甘西鼠尾草ISSR-PCR反應(yīng)體系的建立與優(yōu)化
李文淵, 王津慧, 童 麗, 熱增才旦, 楊 芳, 索南鄧登
(青海大學(xué)醫(yī)學(xué)院藥學(xué)系,青海西寧 810001)
摘要采用單因素試驗(yàn)和4因素3水平的正交試驗(yàn)相結(jié)合的方法,建立和優(yōu)化甘西鼠尾草穩(wěn)定的ISSR-PCR反應(yīng)體系。結(jié)果表明,甘西鼠尾草20 ul ISSR-PCR體系中各因素的最佳濃度:10×Buffer(Mg2+)2 μl,dNTPs 0.4 mmol/L,Tag酶1.0 U,引物0.3 μmol/L,DNA 30 ng。
關(guān)鍵詞甘西鼠尾草;ISSR-PCR;優(yōu)化
中圖分類(lèi)號(hào)S567.23+9
基金項(xiàng)目青海省科技廳項(xiàng)目(2011-N-F19);青海大學(xué)中青年科研
作者簡(jiǎn)介李文淵(1983- ),女,青海西寧人,講師,碩士,從事中藏藥資源研究。
收稿日期2015-08-03
Establishment and Optimization ofSalviaprzewalskiiMaxim. ISSR-PCR Reaction System
LI Wen-yuan, WANG Jin-hui, TONG Li et al (Medical College of Qinghai University, Xining , Qinghai810001)
AbstractUsing the single factor test and the 4 factors and 3 level orthogonal test, the ISSR-PCR reaction system and amplification program for Salvia przewalskii Maxim were established. The study showed that the optimum concentration for each factor in 20 μl ISSR-PCR reaction system were 10×Buffer(Mg2+)2 μl, dNTPs 0.4 mmol/L, Tag enzyme 1.0 U, primer 0.3 μmol/L, DNA30ng.
Key wordsSalviaprzewalskiiMaxim; ISSR-PCR; Optimization
甘西鼠尾草(SalviaprzewalskiiMaxim.)又名高原丹參,是藏區(qū)常用的藏藥(藏文譯音:吉子恩保),因其有效成分與中藥丹參相似,功能主治亦與丹參相同,在西南、西北地區(qū)甘西鼠尾草普遍作為臨床治療心血管疾病中藥丹參的替代品種[1]。
近年來(lái)ISSR技術(shù)已應(yīng)用于植物遺傳分析的各個(gè)方面,如品種鑒定[2]、遺傳關(guān)系及遺傳多樣性分析[3-4]、遺傳連鎖圖譜的構(gòu)建[5-7]等研究。為確保ISSR分析結(jié)果的可靠性和重復(fù)性,進(jìn)行ISSR-PCR反應(yīng)體系的建立與優(yōu)化非常必要。
1材料與方法
1.1材料
1.1.1試驗(yàn)材料。甘西鼠尾草材料,采自青海省及甘肅省8個(gè)不同的居群。
1.1.2主要試劑與儀器。十六烷基三甲基溴化銨(CTAB))(國(guó)藥集團(tuán))、三羥甲基氨基甲烷(Tris)Solarbio、β-巰基乙醇(AMRESCO)、EDTA(國(guó)藥集團(tuán))、SDS(國(guó)藥集團(tuán))、溴化乙錠(EB)Sigma、瓊脂糖(GENETECH),其他試劑為國(guó)產(chǎn)分析純。Tag酶、dNTP(Mg+)、10×buffer(TaKaRa)、ISSR引物由上海生工公司合成。冷凍離心機(jī)(Eppendorf)、紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)(上海精科)、 凝膠成像系統(tǒng)(Tanon)、電泳儀( 北京市六一儀器廠)、水浴鍋( 東方電工)。
1.2方法
1.2.1基因組DNA提取。以甘西鼠尾草為材料,用改良CTAB法提取DNA。采用1.5%瓊脂糖電泳,EB染色,凝膠成像系統(tǒng)觀察并拍照,-20 ℃保存。
1.2.2ISSR反應(yīng)體系的建立與優(yōu)化。隨機(jī)抽取一樣品的DNA作為模板,ISSR-PCR擴(kuò)增體系為:在20 μl中,內(nèi)含20 ng模板DNA,1.0U Tag聚合酶,引物0.4 μmol/L,dNTPs 0.2 mmol/L,2 μl的10×Buffer(內(nèi)含Mg+)。擴(kuò)增程序:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃變性30 s,在引物退火溫度下退火45 s,72 ℃延伸90 s,35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸7 min,4 ℃保存。
為了優(yōu)化反應(yīng)體系,針對(duì)DNA、dNTPs、TagDNA酶和引物用量等,設(shè)置了一系列的濃度梯度,進(jìn)行單因素試驗(yàn)(表1),為進(jìn)一步優(yōu)化反應(yīng)體系,進(jìn)行正交試驗(yàn)L9(34)(表2)。
表1 ISSR-PCR反應(yīng)體系的因素水平
表2 ISSR-PCR正交試驗(yàn)設(shè)計(jì) L 9(3 4)
2結(jié)果與分析
