李 雷,王永杰,陳 浩,秦永剛,周煜博,趙嘉勛,郭 麗
(吉林大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院衛(wèi)生毒理學(xué)教研室,吉林 長春 130021)
燒傷是熱、電、化學(xué)和放射等造成損傷的總稱,是醫(yī)學(xué)界一直關(guān)注的研究重點。嚴重?zé)齻l(fā)多器官功能障礙綜合征的死亡率極高。嚴重?zé)齻饳C體低灌注造成全身性的缺血缺氧和代謝障礙、炎癥反應(yīng)和Ca2+穩(wěn)態(tài)失調(diào)等是造成多器官衰竭的重要機制[1-2]。海馬體是人類大腦的重要功能區(qū),與學(xué)習(xí)記憶等高級功能有密切關(guān)聯(lián),對炎癥和缺血低灌注損傷極具易感性,是介導(dǎo)應(yīng)激反應(yīng)的主要中樞結(jié)構(gòu),也是應(yīng)激作用的主要靶器官[3]。研究[4]表明:血腦屏障早在嚴重?zé)齻?h后開放,并持續(xù)數(shù)天。嚴重?zé)齻?,炎癥反應(yīng)進一步對大腦造成損害[5]。Li等[6]證實:燒傷后大腦血管內(nèi)皮、神經(jīng)元和突觸有不同程度的壞死。自噬是真核細胞的細胞器和蛋白質(zhì)分子降解的主要細胞路徑[7],機體受到應(yīng)激刺激可過度激活自噬的發(fā)生,造成細胞死亡和組織功能受損。Zhu等[8]研究發(fā)現(xiàn):利用小鼠構(gòu)建缺血缺氧模型,在腦缺血8h后大量自噬泡形成,自噬相關(guān)蛋白輕鏈3蛋白 (light chain 3 protein,LC3B)高表達。并且在神經(jīng)退行性病變中過度自噬可引起神經(jīng)細胞壞死[9]。自噬標(biāo)志物輕鏈3(light chain 3,LC3)的活性形式LC3B是自噬體膜的特異性組成成分,可指示自噬激活。Beclin 1也是常用做評價自噬激活的指示蛋白[10]。
神經(jīng)膠質(zhì)細胞是中樞神經(jīng)系統(tǒng)的主要細胞類型,具有滋養(yǎng)神經(jīng)細胞、傳遞信息的作用,在中樞神經(jīng)系統(tǒng)受到損傷時,能保護和重塑神經(jīng)元[11]。研究[12]表明:在正常情況下神經(jīng)膠質(zhì)細胞標(biāo)志物神經(jīng)膠質(zhì)纖維酸性蛋白 (glial fibrillary acidic protein,GFAP)受星形膠質(zhì)細胞的動力調(diào)節(jié),損傷后增生的GFAP陽性星形膠質(zhì)細胞能促進星形膠質(zhì)細胞的有絲分裂,使原始祖細胞分化為成熟的星形膠質(zhì)細胞,GFAP是神經(jīng)膠質(zhì)細胞反應(yīng)性增生的標(biāo)志。在中樞神經(jīng)受到刺激或損傷,神經(jīng)膠質(zhì)細胞會反應(yīng)性增生,代償保護神經(jīng)元免受應(yīng)激等帶來的損傷[13]。
目前,關(guān)于嚴重?zé)齻蠛qR損傷研究主要集中在神經(jīng)標(biāo)志物方面,對燒傷能否引起神經(jīng)細胞自噬和神經(jīng)膠質(zhì)細胞反應(yīng)未見報道。因此,本實驗通過制備嚴重?zé)齻笫竽P?,探討大鼠海馬體神經(jīng)細胞在燒傷刺激后的改變,闡明自噬和神經(jīng)膠質(zhì)細胞反應(yīng)在海馬體神經(jīng)細胞損傷中的作用。
1.1 實驗動物 健康成年雄性Wistar大鼠20只,體質(zhì)量 (200±20)g,購于吉林大學(xué)實驗動物中心,動物合格證號:SCXK-(吉)2008-0005。隨機分為正常對照組和模型組,每組10只。模型組大鼠用于制備燒傷模型。
1.2 燒傷模型的制備 根據(jù)文獻 [14]報道的方法并略有改進制備嚴重?zé)齻笫竽P?。按照Mech-Rubner公式:A (cm2)= K·W2/3[A,動物體表面積;K=9.1(大鼠);W,動物體質(zhì)量],計算動物30%總體表面積 (total body surface area,TBSA),并在大鼠背部進行標(biāo)記。大鼠燒傷前背部剃毛,8%硫化鈉脫毛,清水洗凈晾干,備皮待處理。以0.3mL·100g-1體質(zhì)量的劑量向腹腔內(nèi)注射10%水合氯醛溶液麻醉后,將大鼠背部的標(biāo)記區(qū)域浸入 (97±1)℃水中18s,造成30%TBSAⅢ度燙傷,之后立即按4mL·100g-1劑量腹腔注入生理鹽水抗休克,分籠飼養(yǎng),自由進食、飲水。
