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        水貂阿留申病診斷技術(shù)的研究進展

        2015-12-18 05:12:33馬凡舒孫彥剛閆喜軍徐淑娟中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院特產(chǎn)研究所吉林長春130122
        安徽農(nóng)業(yè)科學(xué) 2015年6期
        關(guān)鍵詞:水貂抗原敏感性

        張 蕾,馬凡舒,孫彥剛,王 洋,閆喜軍,徐淑娟 (中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院特產(chǎn)研究所,吉林長春130122)

        水貂阿留申病(Aleutian disease,AD)是由細(xì)小病毒科阿留申病毒屬的水貂阿留申病毒(Aleutian disease virus,ADV)感染引起的。水貂發(fā)病的癥狀與病毒和動物的自身情況相關(guān)。不同的病毒毒株,動物的不同基因型和年齡表現(xiàn)的癥狀表現(xiàn)不同。經(jīng)典的AD癥狀在成年水貂表現(xiàn)為自身免疫綜合癥,患病水貂高r-球蛋白血癥、腎小球腎炎、動脈血管炎,水貂繁殖能力大大下降。幼貂常發(fā)生急性間質(zhì)性肺炎。ADV可以感染多種動物,如雪貂、藍(lán)狐、貉子、浣熊、灰狐、水獺等[1-5]。國外有飼養(yǎng)場工人感染ADV最終表現(xiàn)為經(jīng)典的ADV臨床癥狀并死亡的報道[6]。

        診斷是防控該病的重中之重。阿留申病患病水貂臨床表現(xiàn)為消瘦,口渴。通常依據(jù)癥狀淘汰病貂,確診則需要在實驗室進行對流免疫電泳(Counter immuno electrophoresis,CIEP)檢測。CIEP是國內(nèi)外公認(rèn)的ADV診斷方法。但是,CIEP不利于臨床的推廣和實現(xiàn)樣品的高通量檢測,近年來,國外學(xué)者報道了PCR、熒光定量PCR和ELISA等診斷方法,這些方法突破了CIEP診斷的局限。筆者對ADV的最新研究技術(shù)進行了綜述。

        1 AD抗體鑒定

        AD抗體鑒定主要分特異性試驗和非特異性試驗。非特異性試驗有碘凝集試驗、血清蛋白電泳和戊二醛試驗。這些方法常常造成假陽性結(jié)果,導(dǎo)致水貂誤殺。特異性試驗主要有間接免疫熒光、補體固定和對流免疫電泳試驗CIEP。CIEP試驗最早在20世紀(jì)70年代建立,是診斷AD的國際公認(rèn)方法,CIEP診斷抗原主要采用感染動物的臟器研磨獲得。從20世紀(jì)80年代開始,抗原的制備采用可傳代的ADV-G株感染CRFK細(xì)胞進行制備。為了提高CIEP試驗的敏感性和特異性,又陸續(xù)對CIEP試驗進行改進。添加劑CIEP及火箭CIEP等技術(shù)相繼出現(xiàn)。最敏感的是逆流線吸收免疫電泳(CCLAIE),對3 321份樣品進行檢測,結(jié)果表明CIEP與CCLAIE相比,試驗的敏感性為79%,特異性為99%,CCLAIE檢測的抗體滴度為 1∶4 096,遠(yuǎn)高于 CIEP(1∶256)[7]。

        2 PCR法

        ADV基因組全長近5 kB,編碼結(jié)構(gòu)蛋白VP1,VP2和非結(jié)構(gòu)蛋白NS1、NS2、NS3。在VP2和NS基因上存在高變區(qū),依據(jù)VP2基因高變區(qū)和NS基因高變區(qū)分別可以給水貂分為3 個型和 4 個型[8-9]。以高變區(qū)序列為基礎(chǔ),Saifuddin[6]建立了診斷ADV和FADV的限制性內(nèi)切酶診斷方法。1996年,Qie應(yīng)用PCR擴增VP2基因的高變區(qū)序列,發(fā)現(xiàn)浣熊和臭鼬感染水貂阿留申病毒[10]。2013年,張蕾等利用PCR技術(shù)首次發(fā)現(xiàn)國內(nèi)貉感染水貂阿留申病毒[11]。在診斷AD方面,Bloom[12]利用PCR鑒定了97份樣品,與CIEP診斷的結(jié)果比對發(fā)現(xiàn),對流免疫電泳診斷樣品的陽性率為97%,而PCR診斷樣品的陽性率為62%。這種差異的產(chǎn)生可能是由于病毒感染本身的特征引起的,病毒感染動物呈現(xiàn)血清學(xué)陽性,病毒學(xué)陰性。

        2011年,TrineH.Jensen[13]比對了 PCR 和 CIEP 2 種方法檢測ADV的差異。在55個已知感染ADV和8個未感染ADV的農(nóng)場,共采集299份水貂脾臟和淋巴結(jié)及血清樣品。結(jié)果表明,與CIEP相比PCR診斷的敏感性為94.7%,特異性為97.9%。PCR與CIEP診斷方法具有較高的一致性。

