(dá)減少,而Bax表達(dá)增加,Western blot檢測(cè)結(jié)果與染色質(zhì)免疫共沉淀結(jié)果一致。同時(shí)檢測(cè)結(jié)果顯示,HepG2-β-catenin+Rh2組細(xì)胞中Bax基因和蛋白表達(dá)增加程度與Bcl2、CyclinD1、MMP3基因和蛋白表達(dá)減少程度均明顯弱于HepG2+Rh2組。該結(jié)果表明,Rh2可通過(guò)激活GSK-3β活性降解β-catenin,使進(jìn)入細(xì)胞核內(nèi)的β-catenin減少,進(jìn)而抑制周期、增殖及遷移相關(guān)蛋白的表達(dá),促進(jìn)凋亡相關(guān)蛋白的表達(dá),最終抑制HepG2細(xì)胞增殖,促進(jìn)其凋亡;而過(guò)表達(dá)β-catenin能削弱Rh2對(duì)HepG2細(xì)胞的促凋亡作用。

        Rh2抗腫瘤的作用顯著,但它能否抑制腫瘤的轉(zhuǎn)移尚未被證實(shí)。β-catenin是黏附分子,有關(guān)β-catenin在腫瘤細(xì)胞轉(zhuǎn)移中的作用報(bào)道很少。Miyazawa等[26]人發(fā)現(xiàn),在浸潤(rùn)性腫瘤組織中可以出現(xiàn) β-catenin細(xì)胞核表達(dá)。MMP3 是降解細(xì)胞外基質(zhì)的重要蛋白水解酶,主要的作用底物是Ⅳ型膠原,通過(guò)降解細(xì)胞外基質(zhì)和基底膜的主要成分Ⅳ型膠原,從而參與腫瘤的浸潤(rùn)和轉(zhuǎn)移過(guò)程。本實(shí)驗(yàn)Western blot和PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,Rh2能夠抑制HepG2細(xì)胞β-catenin和MMP3蛋白及基因的表達(dá),結(jié)果還提示Rh2可能具有抗腫瘤轉(zhuǎn)移作用。

        綜上所述,過(guò)表達(dá)β-catenin可削弱Rh2對(duì)肝癌HepG2細(xì)胞的藥理作用。Rh2通過(guò)激活Gsk-3β降解β-catenin,影響下游基因的表達(dá),促進(jìn)肝癌細(xì)胞的凋亡及抑制其轉(zhuǎn)移。

        參考文獻(xiàn):

        [1]Myzak MC,Karplus PA,Chung FL,etal.A novel mechanism of chemoprotection by sulforaphane:inhibition of histone deacetylase[J].Cancer Res,2004,64:5767-5774.

        [2]Jung HK,Lee DS,Yoon SS,etal.Systemic metastasis of hepatocellular carcinoma responsive to multidisciplinary treatment including debulking surgery[J].Ann Surg Treat Res,2014,86:100-104.

        [3]Tanase AM,Dumitrascu T,Dima S,etal.Influence of hepatitis viruses on clinicopathological profiles and long-term outcome in patients undergoing surgery for hepatocellular carcinoma[J].Hepatobiliary Pancreat Dis Int,2014,13:162-172.

        [4]Nishikawa H,Arimoto A,Wakasa T,etal.Comparison of clinical characteristics and survival after surgery in patients with non-B and non-C hepatocellular carcinoma and hepatitis virus-related hepatocellular carcinoma[J].J Cancer,2013,4:502-513.

        [5]Ker CG,Chen JS,Kuo KK,etal.Liver surgery for hepatocellular carcinoma:laparoscopic versus open approach[J].Int J Hepatol,2011,2011:596792-596799.

        [6]Lee JE,Bae SH,Choi JY,etal.Epirubicin,cisplatin,5-FU combination chemotherapy in sorafenib-refractory metastatic hepatocellular carcinoma[J].World J Gastroenterol,2014,20:235-241.

        [7]Kuroiwa-Trzmielina J,de Conti,AScolastici C,etal.Chemoprevention of rat hepatocarcinogenesis with histone deacetylase inhibitors:efficacy of tributyrin,a butyric acid prodrug[J].Int J Cancer,2009,124:2520-2527.