1.3 大鼠一般情況觀察 造模后1周內(nèi)觀察大鼠進食、飲水等情況。
1.4 大鼠海馬體神經(jīng)細胞病理組織學(xué)觀察 造模1周后斷頭取大鼠大腦,固定于10%甲醛固定液中。石蠟包埋,切片,HE染色和尼氏體染色,顯微鏡下觀察大鼠海馬體的病理組織學(xué)表現(xiàn)。
1.5 免疫組織化學(xué)法檢測大鼠海馬體GFAP、神經(jīng)元標(biāo)志物微管相關(guān)蛋白2(MAP-2)和LC3B、Beclin 1的表達 采用SP法:石蠟切片常規(guī)脫蠟,自來水洗3次;98℃枸櫞酸溶液抗原修復(fù)5min;室溫冷卻;內(nèi)源性過氧化物酶阻斷劑室溫孵育30min;PBS洗3次;動物非免疫血清,室溫封閉30min;加一抗 (GFAP和MAP-2,1∶300稀釋;LC3B和Beclin 1,1∶200稀釋),4℃過夜;PBS洗3次;生物素標(biāo)記二抗,室溫孵育30min;PBS洗3次;加入鏈霉素抗生物素蛋白-過氧化物酶,室溫孵育30min;PBS洗3次;DAB顯色;自來水洗2次;蘇木精復(fù)染;弱氨水返藍;過梯度酒精和二甲苯,脫水透明;中性樹脂封片。采用Image Pro Plus 6.0軟件分析 GFAP、MAP-2、LC3B和Beclin 1的表達情況,以積分光密度 (IA)值表示蛋白表達量。
1.6 統(tǒng)計學(xué)分析 采用SPSS 20.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析。各組大鼠海馬體神經(jīng)膠質(zhì)細胞中GFAP、MAP-2、LC3B和Beclin 1蛋白表達水平以表示,組間均數(shù)比較采用t檢驗。以α=0.05為檢驗水準。
2.1 大鼠的一般情況 正常對照組大鼠進食、飲水正常,活潑、好動;模型組大鼠在燒傷后1周內(nèi)進食、飲水減少,萎靡少動。
2.2 大鼠海馬體組織病理形態(tài)學(xué) 大鼠燒傷后1周,HE染色結(jié)果:模型組大鼠海馬體神經(jīng)細胞呈水腫狀態(tài),核固縮;尼氏體染色結(jié)果:模型組大鼠神經(jīng)細胞內(nèi)尼氏體淡染,排列紊亂。正常對照組大鼠神經(jīng)細胞中未觀察到組織病理改變。見圖1。
2.3 免疫組織化學(xué)法檢測大鼠海馬體神經(jīng)細胞標(biāo)志物的表達 模型組大鼠海馬體神經(jīng)膠質(zhì)細胞中GFAP呈高表達,MAP-2表達較少。模型組大鼠海馬體神經(jīng)膠質(zhì)細胞中GFAP表達明顯高于正常對照組 (P<0.05);模型組大鼠海馬體神經(jīng)膠質(zhì)細胞中MAP-2的表達明顯低于正常對照組 (P<0.05)。見圖2和表1。
2.4 免疫組織化學(xué)法檢測大鼠海馬體神經(jīng)膠質(zhì)細胞中LC3B和Beclin 1的表達 模型組大鼠海馬體神經(jīng)膠質(zhì)細胞中LC3B和Beclin 1自噬蛋白均呈高表達。模型組大鼠海馬體神經(jīng)膠質(zhì)細胞中LC3B和Beclin 1表達水平明顯高于正常對照組 (P<0.05)。見圖3和表1。
表1 嚴重?zé)齻笫蠛qR體神經(jīng)膠質(zhì)細胞中GFAP、MAP-2、LC3B和Beclin 1的表達水平Tab.1 Expression levels of GFAP,MAP-2,LC3B,and Beclin 1in neuroglia cells in hippocampus tissue of severe burn rats()
表1 嚴重?zé)齻笫蠛qR體神經(jīng)膠質(zhì)細胞中GFAP、MAP-2、LC3B和Beclin 1的表達水平Tab.1 Expression levels of GFAP,MAP-2,LC3B,and Beclin 1in neuroglia cells in hippocampus tissue of severe burn rats()
* P<0.05compared with normal control group.