        3 熒光定量PCR

        2014年,Alberto Prietoa建立了ADV實時定量PCR方法,該方法有利于分析ADV的傳播途徑,從10個農(nóng)場選取了79例臨床環(huán)境樣品,樣品采集廣泛,包括飼養(yǎng)場排放的廢水、養(yǎng)殖區(qū)工作人員的腳套、衣物、飼料堆積的倉庫、動物存放的籠壁、工作人員使用的餐廳及會議區(qū)、運送飼料的交通工具、環(huán)境中土壤的表面和運輸卡車經(jīng)過的車轍等。結(jié)果表明,已確定感染的飼養(yǎng)場中93.9%的樣品呈現(xiàn)ADV陽性。研究還發(fā)現(xiàn),已發(fā)病的飼養(yǎng)場和未發(fā)病的飼養(yǎng)場存在人攜帶傳播病原體的因素。在直接接觸感染動物的器具和衣物表面的ADV的含量遠(yuǎn)大于環(huán)境中其他的樣品(衣物、鞋套和飼養(yǎng)場使用的交通工具)對ADV的傳播都有重要的作用。此外,PCR發(fā)現(xiàn)剖檢的動物器官中帶毒,但PCR檢測發(fā)現(xiàn)相應(yīng)動物糞便為陰性,說明感染的動物糞便的排毒是間斷的,即便是糞便檢測結(jié)果提示PCR結(jié)果呈陽性,也不能說明水貂呈現(xiàn)致病狀態(tài)。因此,不能通過PCR檢測動物糞便確定動物是否發(fā)生感染[14]。熒光定量PCR檢測方法的建立為評估ADV的傳播途徑提供了基礎(chǔ)信息,有利于了解病原體在環(huán)境中的分布和評估病毒感染的高危因素,為傳統(tǒng)的根除ADV計劃提供了準(zhǔn)確的臨床理論數(shù)據(jù)和資料。

        4 ELISA法

        1982年,Wright RF[15]報道了以氟碳滅活的ADV抗原開發(fā)的ELISA試劑盒,在診斷進行性的感染水貂時敏感性很高,但非進行性ADV病貂的感染性低。ELISA在檢測ADV方面不如CIEP試驗有效。

        2009年,Anna Knuuttila[16]利用昆蟲桿狀病毒系統(tǒng)在SF9細(xì)胞中表達(dá)了一ADV野毒株的VP2蛋白,并驗證以之為抗原CIEP試驗的檢測效果,結(jié)果表明與傳統(tǒng)商業(yè)抗原相比,該抗原診斷AD的敏感性和特異性為100%。利用重組蛋白為抗原,建立了ADV的ELISA診斷方法。共采集316份血清樣品,對重組蛋白進行CIEP檢測,結(jié)果表明211份樣品為ADV陰性,105份樣品ADV陽性。重組蛋白ELISA檢測結(jié)果表明,206份樣品為陰性,105份樣品為陽性。以重組蛋白為基礎(chǔ)的 ELISA法與CIEP相比,診斷ADV的敏感性為99%,特異性為97%。二者具有較好的一致性。

        2013年,Anna MariaAnder[17]分別用以美國 ADV-G 為抗原開發(fā)的ELISA試劑盒和Anna Knuuttila表達(dá)的重組蛋白建立了ELISA診斷方法,并對比了2種ELISA方法檢測ADV的差異,發(fā)現(xiàn)當(dāng)應(yīng)用CIEP陰性樣品的OD值加上3個標(biāo)準(zhǔn)方差作為cut-off值時,重組蛋白為基礎(chǔ)的ELISA與CIEP相比診斷樣品的敏感性為99.7%,特異性為98.3%。當(dāng)以說明書推薦的陰性對照為cut-off值,ADV-G株抗原為基礎(chǔ)的ELISA與CIEP試驗相比診斷的敏感性為54.3%,特異性為93.2%。采用CIEP陰性樣品的OD值加上3個標(biāo)準(zhǔn)方差作為cut-off值時,診斷的敏感性為37.6%,特異性為98.3%。因此,以商業(yè)抗原為基礎(chǔ)的ELISA試驗敏感性較低。

        2014年,Rebekka Dam-Tuxen[18]對比了以丹麥的 ADV-G為抗原建立的ELISA方法和CIEP試驗的敏感性和特異性,共采集3 810份血清樣品,ELISA試驗與CIEP試驗相比敏感性更高,特異性略低。ELISA試驗可以實現(xiàn)自動化檢測,每天可以檢測38 000份血清樣品。

        2014年,Anna MariaAnder[19]報道了芬蘭應(yīng)用全自動的ELISA方法在國內(nèi)實現(xiàn)高通量的ADV血清檢測,每年可以檢測3 000 000~4 000 000份樣品。與CIEP試驗相比,全自動ELISA方法的敏感性為96.2%,特異性為98.4%。CIEP與ELISA試驗具有很高的一致性,Kappa值為0.976,總體的一致性為98.8%。目前,丹麥也實現(xiàn)了自動化ELISA檢測ADV的服務(wù)。

        5 試紙條

        目前,美國農(nóng)場已應(yīng)用膠體金診斷試紙診斷ADV感染,但未見到有關(guān)報道。徐磊[20]利用原核表達(dá)系統(tǒng)表達(dá)ADV病毒結(jié)構(gòu)蛋白VP2的部分基因片段,并以之為基礎(chǔ)建立了診斷ADV的膠體金側(cè)向?qū)游鲈\斷方法。

        6 小結(jié)

        綜上所述,CIEP是診斷水貂阿留申病的國內(nèi)外公認(rèn)標(biāo)準(zhǔn),防控該病的主要手段是對該疾病的診斷,在水貂引種時檢測動物帶毒情況;每年結(jié)合打皮期,診斷淘汰病貂,并對環(huán)境進行消毒,這些措施雖然有效延緩了ADV的傳播進程,但ADV仍然頻繁出現(xiàn)。PCR方法的出現(xiàn)彌補了CIEP診斷方法的漏診,qPCR方法的建立有利于評估ADV感染的可能途徑,試紙條方法有利于臨床ADV快速診斷,ELISA方法實現(xiàn)了ADV的高通量自動化診斷。國內(nèi)亟需開發(fā)有自主知識產(chǎn)權(quán)的ADV診斷的新產(chǎn)品。

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