2.1模板DNA用量對(duì)ISSR-PCR擴(kuò)增結(jié)果的影響由圖1可知,在20 μl反應(yīng)體系中,模板DNA濃度在10~50 ng均能擴(kuò)增出條帶,由此可知,DNA模板濃度對(duì)擴(kuò)增結(jié)果影響較小,根據(jù)條帶的模糊和缺失與否,最終選用30 ng作為適宜的模板濃度。
注:M.DL2000;1~5.模板DNA濃度分別為10、20、30、40、50 ng。 圖1 不同模板DNA濃度對(duì)ISSR-PCR的影響
2.2dNTPs用量對(duì)ISSR-PCR擴(kuò)增結(jié)果的影響由圖2可知,在20 μl反應(yīng)體系中,dNTPs濃度為0.4 mmol/L時(shí),條帶最為清晰,因此選用0.4 mmoI/L作為適宜的dNTPs濃度。
注:M.DL2000;1~5.dNTPs濃度分別為0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mmol/L。 圖2 不同dNTPs濃度對(duì)ISSR-PCR的影響
2.3引物濃度對(duì)ISSR擴(kuò)增結(jié)果的影響由圖3可知,引物濃度在0.2~0.5 μmol/L時(shí),擴(kuò)增效率高,譜帶比較全面。綜合考慮,最終選用0.4 μmol/L為適宜的引物濃度。
注:M.DL2000;1~5.引物濃度分別為0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 μmol/L。 圖3 引物濃度對(duì)1SSR-PCR的影響
2.4TagDNA聚合酶劑量對(duì)ISSR-PCR擴(kuò)增結(jié)果的影響由圖4可知,TagDNA酶用量在0.75~1.25 U時(shí)均可以得到重復(fù)清晰的條帶,且無(wú)特異性擴(kuò)增。從經(jīng)濟(jì)適用的角度考慮,確定1.0 U/20 μl為適宜TagDNA聚合酶濃度。
2.5甘西鼠尾草ISSR-PCR反應(yīng)體系正交試驗(yàn)結(jié)果由圖5可知,在9個(gè)處理中,第4號(hào)處理擴(kuò)增效果最好,譜帶強(qiáng),多態(tài)性高。因此甘西鼠尾草最佳ISSR擴(kuò)增反應(yīng)條件為:反應(yīng)體系10×Buffer 2 μl,DNA模板為30 ng,Primer為0.3 μmol/L,TagDNA聚合酶為1.0 U,dNTPs 0.4 mmol/L,無(wú)菌雙蒸水補(bǔ)足20 μl。
注:M.DL2000;1~5.TagDNA濃度分別為0.50、0.75、1.00、1.25、1.50 U。 圖4 TagDNA酶對(duì)1SSR-PCR的影響
注:M.DL2000。 圖5 正交設(shè)計(jì)1SSR-PCR反應(yīng)體系的擴(kuò)增
3討論
ISSR-PCR反應(yīng)體系的影響因素較多,該試驗(yàn)在前期進(jìn)行了大量的預(yù)試驗(yàn)工作,因此在反應(yīng)條件的摸索上較為順利,最終確定適用于甘西鼠尾草20 μl ISSR-PCR體系中各因素的最佳濃度:10×Buffer(Mg2+)2 μl,dNTPs 0.4 mmol/L,Tag酶1.0 U,引物0.3 μmol/L,DNA 30 ng。此外,在試驗(yàn)過(guò)程中發(fā)現(xiàn),對(duì)同一樣品使用不同廠家的Tag酶,PCR擴(kuò)增效果會(huì)有較明顯的區(qū)別。DNA模板的質(zhì)量也直接影響試驗(yàn)結(jié)果,在試驗(yàn)前應(yīng)充分保證DNA模板的純度。
參考文獻(xiàn)
[1] 翁裕馨,李成義.中藏藥材甘西鼠尾草的研究進(jìn)展[J].中國(guó)民族民間醫(yī)藥,2010,2(2):19.
[2] GOULAO L,OLIVEIRA C M.Molecular characterization of cultivars of apple(Malus×domestica Borkh.)using microsatellite(SSR and ISSR)markers[J].Euphytica,2001,122:81-89.
[3] 余愛(ài)麗,張木清,陳如凱.ISSR分子標(biāo)記在甘蔗及其近緣屬分類(lèi)上的應(yīng)用[J].福建農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2002,31(4):484.
[4] 祁建民,周東新,吳為人,等.用ISSR標(biāo)記檢測(cè)黃麻野生種與栽培種遺傳多樣性[J].應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2003,14(9):1473.
[5] 劉華消.ISSR標(biāo)記在水稻分子遺傳圖譜構(gòu)建和稻米蒸煮品質(zhì)QTL定位上的應(yīng)用[D].福建:福建農(nóng)林大學(xué),1998.
[6] ROUSE M L,F(xiàn)ENG D,CHENG F S,et al.Mapping the citrus genome[J].Acta-horticulturae,2000,535:25.
[7] SANKAR A A,MOORE G A.Evaluation of inter-simple sequence repeat analysis for mapping in Citrus andextension of the genetic linkage map[J].Theoretical and applied genetics,2001,102:206.