Group IA GFAP MAP-2 LC3B Beclin 1 Normal control 3756.38±383.09 10405.05±1472.38 686.52±85.56 982.95±65.68 Model 14372.61±1500.86* 4417.90±802.66* 2710.84±175.98* 4951.59±1062.94*
本研究結(jié)果顯示:模型組大鼠燒傷后1周,狀態(tài)較差;HE和尼氏體染色病理觀察顯示:模型組大鼠的海馬神經(jīng)細胞受損;神經(jīng)元標(biāo)志物MAP-2在模型組大鼠海馬體低表達進一步說明受損的神經(jīng)細胞包括神經(jīng)元。神經(jīng)膠質(zhì)細胞標(biāo)志物GFAP在海馬體高表達提示:燒傷后海馬體的神經(jīng)膠質(zhì)細胞活化,出現(xiàn)反應(yīng)性增生的現(xiàn)象。同時,模型組大鼠海馬體神經(jīng)細胞中LC3B和Beclin 1表達明顯升高提示:燒傷后海馬體的神經(jīng)細胞出現(xiàn)過度自噬。
有研究[15]表明:缺血、缺氧和炎性介質(zhì)等可造成海馬部位神經(jīng)元損傷。嚴重?zé)齻自斐膳K器缺血缺氧、細胞中鈣超載、能量代謝障礙、機體炎癥反應(yīng)和釋放氧自由基及炎癥因子等。在血腦屏障開放的情況下,氧自由基和炎癥因子等進入中樞神經(jīng)系統(tǒng),可造成海馬體神經(jīng)細胞損傷[4]。自噬標(biāo)志性蛋白LC3B和Beclin 1在模型組大鼠海馬體中呈高表達,表明燒傷啟動了神經(jīng)細胞的過度自噬過程可能是神經(jīng)細胞損傷的機制。研究[16-17]表明:創(chuàng)傷性腦損傷 (TBI)中,谷氨酸轉(zhuǎn)運體GLT-1活性明顯下降,細胞外谷氨酸濃度升高,從而產(chǎn)生神經(jīng)毒性,可能導(dǎo)致神經(jīng)元自噬的發(fā)生。GLT-1活性下調(diào)可導(dǎo)致細胞外谷氨酸濃度升高,刺激NMDA受體、代謝型谷氨酸受體1(mGluRl)和紅藻氨酸鹽受體,導(dǎo)致了神經(jīng)元自噬發(fā)生及興奮性神經(jīng)元死亡[18]。由此推測嚴重?zé)齻赡芙档土舜笫蠛qRGLT-1轉(zhuǎn)運體活性,引起海馬過度自噬的激活。
另外,GFAP作為神經(jīng)膠質(zhì)細胞的標(biāo)志物,在模型組大鼠的海馬體中呈高表達,可能是神經(jīng)膠質(zhì)細胞對神經(jīng)元的代償性保護。研究[13,19-21]顯示:腦缺血后星形膠質(zhì)細胞反應(yīng)性上調(diào)縫隙連接蛋白Cx43和Cx43mRNA的表達,保護受損的神經(jīng)細胞。
綜上所述,燒傷作為損傷因素在損傷模型中起主要作用,最終引起神經(jīng)細胞死亡。嚴重?zé)齻烧T發(fā)中樞神經(jīng)系統(tǒng)海馬體的神經(jīng)細胞的過度自噬,損傷神經(jīng)細胞,受損神經(jīng)細胞可啟動神經(jīng)膠質(zhì)細胞反應(yīng)性增生以減輕損傷強度,但具體機制及兩者關(guān)系仍需深入研究。
[1]Zhang Q,Carter EA,Ma B,et al.Burn-related metabolic and signaling changes in rat brain [J].J Burn Care Res,2008,29 (2):346-352.