        [8]Osaki A,Suda T,Kamimura K,etal.A safe and effective dose of cisplatin in hepatic arterial infusion chemotherapy for hepatocellular carcinoma[J].Cancer Med,2013,2:86-98.

        [9]Chen L,Dai J,Wang Z,etal.Ginseng total saponins reverse corticosterone-induced changes in depression-like behavior and hippocampal plasticity-related proteins by interfering with GSK-3 beta-CREB signaling pathway[J].Evid Based Complement Alternat Med,2014,14:506735-506739.

        [10]Ho YL,Li KC,Chao W,etal.Korean red ginseng suppresses metastasis of human hepatoma SK-Hep1 cells by inhibiting matrix metalloproteinase-2/-9 and urokinase plas minogen activator[J].Evid Based Complement Alternat Med,2012,12:965846-965849.

        [11]Kim MJ,Yun H,Kim DH,etal.AMP-activated protein kinase deter mines apoptotic sensitivity of cancer cells to ginsenoside-Rh2[J].J Ginseng Res,2014,38:16-21.

        [12]Wang Z,Zheng Q,Liu K,etal.Ginsenoside Rh(2)enhances antitumour activity and decreases genotoxic effect of cyclophosphamide[J].Basic Clin Pharmacol Toxicol,2006,98:411-415.

        [13]Yan XJ,Gong LH,Zheng FY,etal.Triterpenoids as reversal agents for anticancer drug resistance treatment[J].Drug Discov Today,2014,19:482-488.

        [14]Thompson MD,Monga SP.WNT/beta-catenin signaling in liver health and disease[J].Hepatology,2007,45:1298-1305.

        [15]Mosimann C,Hausmann G,Basler K.Beta-catenin hits chromatin:regulation of Wnt target gene activation[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2009,10:276-286.

        [16]Barbetti V,Gozzini A,Cheloni G,etal.Time-and residue-specific differences in histone acetylation induced by VPA and SAHA in Aml1/ETO-positive leukemia cells[J].Epigenetics,2013,8:210-219.

        [17]Maurer U,Preiss F,Brauns-Schubert P,etal.GSK-3 -at the crossroads of cell death and survival[J].J Cell Sci,2014,127:1369-1378.

        [18]Tsuchiya K,Nakamura T,Okamoto R,etal.Reciprocal targeting of Hath 1 and beta-catenin by wnt glycogen synthase kinase 3 beta in human colon cancer[J].Gastroenterology,2007,132:208-220.

        [19]Gao Y,Liu Z,Zhang X,etal.Inhibition of cytoplasmic GSK-3beta increases cisplatin resistance through activation of Wnt/beta-catenin signaling in A549/DDP cells[J].Cancer Lett,2013,22:336:231-239.

        [20]Tsai KH,Hsien HH,Chen LM,etal.Rhubarb inhibits hepatocellular carcinoma cell metastasis via GSK-3-beta activation to enhance protein degradation and attenuate nuclear translocation of beta-catenin[J].Food Chem,2013,138:278-285.

        [21]Chung KS,Cho SH,Shin JS,etal.Ginsenoside Rh2 induces cell cycle arrest and differentiation in human leukemia cells by upregulating TGF-beta expression[J].Carcinogenesis,2013,34:331-340.

        [22]Christensen LP.Ginsenosides chemistry,Biosynthesis,analysis,and potential health effects[J].Adv Food Nutr Res,2009,55:1-99.

        [23]Tang XP,Tang GD,Fang CY,etal.Effects of ginsenoside Rh2 on growth and migration of pancreatic cancer cells[J].World J Gastroenterol,2013,19:1582-1592.

        [24]Lazarova DL,Bordonaro M,Carbone R,etal.Linear relationship between Wnt activity levels and apoptosis in colorectal carcinoma cells exposed to butyrate[J].Int J Cancer,2004,110:523-531.

        [25]Arce L,Pate KT,Waterman ML.Groucho binds two conserved regions of LEF-1 for HDAC-dependent repression[J].BMC Cancer,2009,9:159.

        [26]Miyazawa K,Iwaya K,Kuorda M,etal.Nuclear accumulation of beta-catenin in intestinal type gastric carcinoma:Corelation with early tumor invasion[J].Virchows Arch,2000,437:508-513.

        [收稿2015-06-06修回2015-07-20]

        (編輯倪鵬)

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