[2]陳 浩,尹 飛,孟春陽,等.骨髓間充質(zhì)干細胞移植對嚴重?zé)齻笫蟾螕p傷的修復(fù)作用及其機制 [J].吉林大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2014,40 (2):219-223.
[3]McEwen BS.Stress and hippocampal plasticity [J].Annu Rev Neurosci,1999,22:105-122.
[4]Swann K,Berger J,Sprague SM,et al.Peripheral thermal injury causes blood-brain barrier dysfunction and matrix metalloproteinase(MMP)expression in rat[J].Brain Res,2007,1129 (1):26-33.
[5]Reyes R Jr,Wu Y,Lai Q,et al.Early inflammatory response in rat brain after peripheral thermal injury [J].Neurosci Lett,2006,407 (1):11-15.
[6]Li H,Ying D,Sun J,et al.Comparative observation with MRI and pathology of brain edema at the early stage of severe burn[J].Chin J Traumatol,2001,4 (4):226-230.
[7]Levine B, Klionsky DJ. Development by self-digestion:molecular mechanisms and biological functions of autophagy[J].Dev Cell,2004,6 (4):463-477.
[8]Zhu C,Wang X,Xu F,et al.The influence of age on apoptotic and other mechanisms of cell death after cerebral hypoxia-ischemia[J].Cell Death Differ,2005,12 (2):162-176.
[9]Nixon RA.Autophagy in neurodegenerative disease:friend,foe or turncoat?[J].Trends Neurosci,2006,29 (9):528-535.
[10]汪文英,崔德榮,江 偉.自噬在大腦缺血再灌注損傷中作用的研究進展 [J].上海交通大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2014,34 (2):248-253.
[11]Pekny M,Pekna M.Astrocyte reactivity and reactive astrogliosis:costs and benefits [J].Physiol Rev,2014,94 (4):1077-1098.
[12]Malhotra SK,Shnitka TK,Elbrink J.Reactive astrocytesa review[J].Cytobios,1990,61 (246/247):133-160.
[13]Nakase T,F(xiàn)ushiki S,Naus CC.Astrocytic gap junctions composed of connexin 43red apoptotic neuronal damage in cerebral ischemia[J].Stroke,2003,34 (8):1987-1993.
[14]Li J,Zhu L,Xu M,et al.Selective decontamination of the digestive tract ameliorates severe burn-induced insulin resistance in rats[J].Burns,2015,41 (5):1076-1085.
[15]Imai F,Suzuki H,Oda J,et al.Neuroprotective effect of exogenous microglia in global brain ischemia [J].J Cereb Blood Flow Metab,2007,27 (3):488-500.
[16]Smith DH,Chen XH,Pierce JE,et al.Progressive atrophy and neuronal death for one year following brain trauma in the rat[J].J Neurotrauma,1997,14 (10):715-727.
[17]Morioka N,Abdin MJ,Kitayama T,et al.P2X (7)receptor stimulation in primary cultures of rat spinal microglia induces downregulation of the activity for glutamate transport[J].Glia,2008,56 (5):528-538.
[18]Vandenberg RJ, Ryan RM. Mechanisms of glutamate transport[J].Physiol Rev,2013,93(4):1621-1657.
[19]Haupt C, Witte OW, Frahm C. Up-regulation of connexin43in the glial scar following photothrombotic ischemic injury[J].Mol Cell Neurosci,2007,35 (1):89-99.
[20]段吉強,宋錦寧,郝璞珩,等.大鼠彌漫性軸索損傷后海馬CA1區(qū)錐體神經(jīng)元電活動變化 [J].西安交通大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2015,36 (1):70-74.
[21]鄧 鑫,宋來君,郭新賓.Matrigel膠對大鼠海馬神經(jīng)干細胞增殖及分化的影響 [J].鄭州大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2014,49 (2):157-161.